李新,汪蘭*,丁安子,吳文錦,孫靜,喬宇,石柳
(1.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工與核農(nóng)技術(shù)研究所,湖北 武漢 430064;2.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所,湖北 武漢 430064)
我國(guó)是家禽養(yǎng)殖、屠宰加工大國(guó),近年來(lái)家禽養(yǎng)殖業(yè)呈規(guī)?;?、集約化方向發(fā)展,成為我國(guó)農(nóng)業(yè)經(jīng)濟(jì)中最活躍的增長(zhǎng)點(diǎn)和主要的支柱產(chǎn)業(yè)。家禽屠宰加工過(guò)程中產(chǎn)生大量的血液,是一種優(yōu)質(zhì)的蛋白資源,目前關(guān)于禽血精深加工與高值化利用研究較少。
氧化是人類(lèi)衰老與疾病主要誘因,脂質(zhì)與蛋白質(zhì)氧化均可以產(chǎn)生自由基,自由基的形成與累積會(huì)進(jìn)一步損傷生物大分子,導(dǎo)致細(xì)胞及組織的氧化損傷[1-2]??寡趸瘎┛梢杂行б种谱杂苫难趸磻?yīng),在減少細(xì)胞氧化、防止脂質(zhì)過(guò)氧化、降低自由基生成速率等方面具有重要作用[3]。檢測(cè)ABTS+自由基、DPPH自由基、羥基自由基等自由基清除率是評(píng)價(jià)抗氧化活性常規(guī)方法[4-5]。通過(guò)酶解食源性蛋白質(zhì)獲得的多肽,可以具備與天然或合成類(lèi)抗氧化劑同樣甚至更好的抗氧化活性。國(guó)內(nèi)外研究表明,活性肽具備抑制脂質(zhì)過(guò)氧化、螯合金屬離子、清除活性氧能力[6-7]?;钚噪目寡趸芰εc多肽的分子量、結(jié)構(gòu)和疏水性有著密切的關(guān)系[8-9]。本研究以雞血血紅蛋白為原料,采用中性蛋白酶水解,結(jié)合離心、濃縮、凍干等方法制備血肽,應(yīng)用葡聚糖凝膠色譜分離純化,收集并測(cè)定不同分子量范圍血肽體外抗氧化性,為實(shí)現(xiàn)禽血高值轉(zhuǎn)化利用提供技術(shù)支撐與理論基礎(chǔ)。
新鮮雞血:市售。三氟乙酸、過(guò)硫酸鉀、ABTS、DPPH、鄰二氮菲、硫酸亞鐵、乙醇、雙氧水、鄰苯三酚(分析純):國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;中性蛋白酶(酶活≥100 U/mg,分析純):合肥博美生物科技有限公司;乙晴、細(xì)胞色素C、抑肽酶、桿菌酶、乙氨酸-乙氨酸-酪氨酸-精氨酸、乙氨酸-乙氨酸-乙氨酸(色譜純):北京安捷飛科技有限公司。
GL-25MS高速冷凍離心機(jī):上海盧湘儀離心機(jī)儀器有限公司;L5S紫外分光光度計(jì):上海儀電分析儀器有限公司;Waters1525高效液相色譜儀(配2487紫外檢測(cè)器和Empower工作站GPC軟件):美國(guó)Waters公司;SIM FDS-2.5E真空冷凍干燥機(jī):美國(guó)SIM公司。
1.3.1 原料處理
雞宰殺時(shí)收集雞血,添加0.2%乙二胺四乙酸二鈉(ethylenediamine tetraacetic acid disodium salt,ED TA-2Na),攪拌均勻,置于冰盒中備用,離心處理(4000r/min,20 min),收集沉淀,凍干即為雞血血紅蛋白粉。以血紅蛋白粉為酶解底物,選用中性蛋白酶酶解,根據(jù)單因素試驗(yàn)確定血肽酶解條件,即血紅蛋白底物濃度、酶添加量與酶解時(shí)間,研究分析血肽相對(duì)分子質(zhì)量分布、分離純化方法及其抗氧化性研究。
1.3.2 氨基酸態(tài)氮含量的測(cè)定
酶解液中的氨基酸態(tài)氮含量采用中性甲醛滴定法測(cè)定[10]。
1.3.3 總氮含量的測(cè)定
總氮含量采用半微量凱氏定氮法測(cè)定[11]。
1.3.4 水解度(degree of hydrolysis,DH)測(cè)定
水解度計(jì)算公式如下[12]。
DH/%=AN/TN×100
式中:AN為氨基酸態(tài)氮的含量,g/L;TN為總氮量,g/L。
1.3.5 血肽相對(duì)分子質(zhì)量分布檢測(cè)
1)樣品制備:稱取樣品10 mg于10 mL容量瓶中,用流動(dòng)相稀釋至刻度,0.45 μm微孔濾膜過(guò)濾后供進(jìn)樣。
2)色譜條件:色譜柱TSKgel 2000 SWXL 300 mm×7.8 mm;流動(dòng)相為乙腈、水、三氟乙酸體積比 45∶55∶0.1;檢測(cè)波長(zhǎng)220 nm;流速0.5 mL/min;柱溫30℃。
1.3.6 血肽分離純化試驗(yàn)
