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    羥氯喹逆轉(zhuǎn)慢性髓性白血病細胞K562/IMA對伊馬替尼耐藥的作用機制研究

    2019-08-28 12:38:54楊毅李文燕盛泳佳王瑾陳啟緒韓晨陽
    浙江醫(yī)學(xué) 2019年15期
    關(guān)鍵詞:增殖率氯喹抑制劑

    楊毅 李文燕 盛泳佳 王瑾 陳啟緒 韓晨陽

    慢性髓性白血?。–ML)是造血干細胞異常轉(zhuǎn)化而產(chǎn)生的一種髓系惡性克隆白血病,遺傳學(xué)特征表現(xiàn)為t(9;22)(q34;q11)易位,產(chǎn)生BCR-ABL融合基因,該融合基因翻譯的蛋白屬于非受體酪氨酸激酶,其二聚體形式可以導(dǎo)致底物蛋白酪氨酸殘基磷酸化,激活多條信息傳遞途徑,干擾細胞的基本活動[1-2]。目前臨床治療CML的方法包括以羥基脲為主要藥物的化療、INF-α以及異基因造血干細胞移植等[3-4]。伊馬替尼(IMA)作為選擇性的酪氨酸激酶抑制劑,是CML首選靶向治療藥物,對初發(fā)慢性期CML患者可達到完全細胞遺傳學(xué)反應(yīng)(CCR),1 年無病生存率可達到 100%[5-6]。然而,IMA的耐藥現(xiàn)象在臨床中也并不鮮見。研究發(fā)現(xiàn),IMA的耐藥過程牽涉多種機制,α-1酸性糖蛋白AGP的產(chǎn)生、耐藥基因MDR-1的過度表達、BCR-ABL基因擴增或突變是耐藥產(chǎn)生的主要原因[7]。因此,如何治療IMA耐藥的CML是當(dāng)前臨床研究的熱點。

    近年研究發(fā)現(xiàn),細胞自噬性耐藥或是耐藥產(chǎn)生的一大機制。鉑類藥物、烷化劑等耐藥與細胞自噬的誘導(dǎo)有關(guān),CML化療常用藥物紫杉醇可以通過細胞自噬激活產(chǎn)生耐藥[8]。而臨床應(yīng)對此種耐藥常常會聯(lián)合使用自噬抑制劑。研究發(fā)現(xiàn),紫杉醇耐藥的CML細胞K562采用羥氯喹預(yù)處理,可以顯著提高細胞的藥物敏感性,機制在于羥氯喹抑制酸性囊泡的產(chǎn)生,間接抑制細胞自噬的發(fā)生[9-10]?;诖?,本研究將細胞自噬抑制劑羥氯喹聯(lián)合伊馬替尼作用于CML K562/IMA細胞株,觀察其對該細胞株耐藥的影響,并探討其作用機制,現(xiàn)報道如下。

    1 材料和方法

    1.1 材料 CML K562/IMA細胞株(嘉興市第二醫(yī)院實驗室自備,對10μmol/L的IMA耐藥),IMA和羥氯喹標(biāo)準(zhǔn)品(北京中科質(zhì)檢生物技術(shù)有限公司,批號7330441、100582),CCK-8檢測試劑盒(碧云天生物技術(shù)有限公司,批號 C0037),Transwell小室(康寧公司),Annexin V-FITC/PI細胞凋亡雙染試劑盒(美國BD公司),單丹磺酰尸胺(MDC)染色試劑盒(北京雷根生物技術(shù)有限公司,批號25875),免疫熒光染色試劑盒(碧云天生物技術(shù)有限公司,批號 P0179),LC3Ⅰ/Ⅱ、p62、Beclin-1 以及Bax、Bcl-2、Caspase-3、Caspase-9 的單克隆抗體(Cell Signaling Technology公司,批號4108、39749、3495、2772、3498、9662、9502)。電子分析天平(梅特勒-托里多儀器有限公司,型號ME204E),DP11顯微鏡(日本奧林巴斯公司),PCR儀(型號 BS97MyCycler),Western blot電泳儀(型號1658001),F(xiàn)ACS CantoⅡ流式細胞儀(美國BD公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng)與分組 K562/IMA細胞株復(fù)蘇后,采用RPMI 1640完全培養(yǎng)基+10%FBS培養(yǎng),待細胞生長至對數(shù)期后,將細胞分為對照組(Con組)、IMA干預(yù)組(IMA組)、羥氯喹+IMA干預(yù)組(HCQ+IMA組)。Con組為常規(guī)培養(yǎng)的細胞,無藥物干預(yù);IMA組采用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng);HCQ+IMA組采用含10μmol/L羥氯喹的培養(yǎng)基培養(yǎng)(預(yù)處理)12h后,再用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng)。

