• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      熊果酸對人結腸癌HT—29細胞增殖抑制和誘導凋亡的研究

      2016-11-30 07:28:21江華張奕穎尹素改
      中國醫(yī)藥導報 2016年25期
      關鍵詞:靶細胞果酸顯微鏡

      江華++++++張奕穎++++++尹素改++++++張小莉++++++馮黎++++++劉勝利++++++張秋萍

      [摘要] 目的 探討熊果酸(UA)誘導人結腸癌細胞HT-29凋亡的作用機制。 方法 MTT法觀察UA對HT-29細胞增殖的抑制作用;熒光顯微鏡和流式細胞術觀察HT-29細胞的凋亡情況;Western blot檢測細胞色素c(cyt-c)、caspase-3及Livin蛋白的表達。 結果 UA對HT-29細胞具有明顯的的增殖抑制作用,并呈一定的濃度和時間依賴性;熒光顯微鏡觀察結果顯示,50 μmol/L的UA作用24 h后,較多細胞呈現(xiàn)出凋亡的特征性改變;流式細胞術檢測發(fā)現(xiàn),UA可將HT-29細胞阻滯于G1期,隨著UA濃度的增高,細胞凋亡率也相應增加;Western blot結果顯示,UA作用24 h后,Livin蛋白和caspase-3酶原的表達逐漸降低,線粒體釋放的cyt-c逐漸增多,活化的caspase-3片段逐漸增加。 結論 UA對HT-29細胞具有明顯的增殖抑制作用,其機制可能與UA阻滯HT-29細胞的細胞周期、激活線粒體凋亡途徑以及下調(diào)凋亡抑制蛋白Livin的表達有關。

      [關鍵詞] 熊果酸;人結腸癌細胞HT-29;凋亡

      [中圖分類號] R735.3+5 [文獻標識碼] A [文章編號] 1674-4721(2016)09(a)-0025-05

      [Abstract] Objective To investigate the apoptosis-inducing mechanism of ursolic aicd (UA) in human colon cancer cell HT-29. Methods The inhibitory effect of UA on the growth of HT-29 cells was evaluated by MTT assay. Apoptosis was determined by fluorescence microscopy and flow cytometry. The expressions of apoptosis-associated proteins including cytochrome c (cyt-c), caspase-3 and Livin were assessed by Western blot analysis. Results UA inhibited HT-29 cell proliferation in a time- and dose-dependent manner. Fluorescent microscope indicated characteristics of apoptosis present in cells after UA-treated (50 μmol/L, 24 h). Flow cytometry showed that UA inhibited HT-29 in G1 phase, and the apoptosis rate of HT-29 cell exposured to UA increased, corresponding to the concentration of UA. The inceasing of the release of cyt-c from the mitochondria and the activated fragment of caspase-3 were detected by Western blot, while the expression of procaspase-3 and Livin was decreased gradually. Conclusion UA can inhibit the proliferation of HT-29 cells effectively in vitro. The mechanism of above-mentioned phenomena may be related with the arrest effect of UA in the cell cycle of HT-29, activated mitochondrial apoptotic pathway, and down-regulating the expression of Livin.

      [Key words] Ursolic acid; Human colon cancer cell HT-29; Apoptosis

      熊果酸(Ursolic acid,UA),又叫烏蘇酸、烏索酸,它在自然界中存在廣泛,是熊果、白花蛇舌草、烏梅等多種植物的主要活性成分,具有多種生物學活性,包括護肝[1]、抗炎[2-3]、抗血管生成[4]、降血糖[5]以及抗腫瘤[6-8]等作用?,F(xiàn)在人們?nèi)找嬷匾昒A的抗腫瘤作用,它可以抑制腫瘤細胞的轉(zhuǎn)移、減少腫瘤血管的生成、誘導腫瘤細胞的凋亡等,但UA通過何種途徑誘導腫瘤細胞的凋亡尚不完全清楚。本實驗研究了UA對HT-29細胞增殖和凋亡的影響,并探討其可能的作用機制。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      人結腸癌細胞HT-29購自北京大學;UA、胰酶、四甲基偶氮唑藍(MTT)、DMSO、Hoechst33258和碘化丙啶(PI)染料均購自Sigma公司;RPMI-1640培養(yǎng)基購自HYCLONE公司;新生小牛血清購自杭州四季青有限公司;鼠抗人cyt-c單克隆抗體和鼠抗人caspase-3單克隆抗體均購自Neomarkers公司;鼠抗人Livin單克隆抗體購自Stratagene Corporation公司;Western blot試劑盒購自Kirkegaard Perry Laboratories公司;二氧化碳細胞培養(yǎng)箱為美國NUAIRE公司產(chǎn)品;熒光酶標儀為TECAN公司產(chǎn)品,型號:GENiOS VA200;流式細胞儀為BECKMAN產(chǎn)品。