參考文獻(xiàn)[13-14]的方法,稱量SephadexG-154.5g,用蒸餾水加熱溶脹,脫氣,勻速倒入垂直放置的凝膠柱(16 mm×100 cm)中,置于4℃層析柜中。將柱的上端與恒流泵相連,0.5 mg/mL NaCl溶液洗脫12 h,使凝膠處于均勻緊實(shí)狀態(tài)。將血肽樣品配制成100 mg/mL溶液,過(guò)0.45 μm微孔濾膜,上樣量1.0 mL,流動(dòng)相為NaCl溶液,流速為0.5 mL/min,紫外檢測(cè)波長(zhǎng)260 nm,以時(shí)間為橫坐標(biāo),洗脫液吸光度為縱坐標(biāo)繪制洗脫曲線。根據(jù)洗脫曲線,合并同一洗脫峰,洗脫液真空濃縮,冷凍干燥后得到純化后血肽樣品。
1.3.7 血肽抗氧化性試驗(yàn)
1.3.7.1 ABTS+自由基清除率測(cè)定
參照WANG等[15]的方法。取2.45 mmol/L K2S2O8溶液和7 mmol/L ABTS溶液等體積混合,室溫25℃避光放置12h~16h制得ABTS+自由基反應(yīng)液,用0.2mol/L pH7.4磷酸鹽緩沖液將0.8 mL ABTS+自由基反應(yīng)液進(jìn)行稀釋,使其在734 nm下吸光值為0.68~0.72,備用。配制3.0 mg/mL樣液,取0.04 mL樣液與4 mL ABTS+自由基反應(yīng)液混合均勻,常溫避光反應(yīng)1 h,測(cè)定其在734 nm下的吸光值(A1),用去離子水做空白對(duì)照測(cè)定在734 nm下的吸光值(A2),按下式計(jì)算ABTS+自由基清除率。
1.3.7.2 DPPH自由基清除率測(cè)定
參照BAEA S H等[16]的方法。取2 mL樣液(3.0 mg/mL),加入2 mL 0.15 mmol/L DPPH溶液(用95%的乙醇溶解),混勻后在室溫25℃條件下避光反應(yīng)30 min,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度(A1),空白組為2 mL 95%的乙醇溶液代替DPPH溶液,加入2 mL樣液混合,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度(A2),對(duì)照組為2 mL DPPH溶液加2 mL 95%的乙醇溶液,在517 nm處測(cè)定其吸光度(A0)。按下式計(jì)算DPPH自由基清除率。
1.3.7.3 羥基自由基清除率測(cè)定
參照馬賽蕊等[17]的方法。取0.6 mL 5 mmol/L鄰二氮菲的無(wú)水乙醇溶液,加入0.4 mL 0.15 mol/L的磷酸鹽緩沖溶液(pH 7.40)和0.6 mL 0.75 mmol/L的硫酸亞鐵,加入2 mL樣液(3.0 mg/mL),加入0.4 mL 0.1%雙氧水,37℃條件下水浴60 min,在波長(zhǎng)536 nm波長(zhǎng)處測(cè)其吸光度(A1);以去離子水代替樣液和雙氧水溶液重復(fù)以上操作,在536 nm波長(zhǎng)處測(cè)其吸光度(A2);以去離子水代替樣液來(lái)重復(fù)以上操作,在536 nm波長(zhǎng)處測(cè)定其吸光度(A3)。按下式計(jì)算羥基自由基清除率。
1.3.7.4 O2-自由基清除率測(cè)定
參照張金豫等[18]的方法。取樣液0.1 mL(3.0 mg/mL),加入2.8 mL 0.1 mol/L Tris-HCl(pH 8.2)緩沖溶液振蕩混勻,在25℃水浴10 min后加入0.1 mL 3 mmol/L的鄰苯三酚溶液(25℃預(yù)熱),在322 nm波長(zhǎng)測(cè)定吸光度,每隔30 s讀取吸光度,4 min后結(jié)束;以去離子水0.1 mL加 2.8 mL 0.1 mol/L的 Tris-HCl(pH 8.2)緩沖溶液調(diào)零;空白對(duì)照管以去離子水代替樣液。作吸光度隨時(shí)間變化的回歸方程,其斜率為鄰苯三酚的自氧化速率V,按下式計(jì)算O2-自由基清除率。
式中:V對(duì)照為鄰苯三酚自氧化速率,即自氧化曲線斜率;V樣品為加入血肽氧化曲線斜率。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,試驗(yàn)重復(fù)3次,使用Excel、Origin 8.0進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和制圖。
不同底物濃度、酶添加量、酶解時(shí)間對(duì)血紅蛋白水解度的影響見(jiàn)圖1。
圖1 不同酶解條件下雞血血紅蛋白水解度Fig.1 Degree of hydrolysis of hemoglobin in chicken blood at different enzymatic hydrolysis conditions
