莊志明, 黃軼群, 馬旭東, 鄭亞才, 鄭周達(dá)
福建醫(yī)科大學(xué)附屬漳州市醫(yī)院泌尿外科,漳州 363000
雄激素非依賴性是目前制約晚期前列腺癌療效的主要原因,開發(fā)新的抗癌藥物是中晚期前列腺癌治療的迫切要求。異硫氰酸以硫配糖體形式廣泛存在于各種十字花科如莖椰菜、甘藍(lán)和水田芥等植物中[1]。異硫氰酸苯己酯(phenylhexyl isothiocyanate,PHI)已被人工合成。動物實驗表明,PHI對多種腫瘤具有廣泛有效的抑制作用。Srivastava等[2]報道,異硫氰酸丙烯酯(AITC)對移植于裸鼠的人類前列腺癌細(xì)胞(PC3)的增殖有明顯抑制作用,而對正常的前列腺上皮細(xì)胞生長無毒副作用。我們前期的研究[3-5]也發(fā)現(xiàn),PHI可抑制白血病細(xì)胞組蛋白去乙?;?,上調(diào)組蛋白乙酰化酶P300,調(diào)控組蛋白乙?;凹谆?。本研究旨在探討PHI對前列腺癌PC3細(xì)胞的作用,檢測PHI對前列腺癌細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白、組蛋白乙酰化、甲基化的影響,闡述PHI誘導(dǎo)雄激素非依賴性的前列腺癌細(xì)胞凋亡的分子機(jī)制。
異硫氰酸苯己酯(PHI)購自美國LKT Laboratories公司,以75%甲醇配成5 mmoL/L 存儲液,0.22μmol/L 微孔濾膜正壓過濾后-20℃保存。
一抗:Bcl-2,Caspase-9、Caspase-3、Mcl-1、Cyt-C、XIAP購自Santa Cruz公司;Anti-acetyl-Histone H3、Anti-acetyl-Histone H4、Anti-monomethyl-Histone H3(Lys4)、Anti-monomethyl-Histone H3(Lys9)購自Upstate公司(美國)。二抗:羊抗兔二抗以及羊抗鼠二抗購自Santa Cruz公司(美國)。
PC3細(xì)胞購自中科院上海細(xì)胞庫,用含20%胎牛血清、2mmol/L左旋谷氨酰胺的F12培養(yǎng)液置37℃、飽和濕度、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng),細(xì)胞呈單純貼壁生長,每3~5天傳代1次。傳代時用0.25%胰蛋白酶消化2~3min,用培養(yǎng)液吹打制成細(xì)胞懸液,按所需濃度接種,接種前經(jīng)錐蟲藍(lán)拒染法檢測細(xì)胞活力。
取對數(shù)生長期細(xì)胞,將其密度調(diào)整為1.0×105/mL接種于96 孔細(xì)胞培養(yǎng)板(Costar),每孔100μL,實驗組分別加入PHI使終濃度為0、5、10、20、40、80μmol/L,對照組只加10%培養(yǎng)液(無細(xì)胞),每組設(shè)6個平行孔,培養(yǎng)24、48、72、96h后,加5mg/mL MTT(Sigma)10μL,繼續(xù)培養(yǎng)4h,離心后小心吸去上清,每孔加100μL DMSO(Sigma),充分振蕩混勻,在酶標(biāo)儀上用雙波長492nm 和630 nm 測吸光度(A)值,計算細(xì)胞增殖率。細(xì)胞增殖率(%)=(A實驗-A空白)/(A對照-A空白)×100% 。實驗重復(fù)3次。
取對數(shù)生長期細(xì)胞,將其密度調(diào)整為1.0×105/mL接種于6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板(Costar),每孔1 mL,加入無菌蓋玻片,細(xì)胞爬片48h后,分別加入PHI使終濃度為0、10、20、40μmol/L,作用7h后,取出蓋玻片按照Promage試劑盒說明書步驟操作,顯微鏡下觀察、計數(shù)200個細(xì)胞,以細(xì)胞核內(nèi)出現(xiàn)棕色顆粒為凋亡細(xì)胞。
收集經(jīng)PHI處理后的細(xì)胞,分別用預(yù)冷的TBS洗滌2次。按1×106細(xì)胞加入100μL 裂解液和1 μL 酶抑制劑的比例裂解30 min,低溫(4℃)離心1 000r/min×10min,吸取中間清亮層,用Bradford法測定總蛋白。應(yīng)用聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,用半干電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)膜,室溫下?lián)u床封閉1h。加入用TBS稀釋不同濃度的一抗,4℃過夜。TBS洗滌液洗膜,分別加入用TBS按1∶5 000稀釋的辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔二抗以及羊抗鼠二抗,室溫下?lián)u床作用1h。用化學(xué)發(fā)光法顯色,X 線底片曝光,以β-actin為內(nèi)參照,以目的條帶與actin條帶的吸光度值比來反映蛋白的表達(dá)量。對照組為無細(xì)胞組。