      1.2 方法

      1.2.1 細胞培養(yǎng) 用含10%新生小牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基于37℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)HT-29細胞,每2~3天傳代1次,用對數(shù)生長期的細胞進行實驗。

      1.2.2 MTT法檢測UA對HT-29細胞的增殖抑制情況 將HT-29細胞調(diào)節(jié)濃度至5×104個/mL,加入96孔培養(yǎng)板中,待其貼壁后加入UA,使終濃度分別為10、20、30、40、50 μmol/L,并設立不含UA(0 μmol/L)的對照組,每組設3個復孔,各組中DMSO的最終含量均為0.5%(V/V)。將96孔板放在培養(yǎng)箱中分別培養(yǎng)12、24、36、48 h后加入5 mg/mL的MTT溶液20 μL,然后置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄上清,每孔加入DMSO 100 μL,震蕩混勻后用酶標儀在570 nm波長下檢測各孔的吸光值(OD值)。計算細胞增殖抑制率=[(對照組OD值-實驗組OD值)/對照組OD值]×100%。

      1.2.3 熒光顯微鏡觀察細胞凋亡情況 將HT-29細胞接種于24孔培養(yǎng)板中,接種濃度為1.25×105個/mL,加入UA至終濃度為50 μmol/L,同時設立不含UA(0 μmol/L)的對照組。UA作用24 h后,0.25﹪胰酶消化,2000 r/min離心10 min收獲細胞,PBS洗滌,加入Hoechst 33258染液避光孵育10 min。離心棄上清,加入PI染液4℃孵育30 min,離心,PBS洗滌,滴片,用熒光顯微鏡進行觀察。

      1.2.4 流式細胞術(FCM)檢測細胞周期和細胞凋亡率 分別以0、20、30、40、50 μmol/L的UA作用于HT-29細胞24 h,胰酶消化,離心棄上清,冷PBS洗2次,用預冷的70%乙醇4℃固定過夜。離心棄固定液,冷PBS洗2次,棄上清,加入RNA酶(1 mg/mL)240 μL,37℃水浴箱中放置30 min,加入PI染液避光染色30 min,流式細胞儀檢測。

      1.2.5 Western blot檢測蛋白表達 將HT-29細胞以5×106個/mL濃度培養(yǎng)于培養(yǎng)瓶中,加入UA使其終濃度分別為0、20、30、40、50 μmol/L作用24 h后,2000 r/min離心10 min,PBS洗滌,棄上液。分別加入100 μL蛋白裂解液裂解30 min,離心取上清,熒光酶標儀檢測蛋白濃度。各實驗組蛋白液與等體積上樣緩沖液混勻,煮沸3 min,以15%SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白,并轉(zhuǎn)印蛋白至硝酸纖維素膜。然后將其放在封閉液中封閉2 h,分別加入鼠抗人cyt-c單克隆抗體、鼠抗人caspase-3單克隆抗體和鼠抗人Livin單克隆抗體,4℃孵育2 h。TBS漂洗3次,加入辣根過氧化物酶標記的二抗室溫孵育1 h。TBS漂洗3次,用Western blot蛋白質(zhì)印跡(ECL)檢測試劑盒檢測,并用圖像分析軟件分析蛋白條帶的光密度。

      1.3 統(tǒng)計學方法

      采用SPSS 21.0統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(x±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,以P < 0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結果

      2.1 UA對HT-29細胞的增殖抑制作用

      MTT結果表明,UA對人結腸癌細胞HT-29具有增殖抑制作用,并呈現(xiàn)出明顯的劑量和時間依賴性(圖1)。直線回歸方程顯示,UA作用于HT-29細胞12、24、36、48 h,其IC50值分別為(52.73±1.50)、(43.23±1.94)、(37.39±1.69)、(32.04±1.16)μmol/L。

