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    敲除S1PR3可緩解小鼠的急性肺損傷:基于抑制MAPK信號通路

    2022-02-03 03:00:54房尚萍孫任珂馬同軍
    南方醫(yī)科大學學報 2022年12期
    關(guān)鍵詞:焦亡膿毒癥肺泡

    房尚萍,袁 冉,孫任珂,馬同軍

    皖南醫(yī)學院1麻醉學院,2麻醉學實驗實訓中心,3法醫(yī)學院,安徽 蕪湖 241002

    膿毒癥是病原微生物入侵機體后所致的全身炎癥反應綜合征[1,2]。肺臟是膿毒癥中受累的首位靶器官[3]。在病程早期就可出現(xiàn)急性肺損傷,其發(fā)生率在危重病人群中高達7%。死亡率高達30%~40%,已成為膿毒癥患者死亡的首要原因[4]。鞘氨醇1磷酸酯受體3(S1PR3)作為G蛋白偶聯(lián)受體之一,與磷脂分子-1磷脂鞘氨醇結(jié)合,啟動細胞跨膜信號轉(zhuǎn)導,調(diào)節(jié)細胞增殖和炎癥反應[5,6]。S1PR3在全身各組織器官內(nèi)高表達[7]。有研究報道S1PR3是參與膿毒癥過程巨噬細胞清除細菌的關(guān)鍵分子[8]。當干擾S1PR3表達可抑制LPS誘導的小膠質(zhì)細胞TNF-α、IL-6和IL-1β表達[9]。研究顯示S1PR3在急性肺損傷中是關(guān)鍵的分子[10]。

    S1PR3 在膿毒性急性肺損傷的具體機制尚不明確。因此,本研究通過脂多糖(LPS)構(gòu)建急性肺損傷模型,觀察了敲除S1PR3和S1PR3激動劑對急性肺損傷的影響,及是否通過MAPK通路發(fā)揮作用,為急性肺損傷的治療提供一定的實驗依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    1.1.1 試劑 脂多糖(Sigma),S1PR3激動劑CYM-5541(MedChemExpress);caspase-1 抗體、clv-GSDMD 抗體,p-JNK抗體、p-ERK抗體、p-p38抗體(Cell Signaling Technology);ELISA試劑盒(武漢艾美捷科技有限公司)。

    1.1.2 實驗動物 健康SPF級雄性C57Bl/6J小鼠16只和S1PR3-/-敲除鼠16只,6~8周齡,體質(zhì)量18~22 g,購自斯貝福(北京)生物技術(shù)有限公司,動物使用許可證號SCXK(京)2019-0010,本實驗動物研究符合皖南醫(yī)學院實驗動物倫理委員會所制定的倫理學標準,動物倫理批準號為2021-201,實驗遵循3R原則。

    1.2 方法

    1.2.1 急性肺損傷模型構(gòu)建[11]所有小鼠經(jīng)腹腔注射10%水合氯醛(0.20 mL/20 g)麻醉小鼠,固定于動物架上,置于工作臺,抬高頭端,使其與操作臺面成30°角,用寬頭鑷拉出舌頭,充分暴露聲門,向氣管內(nèi)緩慢滴注LPS/NS(5 mg/kg),保持小鼠直立體位,直至完全吸入,恢復正常呼吸,造模后6 h,處理小鼠。

    1.2.2 動物分組 雄性C57BL/6J 小鼠(6~8 周)分為2組:C57 NS組(C57,生理鹽水處理)、C57 LPS組(C57,LPS誘導),8只/組;S1PR3敲除雄性小鼠(6~8周)分為2 組:S1PR3-/-NS 組(S1PR3 敲除鼠,生理鹽水處理)、S1PR3-/-LPS組(S1PR3敲除鼠,LPS誘導)。

    1.2.3 細胞分組 Ⅱ型肺泡上皮細胞(MLE-12細胞)鋪板于6孔板中,每孔細胞數(shù)量為1×106,分為4組,每組3個副孔:PBS 組、LPS 組、CYM5541 組(僅加入CYM-5541)、CYM5541+LPS 組(加入CYM-5541+LPS),CYM-5541(10 nmol/L)預刺激2 h,加入LPS(1 μg/mL)刺激6 h。