采用SPSS 12.0統(tǒng)計處理軟件分析。常規(guī)進(jìn)行方差齊性檢驗,正態(tài)性檢驗。計量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。多組數(shù)據(jù)之間的比較采用單因素方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
圖1顯示0、5、10、20、40、80μmol/L PHI作用48 h 后,PC3 細(xì)胞增殖率分別為100.00%、88.39%、76.27%、44.69%、24.39%、11.50%,隨藥物濃度的增加增殖率逐漸下降。20μmol/L PHI作用24h時細(xì)胞增殖率為78.39%,48h為44.69%,72h為35.59%,96h為33.34%,表現(xiàn)出時間依賴性,IC50為20μmol/L(圖2)。
圖1 不同濃度PHI作用48h后PC3細(xì)胞增殖率Fig.1 Proliferation rate of PC3cells after exposure to indicated concentrations of PHI for 48h
圖2 20μmol/L PHI作用不同時間后PC3 細(xì)胞增殖率Fig.2 Proliferation rate of PC3cells treated with 20μmol/L PHI for different durations
2.2.1 PHI上調(diào)PC3細(xì)胞凋亡率 用TUNEL法檢測凋亡細(xì)胞發(fā)現(xiàn),PHI可誘導(dǎo)PC3細(xì)胞凋亡。0、10、20、40μmol/L PHI作用7h時細(xì)胞凋亡率分別為(1.55±0.78)%、(14.30±4.32)%、(49.45±5.63)%、(76.35±6.21)%,隨濃度增加而增加(圖3),經(jīng)過單因素方差分析顯示差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
圖3 不同濃度PHI處理7h后PC3細(xì)胞凋亡率(DAB,×100)Fig.3 Apoptosis rate of PC3cells after treatment with different concentrations of PHI for 72h(DAB,×100)
2.2.2 PHI下調(diào)凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá) 用Western blot方法檢測發(fā)現(xiàn),經(jīng)過PHI處理后PC3細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白Bcl-2、Caspase-9、Caspase-3、Mcl-1、Cyt-C、XIAP的表達(dá)均下降,且隨PHI濃度的增加和作用時間的延長而降低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),呈時效及量效關(guān)系(圖4)。
圖4 不同濃度PHI處理后凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá)變化Fig.4 Expression of apoptosis-related proteins in PC3cells treated with different concentrations of PHI
Western blot方法檢測發(fā)現(xiàn),PC3 細(xì)胞組蛋白H3、H4處于低乙?;癄顟B(tài)。PHI能明顯增加其組蛋白乙?;疕3、H4的表達(dá),隨PHI濃度的增加,其表達(dá)量增加,且隨作用時間的延長其表達(dá)增強,呈現(xiàn)量效和時效關(guān)系。與對照組比較,PHI 10、20、40 μmol/L處理3h 后,H3 乙?;謩e增加了1.22倍、2.13倍、3.46 倍,而7h 后此變化趨勢更加顯著,分別增加為2.30倍、3.53倍、7.64倍。與對照組比較,處理3h 后,H4 乙?;黾恿?.09 倍、1.45倍、2.02倍,而7h后此變化趨勢更加顯著,分別增加了2.52倍、2.87 倍、3.50 倍,H3 乙?;黾映潭纫菻4乙酰化增加明顯(圖5)。
PC3細(xì)胞組蛋白H3K4 處于低甲基化狀態(tài)。PHI處理后H3K4甲基化水平明顯增高,呈時效和量效關(guān)系,與對照組比較,PHI在10、20、40μmol/L處理3h后組蛋白甲基化H3K4水平增加了2.74倍、3.75倍、4.58倍,7h后組蛋白甲基化H3K4增加了3.66 倍、4.75 倍、5.76 倍。PC3 細(xì)胞組蛋白H3K9處于高甲基化狀態(tài),與對照組比較,PHI處理3h后對甲基化H3K9狀態(tài)影響不太明顯,但是處理7h后組蛋白甲基化H3K9水平降低,分別為對照組的0.65倍、0.37倍、0.22倍(圖6)。