      2.2 熒光顯微鏡觀察細胞凋亡情況

      熒光顯微鏡觀察結果顯示,50 μmol/L的UA作用于HT-29細胞24 h后,許多細胞呈現(xiàn)出凋亡的特征性改變,HT-29細胞內(nèi)的染色質(zhì)分布不均勻,呈濃染的塊狀或顆粒狀;而0 μmol/L的UA作用24 h后,HT-29細胞內(nèi)的染色質(zhì)分布比較均勻,呈均勻彌散的藍白色熒光。壞死細胞呈紅色熒光(圖2,封三)。

      2.3 流式細胞術(FCM)檢測細胞周期及細胞凋亡率情況

      細胞經(jīng)不同濃度UA作用24 h后,隨著UA濃度的增加,G0/G1期細胞比例逐漸增高,S期細胞比例逐漸降低;流式細胞儀分析顯示,隨著UA濃度的增高,在G1期前出現(xiàn)亞二倍體峰(細胞凋亡峰)逐漸增高,與0 μmol/L UA比較,凋亡率差異有高度統(tǒng)計學意義(P < 0.01)。見表1、圖3。

      2.4 Western blot檢測Livin、caspase-3、cyt-c蛋白表達情況

      Western blot結果顯示,隨著UA濃度(0、20、30、40、50 μmol/L)的增加,Livin蛋白和caspase-3酶原蛋白表達逐漸降低,而從線粒體中釋放出來的cyt-c逐漸增多,活化后的caspase-3片段的表達也逐漸升高,與0 μmol/L UA比較,差異有統(tǒng)計學意義(P < 0.05)。見圖4。

      3 討論

      UA在自然界中分布較為廣泛,具有多種多樣的生物學效應,其突出作用是抗腫瘤,它對多種致癌物有抵抗作用,并且對多種惡性腫瘤細胞具有明顯的細胞毒作用、誘導分化以及抗血管生成作用。因此,人們越來越重視UA的抗癌防癌作用。

      本試驗研究了UA對于人結腸癌HT-29細胞的作用,細胞增殖抑制實驗表明從30 μmol/L起,UA開始較顯著地抑制HT-29細胞的增殖作用,并呈濃度和時間依賴性。

      PI只能透過壞死的細胞膜與細胞核結合,因此在紫外光激發(fā)下壞死細胞呈紅色。而Hoechst 33258屬于脂溶性染液,可以通過完整的細胞膜與靶細胞的細胞核結合,在紫外光的激發(fā)下會發(fā)出藍白色熒光。若細胞核染色均勻一致,呈彌散的藍白色熒光,則是活細胞;若細胞核染色不均勻,呈現(xiàn)出濃染的塊狀或顆粒狀,則是凋亡細胞。本試驗中采用Hoechst 33258和PI染色,通過熒光顯微鏡觀察HT-29細胞的凋亡現(xiàn)象,發(fā)現(xiàn)在50 μmol/L UA作用下,比較多的HT-29細胞呈現(xiàn)出凋亡的改變,其細胞內(nèi)染色質(zhì)分布不均勻,在熒光顯微鏡下可看到熒光斑點形成,而0 μmol/L的UA作用24 h后,HT-29細胞的細胞膜完整,染色質(zhì)分布均勻,呈彌散的藍白色熒光。在兩個濃度的UA作用下都可以觀察到表現(xiàn)為紅色熒光的壞死細胞。

      通過FCM檢測發(fā)現(xiàn),UA可以將HT-29細胞阻滯在細胞周期的G1期,具體表現(xiàn)為G0/G1期的細胞比例增加,而S期的細胞比例降低。隨著熊果酸濃度的增加,HT-29細胞的凋亡率也在逐漸升高,體現(xiàn)在HT-29細胞的凋亡峰逐漸增高。因此,UA對HT-29細胞的凋亡作用可能是通過影響HT-29細胞從G1期向S期轉(zhuǎn)變,從而將該腫瘤細胞阻滯在G1期,減少了HT-29細胞進入S期的數(shù)量,從而抑制了腫瘤細胞DNA的復制,并導致HT-29細胞凋亡。

      研究表明,腫瘤的發(fā)生和失控性生長是細胞增殖和細胞凋亡兩個過程失衡的結果。參與細胞凋亡的通路有三條,線粒體通路[9]、死亡受體通路[10]和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)通路[11],而線粒體通路中細胞色素c(cyt-c)是關鍵的分子。當細胞受到損傷后,cyt-c從線粒體中釋放出來,與凋亡活化因子1(Apaf-1)結合,并且激活caspase-9的前體,再進一步激活caspase-3,引發(fā)caspase的級聯(lián)反應,而caspase活化以后又可以促進靶細胞內(nèi)的線粒體釋放cyt-c,同時其降解底物后的產(chǎn)物可以引起線粒體通透性的改變從而導致靶細胞凋亡的發(fā)生[12-15]。