    1.2.2 CCK-8法檢測細胞增殖率 將對數(shù)生長期的K562/IMA細胞接種到96孔板中,IMA組和HCQ+IMA組采用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng)。設(shè)置時間點為0、6、12、18、24、30、36h,待培養(yǎng)完成后加入 10μl的CCK-8溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4h,用酶標(biāo)儀在480nm處檢測吸光度(A值)。細胞增殖率(%)=[A(加藥)-A(空白)] /[A(對照)-A(空白)] ×100%

    1.2.3 Annexin V-FITC/PI染色后流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡率 將對數(shù)生長期的K562/IMA細胞接種到6孔板中,IMA組和HCQ+IMA組采用濃度為10μmol/L的IMA干預(yù),加藥后培養(yǎng)24h,收集細胞后加入Binding Buffer重懸。而后加入Annexin V-FITC液10μl混勻,避光反應(yīng)10min,再加入10μl的 PI染色避光反應(yīng)10min,PBS洗去多余染色液后,采用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。

    1.2.4 Transwell小室實驗檢測細胞侵襲能力 將對數(shù)生長期的K562/IMA細胞加入Transwell小室,IMA組和HCQ+IMA組采用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)基中不加FBS,而24孔板下室加入完全培養(yǎng)基,培養(yǎng)基含10%的FBS,待培養(yǎng)24h后取出小室,棄去培養(yǎng)基,甲醇固定后用0.1%的結(jié)晶紫染色,棉簽擦去上層未遷移的細胞后鏡下觀察。

    1.2.5 免疫熒光染色檢測細胞自噬激活標(biāo)志蛋白LC3Ⅰ/Ⅱ表達 將對數(shù)生長期的K562/IMA細胞接種到6孔板中,IMA組和HCQ+IMA組采用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng),將細胞培養(yǎng)基棄去,用甲醇固定后自然干燥,PBS洗3次,1%的Triton液處理30min,羊血清處理 30min,LC3Ⅰ/Ⅱ一抗(1∶500)稀釋后在 4℃下孵育過夜,次日用PBS洗凈一抗,二抗標(biāo)記后晾干封片;使用熒光分光光度計檢測熒光強度。

    1.2.6 MDC染色檢測細胞酸性囊泡 將對數(shù)生長期的K562/IMA細胞接種到6孔板中,IMA組和HCQ+IMA組采用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng)6h后棄去培養(yǎng)基,用去離子水稀釋漂洗液 Wash Buffer(1∶1 稀釋),細胞用稀釋后的Wash Buffer重懸后調(diào)整細胞濃度為106/ml,加入MDC染色液染色后室溫避光染色30min,染色后用Wash Buffer清洗,滴加細胞液在載玻片上,熒光顯微鏡下觀察,激發(fā)波長為355nm,阻斷波長為512nm,計染色陽性(黃綠色)細胞數(shù)。

    1.2.7 Western blot法檢測細胞自噬相關(guān)蛋白p62、Beclin-1 及凋亡相關(guān)蛋白 Bax、Bcl-2、Caspase-3、Caspase-9的表達 將對數(shù)生長期的K562/IMA細胞接種到6孔板中,IMA組和HCQ+IMA組采用含10μmol/L IMA的培養(yǎng)基培養(yǎng)24h后收集各組細胞。PBS洗2次后,在冰上加入NP-40裂解液100μl裂解30min,3 000r/min離心后收集上清液;BCA法進行蛋白定量后調(diào)整蛋白濃度,根據(jù)蛋白分子量分別配置8%~12%的SDS-PAGE凝膠,取蛋白液用5×上樣緩沖液Loading Buffer補充體積至20μl,煮沸8min后進行電泳,電壓80V,之后轉(zhuǎn)換為120V,將凝膠去除后進行PVDF膜的轉(zhuǎn)膜;采用300mA恒流轉(zhuǎn)膜0.5~2h,PVDF膜使用5%脫脂奶粉封閉2h;TBST稀釋一抗,一抗孵育后PVDF膜用TBST洗2次再用辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗孵育。孵育完成后用化學(xué)發(fā)光法檢測,采用Image Pro-Plus 6.0軟件進行光密度分析,以GAPDH為內(nèi)參,結(jié)果以目的蛋白與內(nèi)參蛋白光密度值比表示。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 應(yīng)用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件;計量資料以表示,多組比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗;P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 3組細胞增殖率比較 見圖1。