圖5 PHI處理PC3細(xì)胞后組蛋白H3、H4乙?;癄顟B(tài)的改變Fig.5 Histone acetylation in PC3cells treated with PHI
圖6 PHI處理PC3細(xì)胞后組蛋白H3K9、H3K4甲基化狀態(tài)的改變Fig.6 Histone methylation in PC3cells treated with PHI
表觀遺傳是指DNA 序列不發(fā)生變化但基因表達(dá)卻發(fā)生了可遺傳的改變[6]。這種改變在發(fā)育和細(xì)胞增殖過程中能穩(wěn)定傳遞[7]。表觀遺傳修飾主要包括DNA 啟動子區(qū)的甲基化、組蛋白各種類型的修飾(乙?;?、甲基化、磷酸化、泛素化等)、RNA 干擾等。腫瘤抑癌基因表觀遺傳修飾的異常改變所致的基因失活,將導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生、發(fā)展。表觀遺傳學(xué)改變是可逆的[8],因此,可作為腫瘤治療的特異性標(biāo)靶。目前分子遺傳學(xué)研究認(rèn)為,前列腺癌的發(fā)生與發(fā)展不僅與某些癌基因的活化有關(guān),也涉及相關(guān)抑癌基因的失活。而抑癌基因失活除了與基因突變及等位基因成分缺失有關(guān)外,還與表觀遺傳密切相關(guān)。
隨著組蛋白甲基化的研究逐漸興起,研究發(fā)現(xiàn)賴氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶的家族中許多成員與腫瘤形成有關(guān),HMT 活性缺失或失調(diào)可能是導(dǎo)致腫瘤發(fā)生的原因。美國一項臨床研究發(fā)現(xiàn),甲基化在前列腺癌患者標(biāo)本中比例很高[9]。其中,組蛋白H3K9、H3K27、H3K79、H4K20位點的甲基化發(fā)揮轉(zhuǎn)錄抑制作用,H3K4甲基化是基因轉(zhuǎn)錄激活的標(biāo)志,分別受到不同的甲基轉(zhuǎn)移酶調(diào)控[10-11]。本研究發(fā)現(xiàn)PC3細(xì)胞組蛋白甲基化H3K4呈低表達(dá),而H3K9高表達(dá);PHI可上調(diào)組蛋白H3K4 甲基化水平,抑制H3K9甲基化的水平,即PHI可精確調(diào)控組蛋白甲基化表達(dá),激活轉(zhuǎn)錄因子,啟動基因的轉(zhuǎn)錄,從而抑制PC3腫瘤細(xì)胞的增殖,并誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。PHI能調(diào)節(jié)H3K4、H3K9的甲基化狀態(tài)在經(jīng)典的組蛋白去乙?;敢种苿℉DACI)曲古抑菌素(Trichostatin A,TSA)中未被發(fā)現(xiàn)[12],究竟是PHI本身具有組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶的活性,還是通過其他途徑激活或募集組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶來改變H3K9、H3K4的甲基化狀態(tài),其中的具體機(jī)制尚待進(jìn)一步研究。
組蛋白乙酰化由乙?;D(zhuǎn)移酶(HAT)和去乙?;福℉DAC)調(diào)節(jié)。HAT 及HDAC精確地調(diào)控染色質(zhì)的結(jié)構(gòu)及基因的表達(dá)。HAT 及HDAC 活性異常,或異常募集HDAC,引起抑癌基因的表達(dá)抑制或癌基因的激活和過度表達(dá),是腫瘤發(fā)生的一個重要機(jī)制。在多種腫瘤中HDAC與細(xì)胞周期、細(xì)胞分化的調(diào)控密切相關(guān)[13-17]。
隨著對組蛋白乙?;芯康纳钊?,發(fā)現(xiàn)組蛋白HDACI能通過調(diào)節(jié)組蛋白乙?;乃絹碚{(diào)控表觀遺傳學(xué),從而影響基因的轉(zhuǎn)錄,誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡或分化,引起細(xì)胞周期的阻滯,調(diào)控癌基因及抑癌基因活性,從而達(dá)到治療腫瘤的目的。本研究結(jié)果表明,PC3細(xì)胞組蛋白呈低乙?;?,在PHI作用下,以劑量依賴及時間依賴的方式顯著提高組蛋白H3和H4的乙酰化水平,激活基因轉(zhuǎn)錄,調(diào)控人類前列腺癌PC3細(xì)胞的表觀遺傳學(xué),從而抑制細(xì)胞的增殖,誘導(dǎo)細(xì)胞的凋亡。
本研究證實,PHI可抑制人類前列腺癌細(xì)胞PC3的增殖,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,其機(jī)制可能是通過內(nèi)源性凋亡途徑,下調(diào)凋亡抑制蛋白XIAP、Mcl-1前體(凋亡底物)的表達(dá),從而加速腫瘤細(xì)胞的凋亡。故PHI有望成為新型的抗腫瘤藥物。
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