      在細胞凋亡的過程中,天冬氨酸特異的半胱氨酸蛋白酶(caspase)發(fā)揮著很重要的作用。根據(jù)caspase在細胞凋亡中的作用和N-末端的長度,可以將其分成為兩大類:一類是起始型caspase(initiator caspase),如caspase-8、caspase-9,它們可以激活下游的caspase;另一類為效應型caspase(effector caspase),如caspase-3、caspase-6、caspase-7,它們可以直接降解靶細胞內(nèi)的相關功能蛋白,導致凋亡的發(fā)生。這些caspase都是以無活性的前體形式存在,需要相關的激活因子將其激活為活性形式后才能發(fā)揮作用[16]。

      在機體內(nèi)還存在有抗凋亡基因和其相關表達產(chǎn)物,凋亡抑制蛋白家族(inhibitor of apoptosis protein,IAPs)就是其中一類,它對于調(diào)節(jié)細胞凋亡具有重要的作用[17],某些IAPs成員的異常高表達可以導致細胞的凋亡過程受阻,其中,Livin是近些年來發(fā)現(xiàn)的人類IAP家族的新成員[18],它與腫瘤的發(fā)生有著密切的關系[19-21]。研究證實,IAPs主要通過與特異性的caspase蛋白結合并抑制caspase蛋白的活性,從而阻斷凋亡的發(fā)生[22-23]。

      本研究Western blot結果表明,UA作用24 h后,隨著藥物濃度的增加,15 kD處cyt-c的釋放增多,caspase-3酶原和Livin蛋白的表達降低,而活化后的caspase-3片段的表達逐漸增高。據(jù)此推測,UA有可能通過改變HT-29細胞內(nèi)線粒體膜的通透性,促進cyt-c的釋放,釋放出來的cyt-c進而導致caspase-3的活化。同時,UA還可以下調(diào)HT-29細胞內(nèi)Livin蛋白的表達,故UA有可能解除Livin蛋白對caspase-3的抑制作用。上述兩個過程均可以增強靶細胞內(nèi)caspase-3的活化作用,而活化的caspase-3可以作用于HT-29細胞質(zhì)中的相關細胞骨架蛋白,或者是作用于靶細胞內(nèi)的DNA酶,引起DNA的斷裂,從而導致HT-29細胞凋亡。

      綜上所述,在體外UA可明顯抑制HT-29細胞增殖,并誘導其凋亡,它的作用機制可能是通過下調(diào)HT-29細胞內(nèi)Livin蛋白的表達,促進線粒體內(nèi)膜中的cyt-c釋放到胞漿中,繼而激活caspase-3,導致靶細胞的凋亡,其具體分子機制還有待進一步研究。

      [參考文獻]

      [1] 歐陽燦暉,朱萱,張焜和,等.熊果酸對肝纖維化大鼠肝組織TGF-β1和α-SMA表達的影響[J].世界華人消化雜志,2009,17(22):2237-2243.

      [2] Wang YJ,Lu J,Wu DM,et al. Ursolic acid attenuates lipopolysaccharide induced cognitive deficits in mouse brain through suppressing p38/NF-κB mediated inflammatory pathways [J]. Neurobiol Learn Mem,2011,96(2):156-165.

      [3] 王翔,閻昭,王旭,等.熊果酸納米脂質(zhì)體的鎮(zhèn)痛作用和抗炎活性[J].山東醫(yī)藥,2013,53(29):31-32.

      [4] Kanjoormana M,Kuttan G. Antiangiogenic activity of ursolic acid [J]. Integr Cancer Ther,2010,9(2):224-235.

      [5] Lee J,Yee ST,Kin JJ,et al. Ursolic acid ameliorates thymic atrophy and hyperglycemia in streptozotocin-nicotinamide-induced diabetic mice [J]. Chem Biol Interact,2010,188(3):635-642.

      [6] Zhang T,HE YM,Wang JS,et al. Ursolic acid induces HL60 monocytic differentiation and up-regulates C/EBPβ expression by ERK pathway activation [J]. Anticancer Drugs,2011,22(2):158-165.

      [7] Yie YY,Zhao SY,Tang Q,et al. Ursolic acid inhibited growth of hepatocellular carcinoma HepG2 cells through AMPKα-mediated reduction of DNA methyltransferase 1 [J]. Mol Cell Biochem,2015,402(1):63-74.