    1.2.4 HE染色 4%福爾馬林固定肺組織,石蠟包埋,切成5 mm切片。然后,用HE染色切片。

    1.2.5 Western blot 各組收集的肺組織或細胞,PBS清洗2次,加入RIPA試劑,蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑提取組織總蛋白,BCA法測量蛋白濃度,行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)膜。5%脫脂奶粉封閉1 h,將條帶分貝加入caspase-1,GSDMD,p-JNK,p-ERK p-p38 和內(nèi)參抗體中,4 ℃避光孵育過夜,1×TBST洗膜3次,5 min/次,再置于二抗(1∶1000)孵育液中,室溫孵育1 h,最后ECL顯影液避光顯影,使用Image J軟件進行結(jié)果分析,通過目的蛋白灰度值與內(nèi)參條帶灰度值的比值表示目的蛋白的表達水平。

    1.2.6 RT-qPCR 使用Trizol 法提取肺組織或細胞總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,然后行PCR擴增。擴增條件:95 ℃3 min,95 ℃5 s,60 ℃30 s,40個循環(huán)。引物序列如下(表1)。

    表1 qRT-PCR引物序列Table 1 Primer sequence for qRT-PCR

    1.2.7 肺水腫檢測 采用肺濕干比反應肺水腫情況。小鼠麻醉后右心灌流去除肺部血管內(nèi)血液,取肺臟并稱重,記作濕重。將肺臟至于65 ℃恒溫烤箱,72 h再次稱重,記作干重。

    1.3 統(tǒng)計學分析

    SPSS 22.0 軟件進行實驗數(shù)據(jù)分析。計量資料以均數(shù)±標準差表示。兩組間比較用獨立樣本t檢驗;多組間比較用單因素方差分析,進一步兩兩比較用SNK-q檢驗。以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。所有的實驗都是獨立重復3次。

    2 結(jié)果

    2.1 LPS誘導的急性肺損傷中S1PR3表達上調(diào)

    S1PR3在LPS處理的C57小鼠肺組織中表達明顯上升(圖1A,P<0.001),同時pro-IL-18,pro-IL-1β,TNF-α,IL-6 mRNA表達明顯上升(圖1B~C,P<0.05),小鼠血清IL-18,IL-1β較空白對照組均明顯升高(圖1D,P<0.05)。

    圖1 急性肺損傷對S1PR3和炎癥因子的影響Fig.1 Effect of acute lung injury on S1PR3 and inflammatory factors in C57 mice.A-C:qRT-PCR for detecting changes of S1PR3,pro-IL-18,pro-IL-1β,TNF-α,and IL-6 mRNAexpression in lung tissues.D:ELISAfor detecting changes of IL-18 and IL-1β expressions in serum.*P<0.05,***P<0.001 vs ctrl group

    2.2 S1PR3敲除改善急性肺損傷出血

    S1PR3-/-較WT小鼠經(jīng)LPS刺激后的肺組織HE染色,肺損傷明顯減輕(圖2A~E)。同時WT和S1PR3-/-經(jīng)LPS刺激后肺臟濕干比值均顯著升高(圖2F,P<0.05),而S1PR3-/-較WT小鼠經(jīng)LPS刺激后的肺濕干比重明顯降低。

    圖2 S1PR3敲除對急性肺損傷病理的影響Fig.2 Effect of S1PR3 knockout on lung pathology in mice with acute lung injury.A-D:HE staining of the lung tissues.E: Percentage of neutrophil infiltration.F: Lung wet/dry ratio.@P<0.05 vs WT LPS Group.

