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    大葉楊組培快繁體系的建立

    2015-04-29 00:44:03彭言劼李明勇趙亞津龐旭鳳宋春草熊瑞婷杜克兵
    湖北林業(yè)科技 2015年2期
    關(guān)鍵詞:組織培養(yǎng)

    彭言劼 李明勇 趙亞津 龐旭鳳 宋春草 熊瑞婷 杜克兵

    摘 要: 以大葉楊幼嫩的帶腋芽莖段為試材,建立以腋芽誘導(dǎo)途徑為基礎(chǔ)的植株組培快繁體系。結(jié)果表明:大葉楊腋芽誘導(dǎo)的最適宜培養(yǎng)基為MS+NAA0.1 mg/L+6BA0.1 mg/L,接種30 d,腋芽萌發(fā)率可達(dá)100%;最適宜增殖培養(yǎng)基為MS+NAA0.1 mg/L+6BA2.0 mg/L,培養(yǎng)30 d,增殖系數(shù)可達(dá)4.0,幼苗生長(zhǎng)健壯;最佳生根培養(yǎng)基為1/2MS+NAA0.1 mg/L+IBA0.2 mg/L,培養(yǎng)30 d,平均生根達(dá)4條,平均根長(zhǎng)為4.7 cm。

    關(guān)鍵詞: 大葉楊;組織培養(yǎng);腋芽誘導(dǎo);快繁體系

    中圖分類號(hào):S722.3+7;Q813.1+2 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1004-3020(2015)02-0013-04

    大葉楊Populus lasiocarpa 屬于楊柳科Salicacae楊屬大葉楊派Leucoides的一種植物,是楊屬植物中最古老最原始的樹種之一,為中國(guó)特有的鄉(xiāng)土樹種,原產(chǎn)于華中地區(qū),僅在湖北、陜西、四川、貴州和云南省有野生種分布,國(guó)外無野生種群分布[1-2]。大葉楊適宜海拔600~2 800 m的山地,具有較高的生態(tài)價(jià)值,其高山地區(qū)的適生性是山地楊樹育種的優(yōu)良基因資源。但是,迄今大葉楊仍處于野生狀態(tài),未得到有效保護(hù)與利用。因此,開展大葉楊種質(zhì)資源的保存與利用研究具有重要意義。

    已有研究顯示,大葉楊扦插成活率極低,不同生根劑處理的枝插成活率均為零,根插成活率亦低于15%。嫁接成活率相對(duì)較高,但對(duì)砧木要求特殊,目前僅發(fā)現(xiàn)山地楊與其具有較高的親和性[3]。這些都對(duì)大葉楊種質(zhì)資源的保存造成一定困難。組織培養(yǎng)是快速高效繁殖、保存種質(zhì)資源的重要方法。然而,目前大葉楊尚無這方面的報(bào)道。本研究以湖北省大葉楊優(yōu)良單株為試材,開展組織培養(yǎng)研究,建立高效組培快繁體系,以期為我國(guó)大葉楊優(yōu)良種質(zhì)資源的保存和利用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    從湖北省宜昌市樟村坪林場(chǎng),東經(jīng)111°4′~111°13′,北緯31°11′~31°18′,平均海拔1 100 m選擇大葉楊優(yōu)良單株,截取健壯的休眠枝條,帶回實(shí)驗(yàn)室水培催芽。

    1.2 無菌材料的獲得

    將帶腋芽的莖段置于飽和的洗衣粉溶液中浸泡10 min,取出洗凈后用流水沖洗1.5 h,并用蒸餾水潤(rùn)洗3遍,再于超凈工作臺(tái)中消毒。消毒方法為:先用70%的酒精浸泡30 s,隨后用無菌蒸餾水沖洗2遍,再用0.1%升汞溶液浸泡5 min(期間不斷晃動(dòng)),接著用無菌蒸餾水沖洗6次,所獲得的材料即為無菌的外植體。將帶腋芽的莖段切成長(zhǎng)1.5 cm左右的小段(帶1個(gè)腋芽),接種于腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,進(jìn)行腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)。

    1.3 腋芽誘導(dǎo)