    圖1 3組細胞增殖率比較(與Con組比較,*P<0.05;與IMA組比較,△P<0.05)

    由圖 1 可見,培養(yǎng) 6、12、18、24、30、36h 時,3 組細胞增殖率比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),且HCQ+IMA組<IMA組<Con組(均P<0.05)。Con組細胞0~36h時間段內(nèi)呈增殖狀態(tài),隨著時間的延長,細胞增殖率增高;IMA組細胞隨著時間的延長,細胞增殖率無明顯變化,說明細胞生長受到抑制;HCQ+IMA組細胞隨著時間的延長,細胞增殖率出現(xiàn)負增長,且細胞活力逐漸降低。這說明,羥氯喹預(yù)處理后,IMA可以明顯抑制K562/IMA細胞的增殖。

    2.2 3組細胞凋亡率比較 見圖2。

    圖2 3組細胞流式細胞圖比較

    由圖2可見,Con、IMA、HCQ+IMA組細胞凋亡率分別為(0.98±0.22)%、(15.35±2.14)%、(38.65±5.32)%,3 組細胞凋亡率比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),且HCQ+IMA組>IMA組>Con組(均P<0.05)。

    2.3 3組細胞侵襲能力比較 見圖3。

    由圖3可見,Con、IMA、HCQ+IMA組細胞遷移數(shù)目分別為(59.32±8.32)、(63.22±7.52)、(25.32±5.32)個/視野,3組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);兩兩比較,HCQ+IMA組<Con組(P<0.05),HCQ+IMA組<IMA組(P<0.05),Con組與IMA組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。即HCQ+IMA組細胞侵襲能力低于Con、IMA組。

    2.4 3組細胞自噬激活標(biāo)志蛋白LC3Ⅰ/Ⅱ表達情況比較 見圖4。

    由圖4可見,Con組細胞LC3Ⅰ/Ⅱ蛋白為陰性表達,細胞中幾乎無LC3Ⅰ/Ⅱ蛋白的表達,說明細胞自噬未激活;IMA組細胞LC3Ⅰ/Ⅱ蛋白熒光強度明顯高于Con組;而HCQ/IMA組細胞與IMA組比較,LC3蛋白熒光強度明顯降低,說明細胞自噬受到了抑制。

    圖3 Transwell小室檢測3組細胞侵襲能力顯微鏡下所見(結(jié)晶紫染色,×200)

    圖4 3組細胞自噬激活標(biāo)志蛋白LC3Ⅰ/Ⅱ表達情況比較(免疫熒光染色,×400)

    2.5 3組細胞酸性囊泡染色陽性細胞數(shù)比較 見圖5。

    圖5 3組細胞酸性囊泡染色陽性細胞數(shù)比較(MDC染色,×200)

    由圖5可見,Con、IMA、HCQ+IMA組酸性囊泡染色陽性細胞數(shù)分別為(16.36±2.56)、(56.35±6.68)、(35.65±3.25)個/視野,3組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),且IMA組>HCQ+IMA組>Con組(均P<0.05)。即羥氯喹干預(yù)后可以減少細胞中酸性囊泡的形成。

    2.6 3組細胞自噬相關(guān)蛋白p62、Beclin-1及凋亡相關(guān)蛋白 Bax、Bcl-2、Caspase-3、Caspase-9 表達情況比較見圖6-7。

    圖6 3組細胞自噬相關(guān)蛋白p62、Beclin-1表達情況比較(與Con組比較,*P<0.05;與IMA組比較,△P<0.05)

    圖7 3組細胞凋亡相關(guān)蛋白Bax、Bcl-2、Caspase-3、Caspase-9表達情況比較(與Con組比較,*P<0.05;與IMA組比較,△P<0.05)

    由圖6可見,3組細胞自噬相關(guān)蛋白p62、Beclin-1表達水平比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。細胞自噬底物蛋白p62表達水平兩兩比較,Con組(0.80±0.11)>HCQ+IMA 組(0.35±0.05)>IMA 組(0.12±0.11)(均P<0.05);自噬啟動調(diào)節(jié)蛋白Beclin-1表達水平兩兩比較,IMA 組(0.62±0.08)>Con組(0.42±0.10)、HCQ+IMA 組(0.40±0.03)(均 P<0.05),而 Con 組與HCQ+IMA組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。由圖7可見,3 組細胞凋亡相關(guān)蛋白 Bax、Bcl-2、Caspase-3、Caspase-9表達水平比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。凋亡蛋白 Bax、Caspase-3、Caspase-9 表達水平兩兩比較,Con 組(0.32±0.05、0.20±0.03、0.15±0.03)<IMA組(0.52±0.06、0.32±0.05、0.26±0.03)<HCQ+IMA 組(1.15±0.13、0.45±0.06、0.42±0.03)(均 P<0.05);抗凋亡蛋白Bcl-2表達水平兩兩比較,Con組(0.50±0.05)>IMA 組(0.13±0.02)>HCQ+IMA 組(0.06±0.01)(均 P<0.05)。