      [8] 唐丹,李劍萍,鄭錫鳳,等.熊果酸通過STAT3信號通路調(diào)控胃癌細胞增殖和凋亡[J].中國藥理學通報,2012,28(2):179-184.

      [9] 鄭天勝,李翔.線粒體凋亡通路的研究進展[J].醫(yī)學綜述,2013,19(18):3282-3285.

      [10] Spencer SL,Sorger PK. Measuring and modeling apoptosis in single cells [J]. Cell,2011,144(6):926-939.

      [11] Breckenridge DG,Germain M,Mathai JP,et al. Regulation of apoptosis by endoplasmic reticulum pathways [J]. Oncogene,2003,22(53):8608-8618.

      [12] 宋必衛(wèi),樊俏玫,何治宇.線粒體calpains與細胞凋亡關系的研究進展[J].中國藥理學通報,2014,30(6):757-760.

      [13] Zhang S,Zhang Y,Zhuang Y,et al. Matrine induces apoptosis in human acute myeloid leukemia cells via the mitochondrial pathway and Akt inactivation [J]. PloS One,2012,7(10):e46853.

      [14] Herr I,Debatin K. Cellular stress response and apoptosis in cancer therapy [J]. Blood,2001,98(9):2603-2604.

      [15] Wang Z,Liu Y,Cui Y. Pathways to caspase activation [J]. Cell Biol Int,2005,29(7):489-496.

      [16] Thomberry NA,Lazebnik Y. Caspase:Enemies within [J]. Science, 1998,281(5381):1312-1316.

      [17] LaCasse EC,Baird S,Korneluk RG,et al. The inhibitors of apoptosis(IAPs)and their emerging role in cancer [J]. Oncogene,1998,17(25):3247-3259.

      [18] Kasof GM,Gomes BC. Livin,a novel inhibitor of apoptosis protein family member [J]. J Biol Chem,2001,276(5):3238-3246.

      [19] 楊立軍,鄭文武,周安傳,等.Livin蛋白生物學特性及在腫瘤表達中的研究進展[J].河北醫(yī)藥,2016,38(6):935-937.

      [20] 劉軍輝,趙永靈,喻軍.Livin蛋白表達于結直腸癌組織病理參數(shù)間關系研究[J].中華實用診斷與治療雜志,2015, 29(12):1160-1162.

      [21] 王留霞.Survivin和Livin在初診急性白血病患兒中的表達[J].腫瘤基礎與臨床,2015,28(3):200-202.

      [22] Li G,Zhang H,Liu Y,et al. Effect of temozolomide on livin and caspase-3 in U251 glioma stem cells [J]. Exp Ther Med,2015,9(3):744-750.

      [23] Hsieh CH,Lin YJ,Wu CP,et al. Livin contributes to tumor hypoxia-induced resistance to cytotoxic therapies in glioblastoma multiforme [J]. Clin Cancer Res,2015,21(2):460-470.

      猜你喜歡
      靶細胞果酸顯微鏡
      感冒了多睡覺,真的有用嗎
      新傳奇(2022年51期)2023-01-04 21:51:14
      雙色法和三色法檢測NK細胞殺傷功能的實用性比較
      你會使用顯微鏡嗎
      顯微鏡
      流式細胞術檢測NK細胞的細胞毒作用的兩種方法比較①
      高中生關于腫瘤基因治療前景及方法的學習與思考
      齊墩果酸固體分散體的制備
      中成藥(2018年10期)2018-10-26 03:40:56
      顯微鏡下看沙
      齊墩果酸衍生物的合成及其對胰脂肪酶的抑制作用
      熊果酸對肺癌細胞株A549及SPCA1細胞周期的抑制作用
      友谊县| 海晏县| 广饶县| 佛学| 沈丘县| 丹阳市| 保康县| 龙岩市| 濮阳县| 合阳县| 大姚县| 巴青县| 西乌珠穆沁旗| 武汉市| 渭南市| 卫辉市| 儋州市| 赣榆县| 昌图县| 孝昌县| 靖西县| 甘德县| 嘉鱼县| 黄大仙区| 昂仁县| 南江县| 巴南区| 郧西县| 斗六市| 荥经县| 武穴市| 叶城县| 梧州市| 双峰县| 财经| 新泰市| 普兰店市| 应用必备| 中阳县| 大渡口区| 临邑县|