    基本培養(yǎng)基選擇楊樹組織培養(yǎng)中最常用的MS培養(yǎng)基(pH=5.8)[4],選用6BA 4個(gè)濃度水平(0.1,0.5,1.0,2.0 mg/L)和NAA 2個(gè)濃度水平(0.1,0.5 mg/L),以及不含任何激素的MS培養(yǎng)基,共設(shè)計(jì)9種處理(表1),每處理4次重復(fù),每重復(fù)接種4個(gè)外植體。在對(duì)黑楊派楊樹組培的研究中發(fā)現(xiàn),雖然BA與NAA的比值高有利于芽的誘導(dǎo),但無NAA的培養(yǎng)基誘芽效果不及含有少量NAA的培養(yǎng)基[5],故本試驗(yàn)中均不設(shè)單一激素處理。培養(yǎng)條件為光照強(qiáng)度為1 500~2 000 lx,溫度(25±2)℃,光照時(shí)間16 h/d。接種10 d后統(tǒng)計(jì)污染率與褐化率,30 d后統(tǒng)計(jì)腋芽萌發(fā)率。其中,污染率(%)=污染的莖段數(shù)/接種的總莖段數(shù)×100%;褐化率(%)=褐化的莖段數(shù)/接種的總莖段數(shù)×100%;腋芽萌發(fā)率(%)=腋芽萌發(fā)的莖段數(shù)/接種的莖段數(shù)×100%。

    1.4 增殖培養(yǎng)

    將誘導(dǎo)萌發(fā)的腋芽切下,接種于增殖培養(yǎng)基中進(jìn)行增殖培養(yǎng)。以MS作為基本培養(yǎng)基,選用6BA 3個(gè)濃度水平(0.5,1.0,2.0 mg/L)和NAA 3個(gè)濃度水平(0.05,0.1,0.25 mg/L),共9個(gè)處理(表2),采用完全隨機(jī)試驗(yàn)設(shè)計(jì),每處理5次重復(fù),每重復(fù)接種3~4個(gè)腋芽,30 d后統(tǒng)計(jì)增殖系數(shù)及生長(zhǎng)情況。其中,增殖系數(shù)=30 d有效芽數(shù)/接種芽數(shù)。

    1.5 生根培養(yǎng)

    將增殖培養(yǎng)后高約2.0 cm的幼苗切下,接種于生根培養(yǎng)基中進(jìn)行生根培養(yǎng)。采用1/2MS培養(yǎng)基為基本培養(yǎng)基,激素選用NAA 2個(gè)濃度水平(0.1,0.2 mg/L)和IBA 3個(gè)濃度水平(0.1,0.2,0.4 mg/L),共6種處理(表3),每處理3次重復(fù),每重復(fù)接種4棵苗。30 d后統(tǒng)計(jì)生根數(shù)量及根長(zhǎng)。

    1.6 數(shù)據(jù)分析

    試驗(yàn)中的所有數(shù)據(jù)采用Excel2003軟件進(jìn)行處理,用SAS9.0進(jìn)行方差分析和多重比較。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同激素配比對(duì)大葉楊腋芽誘導(dǎo)的影響

    接種10 d后,腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)的莖段污染率為3.81%,褐化率為3.47%。外植體接種后,約7 d腋芽明顯膨大,12 d后腋芽開始萌發(fā),部分外植體基部膨大形成黃綠色愈傷組織(圖1A)。30 d 時(shí)統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示,外植體腋芽萌發(fā)率最低的培養(yǎng)基為IC1,僅為31.3%。6種培養(yǎng)基(IC2~I(xiàn)C4、IC6、IC8、IC9)的腋芽誘導(dǎo)率達(dá)到了75%以上,且相互之間差異不顯著(P>0.05)。其中,IC2的腋芽萌發(fā)率最高,達(dá)到100%,且莖段生長(zhǎng)正常,葉片鮮綠(表1,圖1A)。方差分析顯示,6BA及其與NAA的交互作用對(duì)腋芽誘導(dǎo)的影響達(dá)到極顯著水平(P<0.01),而NAA的影響不顯著(P>0.05)。隨著6BA濃度的升高,萌發(fā)的腋芽莖段幾乎不伸長(zhǎng),呈叢生狀。綜合萌發(fā)率與腋芽生長(zhǎng)性狀,選擇IC2(NAA 0.1 mg/L + 6BA 0.1 mg/L)為大葉楊腋芽誘導(dǎo)的最適培養(yǎng)基。

    2.2 增殖培養(yǎng)