    2.3 S1PR3會加重細胞焦亡比例

    S1PR3敲除后的小鼠急性肺損傷,血清乳酸脫氫酶(LDH)(圖3A)和肺泡巨噬細胞的凋亡比例(圖3B)均降低,cleaved-caspase-1和GSDMD蛋白表達(圖3C~E)也較WT小鼠急性肺損傷時表達降低。II型肺泡上皮細胞因加入LPS 和S1PR3 激動劑后,細胞上清中的LDH 含量(圖3I)明顯升高,cleaved caspase-1 和GSDMD(圖3F~H)蛋白表達也明顯上升(P<0.05)。

    圖3 S1PR3對急性肺損傷細胞焦亡的影響Fig.3 Pyroptosis in the lung tissue of S1PR3 knockout mice with acute lung injury and in MLE-12 cells treated with S1PR3 agonist.A: Changes of serum LDH levels in WT and S1PR3-/-mice.B:Flow cytometry for detecting pyroptosis of alveolar macrophages in mice with acute lung injury.C-E: Western blotting for detecting changes in GSDMD and cleaved caspase-1 p20 in the lungs of mice with acute lung injury(In Fig.3C,A,B,C and D represent WT Ctrl group,WT LPS group,S1PR3-/- Ctrl group,and S1PR3-/- LPS group,respectively).F-H:Western blotting for detecting changes in GSDMD and cleaved caspase-1 p20 in MLE-12 cells treated with CYM5541.I: Changes of LDH levels in MLE-12 cell supernatant.#P<0.05 vs PBS Group,@P<0.05 vs WT LPS Group,*P<0.05,***P<0.001 vs CYM5541+LPS group.

    2.4 S1PR3敲除降低MAPKs通路的激活

    急性肺損傷的小鼠肺組織中的p-JNK、p-ERK和p-p38表達均明顯增強,而S1PR3敲除后減輕了這些分子的磷酸化(P<0.05,圖4A~D)。而II型肺泡上皮細胞因加入LPS后MAPKs家族蛋白的磷酸化水平明顯升高,而同時加入S1PR3激動劑和LPS后,MAPKs家族蛋白的磷酸化水平較單獨加入LPS升高更明顯(P<0.05,圖4E~H)。

    圖4 S1PR3對MAPKs信號通路的影響Fig.4 Changes in MAPKs signal pathway in the lung tissue of S1PR3 knockout mice with acute lung injury and in MLE-12 cells treated with S1PR3 agonist.A-D:Western blotting for detecting changes in p-p38,p-JNK and p-ERK in the lungs of the mice with acute lung injury(in Fig.4A,A,B,C and D represent WT Ctrl group,WT LPS group,S1PR3-/-Ctrl group,and S1PR3-/-LPS group,respectively).E-H:Western blotting for detecting changes in p-p38,p-JNK and p-ERK in MLE-12 cells treated with CYM5541.#P<0.05 vs PBS Group,@P<0.05 vs WT LPS Group,*P<0.05 vs CYM5541+LPS group.

    3 討論

    本研究首次發(fā)現(xiàn)S1PR3促進急性肺損傷發(fā)展,通過caspase-1經(jīng)典的細胞焦亡途徑,通過抑制S1PR3表達會抑制caspase-1細胞焦亡途徑,抑制急性肺損傷的發(fā)展;反之,過表達S1PR3促進caspase-1細胞焦亡途徑,促進急性肺損傷的發(fā)展。