    3 討論

    20世紀(jì)90年代問世的IMA是一種選擇性的酪氨酸激酶抑制劑,大量的臨床試驗已經(jīng)證明,400mg/d劑量的IMA長期服用可以使得80%以上的初發(fā)期CML患者達到CCR,而急性期的患者可以到34%以上,是一種治療CML的有效藥物。但是長期使用IMA,部分患者會出現(xiàn)耐藥,這種耐藥主要指慢性期患者未出現(xiàn)完全血液學(xué)反應(yīng)或者加速期和急變期患者未有效達到慢性期[11]。對于IMA的耐藥,目前臨床應(yīng)對方法十分有限,加大IMA劑量是常用的方法。有研究發(fā)現(xiàn),IMA劑量增加到600mg/d或800mg/d對30%~50%繼發(fā)性耐藥患者有效,但是持續(xù)時間較短,且往往還會增加不良反應(yīng)的發(fā)生[12-13],所以該方法的可行性還有待進一步研究。也有研究發(fā)現(xiàn),對于IMA耐藥可以采用與信號傳導(dǎo)通路的抑制劑聯(lián)用,比如Ras途徑抑制劑、PI3K途徑抑制劑等[14],但是該類藥物聯(lián)合使用的作用機制未明,臨床推廣需要進一步深入的研究。

    細胞自噬是細胞適應(yīng)性生長、分化、凋亡所必須的一種生理現(xiàn)象。在腫瘤組織中,細胞自噬起到雙重作用,一方面細胞自噬可以保護正常細胞,抑制腫瘤細胞的生長,另一方面可以抵制外界環(huán)境對于腫瘤細胞的損傷,進一步促進腫瘤細胞的生長。近年研究發(fā)現(xiàn),在腫瘤耐藥中,細胞自噬起了關(guān)鍵的作用[15-16]。MYC抑制劑預(yù)處理人前列腺上皮細胞后,對雷帕霉素不敏感,細胞自噬水平降低[17]。急性淋巴細胞白血病細胞會通過自噬對糖皮質(zhì)激素產(chǎn)生耐藥[18]。而細胞自噬的產(chǎn)生和用藥劑量及用藥時長有關(guān)。有研究發(fā)現(xiàn),小劑量的抗腫瘤藥物使用可以使腫瘤細胞迅速啟動自噬,細胞通過自噬清除損傷的細胞器等,從而獲得更好的抗性[19]。

    筆者團隊在前期研究中發(fā)現(xiàn),抑制Beclin-1基因的表達可以提高K562/IMA細胞對于IMA的敏感性[20]。這提示,細胞自噬的激活在K562細胞對IMA耐藥中起一定的作用。羥氯喹是一種臨床常用的類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎治療藥物。本研究結(jié)果顯示,羥氯喹可以抑制K562/IMA細胞自噬過程中酸性囊泡的產(chǎn)生,抑制自噬流的傳遞。本研究將羥氯喹聯(lián)合IMA作用于K562/IMA細胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn),羥氯喹預(yù)處理后可以顯著提高細胞對于IMA的敏感性,細胞凋亡率增高,同時增殖率下降,相比單用IMA具有明顯差異。IMA處理K562/IMA細胞可以提高LC3Ⅰ/Ⅱ蛋白的表達。LC3Ⅰ/Ⅱ是自噬激活的標(biāo)志蛋白,用于自噬體的形成,而使用羥氯喹預(yù)處理后,LC3Ⅰ/Ⅱ蛋白的表達明顯受抑制。p62是自噬底物蛋白,在自噬發(fā)生后表達降低,而羥氯喹預(yù)處理后可以提高K562/IMA細胞p62表達水平;同時,細胞凋亡相關(guān)蛋白表達水平提高。這可以說明,K562/IMA細胞啟動了凋亡程序,IMA在耐藥株中重新獲得了細胞殺傷的能力。

    綜上所述,本研究結(jié)果顯示,羥氯喹可以逆轉(zhuǎn)IMA耐藥的CML K562細胞對IMA的敏感性,其作用機制或與抑制細胞自噬有關(guān)。

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