由圖1可知,底物濃度為5%~6%時(shí),水解度變化不明顯,表明底物濃度大于5%時(shí)趨于飽和;隨著酶添加量增加,血紅蛋白水解度呈緩慢增加趨勢(shì),酶添加量大于1.5%后,水解度趨于穩(wěn)定值;隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng),水解度緩慢增加。水解度直接關(guān)系到血紅蛋白水解程度,隨著水解度的增加,酶解產(chǎn)物的分子質(zhì)量分布表現(xiàn)出大分子肽含量逐漸減少,小分子肽含量逐漸增多[19-20]。綜合考慮原輔料成本、生產(chǎn)周期、能耗等問(wèn)題,確定血肽酶解制備條件:底物濃度5%,酶添加量1.5%,酶解時(shí)間5 h。
血肽高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)圖以及相對(duì)分子質(zhì)量分布見(jiàn)圖2和表1。
表1 血肽相對(duì)分子質(zhì)量分布Table 1 Relative molecular mass distribution of hemepeptide
圖2 血肽高效液相色譜圖Fig.2 HPLC of hemepeptide
雞血血紅蛋白經(jīng)中性蛋白酶酶解后,酶解液中肽的相對(duì)分子質(zhì)量主要分布在1 000 Da以下,1 000 Da~2 000 Da的肽含量較低,僅為2.69%,500 Da~1 000 Da的肽含量為 23.97%,180 Da~500 Da的肽含量為66.07%,低于180 Da的肽含量為6.52%,屬于氨基酸或其殘基。根據(jù)氨基酸平均相對(duì)分子質(zhì)量180 Da,可以推斷酶解液中肽大部分由2個(gè)~6個(gè)氨基酸組成,屬于小肽(或寡肽)范疇。由此可以說(shuō)明,采用上述的酶解工藝條件可以得到含量超過(guò)90%以上小肽樣品。
根據(jù)表1血肽大部分相對(duì)分子質(zhì)量小于1000Da,而Sephadex G-15分離的分子質(zhì)量范圍是<1 500 Da,因此選擇采用交聯(lián)葡聚糖凝膠Sephadex G-15分離純化血肽粗品,洗脫峰見(jiàn)圖3。
圖3 血肽葡聚糖凝膠層析圖譜Fig.3 Dextran gel chromatography of hemepeptide
凝膠層析過(guò)程中多肽按照分子量大小先后被洗脫出來(lái),共分離出P1、P2、P3與P4共4個(gè)組分,分子量大小順序依次為P1>P2>P3>P4,根據(jù)各組分峰面積,4個(gè)組分含量與HPLC相對(duì)應(yīng),分別收集P2、P3組分,冷凍干燥后研究其抗氧化活性。
血肽粗品、P2組分、P3組分的 ABTS+自由基、DPPH自由基、羥基自由基、O2-自由基的清除率結(jié)果見(jiàn)圖4。
圖4 血肽粗品與Sephadex G-15分離組分抗氧化活性Fig.4 Antioxidant activities of crude hemepeptides and Sephadex G-15 isolated components
鑒于多肽抗氧化活性存在劑量-效應(yīng)關(guān)系,因此在抗氧化活性測(cè)定試驗(yàn)中,確定血肽粗品及各組分質(zhì)量濃度為3 mg/mL。結(jié)果表明,血肽粗品經(jīng)Sephadex G-15的分離純化后,多肽組分的抗氧化活性增加,且分子量越低的組分ABTS+自由基、DPPH自由基、羥基自由基、O2-自由基的清除率越高,分離純化得到的血肽P3組分具有最強(qiáng)的抗氧化性能。肽的抗氧化活性與其分子量之間存在相關(guān)性,其活性可能隨著肽分子量的降低而增加,另外,肽的氨基酸組成、序列以及重要氨基酸所在肽鏈中位置也與多肽抗氧化性相關(guān)[21-22]。
雞血血紅蛋白通過(guò)中性蛋白酶酶解,血紅蛋白底物濃度5%,酶添加量1.5%,酶解時(shí)間5 h,酶解液離心凍干獲得血肽粗品,血肽相對(duì)分子質(zhì)量大部分集中在1 000 Da以下,主要分布于500 Da~1 000 Da與180 Da~500 Da,含量分別為23.97%、66.07%,由此可以推斷,在此酶解工藝條件下,可以獲得2個(gè)~5個(gè)氨基酸組成的血肽分子。經(jīng)交聯(lián)葡聚糖凝膠Sephadex G-15分離得到4個(gè)洗脫峰,與高效液相色譜分析結(jié)果一致。分子量180 Da~500 Da的血肽ABTS+自由基、DPPH自由基、羥基自由基、O2-自由基的清除率分別為81.28%、52.45%、23.86%與18.14%,高于血肽粗品與500 Da~1 000 Da的血肽,表明純化后的血肽的抗氧化活性增加,且分子量小的血肽抗氧化活性較高。