    脂多糖作為革蘭陰性桿菌細胞壁外膜內(nèi)毒素的主要成分,是引起膿毒癥和急性肺損傷的主要致病因素[12,13]。本研究中,向氣管內(nèi)注入LPS直接誘導急性肺損傷,病理結(jié)果發(fā)現(xiàn)LPS滴注氣管后導致大量炎癥細胞浸入肺泡腔和肺毛細血管充血,肺泡壁增厚;同時,血清炎癥因子TNF-α,IL-6,IL-1β明顯升高,說明急性肺損傷的模型構(gòu)建成功,該結(jié)果與某報道一致[14]。S1PR3廣泛分布于各類組織細胞中,是七次跨膜G蛋白偶聯(lián)受體家族的其中一員,與磷脂分子1-磷酸鞘氨醇(S1P)相結(jié)合,啟動下游信號轉(zhuǎn)導,可調(diào)節(jié)細胞增殖,炎癥等生物學功能[10,14]。本研究發(fā)現(xiàn)急性肺損傷后S1PR3表達明顯升高,該結(jié)果與某研究結(jié)果類似:急性肺損傷小鼠血漿中S1PR3明顯上升[10]。出現(xiàn)該結(jié)果的可能機制是S1PR3通過介導細胞增殖和增強血管通透性。而在S1PR3-/-小鼠急性肺損傷中,肺組織滲出的炎癥細胞和毛細血管充血程度明顯減輕。研究發(fā)現(xiàn)S1PR3拮抗劑能抑制小膠質(zhì)細胞炎癥因子的產(chǎn)生,從而抑制膿毒性腦病的發(fā)生發(fā)展[16],該現(xiàn)象與本結(jié)果類似。說明S1PR3可促進膿毒癥的發(fā)生發(fā)展,而敲除S1PR3能明顯緩解膿毒癥的進程。

    本研究發(fā)現(xiàn)S1PR3-/-急性肺損傷小鼠,肺組織細胞焦亡比例明顯減少,分泌的LDH明顯降低,炎癥反應明顯減輕。與本研究結(jié)果類似的研究顯示S1PR2缺失的急性肺損傷巨噬細胞焦亡減少,膿毒癥的發(fā)生明顯減輕[17]。S1PR2和S1PR3均是S1PRs家族中的主要成員,高度同源,具有相似的生物學效應[18,19]。但S1PR3缺失是否通過減輕細胞焦亡,而減緩膿毒癥的發(fā)生鮮有報道,這也是本研究的創(chuàng)新點之一。細胞焦亡是一種促炎性的細胞死亡方式,細胞在感受到外來信號刺激后,激活炎性小體[20],caspase-1前體蛋白被剪切,形成具有活性的caspase-1,同時剪切IL-1β和IL-18前體形成具有生物活性的成熟體[20,21]。同時Caspase-1通過剪切g(shù)asdermin D(GSDMD)蛋白誘導細胞焦亡,細胞腫脹發(fā)生滲透性溶解[22]。本研究發(fā)現(xiàn)S1PR3-/-小鼠膿毒性肺損傷后,肺組織GSDMD及clv-caspase-1等焦亡相關(guān)蛋白明顯減少。II型肺泡上皮細胞是肺泡上皮細胞的主要組成細胞,是參與急性肺損傷的重要效應細胞[23],因此本實驗采用II型肺泡上皮細胞系MLE-12細胞模擬體外實驗。CYM5541 是選擇性S1P 受體3 的變構(gòu)激動劑,能模擬S1PR3過表達后的生物學效應[24]。本研究發(fā)現(xiàn)MLE-12細胞加入LPS和CYM5541后,細胞焦亡相關(guān)蛋白表達明顯升高,與S1PR3敲除后現(xiàn)象相反。說明S1PR3會促進細胞焦亡的發(fā)生。

    MAPKs家族是介導細胞內(nèi)信號傳導的一組絲氨酸/蘇氨酸激酶,該通路被激活后會導致細胞增殖、分化、死亡和促炎癥介質(zhì)的產(chǎn)生等效應[25,26]。MAPKs通路也被認為是急性肺損傷的關(guān)鍵信號[27,28]。目前鮮有研究報道MAPKs家族在S1PR3介導的急性肺損傷的發(fā)展中起作用。Tian等發(fā)現(xiàn)JNK、ERK和p38在急性膿毒癥肝損傷模型中被活化,而MAPKs通路會被S1PR3抑制劑所抑制[29],該研究與本研究結(jié)果類似,JNK、ERK和p38MAPKs家族在急性肺損傷時被激活,而S1PR3敲除小鼠的急性肺損傷中MAPK通路被抑制。S1PR3激動劑會使MAPKs通路相關(guān)蛋白的磷酸化水平升高。

    綜上所述,敲除S1PR3通過抑制MAPKs信號通路抑制細胞焦亡,從而改善膿毒性急性肺損傷。

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