    增殖培養(yǎng)過程中,幼苗在葉柄處產(chǎn)生腋芽,同時(shí)在基部切口處分化出不定芽(圖1B),或者基部膨大形成愈傷組織,再?gòu)挠鷤M織分化不定芽(圖1C)。9種培養(yǎng)基對(duì)增殖效果的影響極顯著(P<0.01)。方差分析顯示,NAA、6BA對(duì)增殖效果的影響皆達(dá)到極顯著水平(P<0.01),兩者的的交互作用對(duì)增殖效果的影響也達(dá)到顯著水平(P<0.05)。在NAA濃度不變的情況下,隨著6BA濃度的增加,增殖系數(shù)呈上升趨勢(shì)。6BA/NAA濃度的比值在20以上的3種培養(yǎng)基(PM2,PM3,PM6)的增殖系數(shù)顯著高于其他組合(P<0.05)。兩者的比值達(dá)到40時(shí)(PM3),導(dǎo)致幼芽長(zhǎng)勢(shì)弱,節(jié)間生長(zhǎng)不明顯,芽成簇狀芽。9種培養(yǎng)基中,PM6的增殖系數(shù)最高,達(dá)到4.0,且芽苗生長(zhǎng)健壯(圖1C),故認(rèn)為PM6(NAA 0.1 mg/L + 6BA2.0 mg/L)為大葉楊的最適增殖培養(yǎng)基。

    2.3 生根培養(yǎng)

    培養(yǎng)7 d后,幼苗逐漸從基部生出不定根,30 d時(shí)6種培養(yǎng)基中,幼苗生根率皆為100%(表3)(圖1D)。當(dāng)IBA濃度相同時(shí),0.1mg/L的NAA(R1,R3,R5)對(duì)生根的促進(jìn)作用顯著大于0.2 mg/L的NAA(P<0.05)。生根效果最好的是R3和R5,兩者間差異不顯著(P>0.05)。R5的生根條數(shù)最多(4.7根),平均根長(zhǎng)也最長(zhǎng)(5.27 cm)(表3),但基部膨大形成愈傷組織,煉苗時(shí)易造成根系折斷。R3的生根條數(shù)為4條,平均長(zhǎng)度為4.7 cm(表3),且根系分支發(fā)達(dá)(圖1D),幼苗生長(zhǎng)健壯。因此,選擇R3(NAA0.1 mg/L+IBA0.2 mg/L)培養(yǎng)基為大葉楊最適生根培養(yǎng)基。

    3 討論

    利用組織培養(yǎng)進(jìn)行種質(zhì)資源離體保存,不僅能在短時(shí)間內(nèi)獲得大量的無性系,而且有占據(jù)空間小,節(jié)約土地資源和降低保存成本等優(yōu)勢(shì)[6]。目前,已有許多物種利用組培進(jìn)行種質(zhì)資源離體保存的報(bào)道,例如葡萄[7]、柑桔[8]等,也有大量楊樹組織培養(yǎng)快繁的報(bào)道,如箭桿楊[6]、鉆天楊[9]、山新楊[10]等。本研究以大葉楊腋芽誘導(dǎo)途徑建立了較高效的組培快繁體系,實(shí)現(xiàn)了大葉楊利用組培方法進(jìn)行種質(zhì)資源的離體保存。

    NAA已被報(bào)道普遍使用于楊樹及其他植物的組織培養(yǎng)中,對(duì)培養(yǎng)結(jié)果影響顯著,而大葉楊腋芽誘導(dǎo)的方差分析結(jié)果表明,NAA對(duì)誘芽效果的影響不顯著(p>0.05),試分析原因可能是本研究中NAA濃度取值范圍太小,NAA的誘芽效果在此范圍內(nèi)差異不顯著,亦可能是大葉楊對(duì)NAA不敏感。后者與全永壽等[3]用不同生根劑處理大葉楊枝條進(jìn)行扦插無成活的情況相符。

    除了激素的種類和濃度對(duì)植物產(chǎn)生的影響外,激素間的不同配比對(duì)組培效果的影響也很重要。于志水等[5]在黑楊派楊樹的組培體系研究中發(fā)現(xiàn),6BA和NAA的比值對(duì)芽誘導(dǎo)具有調(diào)控作用,比值越大越有利于芽誘導(dǎo)。本研究增殖培養(yǎng)中觀察到的相似的情況。高比值(20以上)的組合對(duì)芽的誘導(dǎo)有明顯的促進(jìn)作用,在比值相同,激素濃度不同時(shí)也有相似的效果(PM2與PM6)(表2)。但是,過高濃度的6BA(PM3)會(huì)造成芽苗長(zhǎng)勢(shì)弱,基部葉片大,節(jié)間生長(zhǎng)不明顯,形成簇狀芽。這種叢生芽不僅在繼代操作中不易切割開,而且在后來的培養(yǎng)中易畸形或玻璃化[11,12]。

    生根是組織培養(yǎng)中的一個(gè)關(guān)鍵環(huán)節(jié),生根是否成功可以決定能否得到一棵完整的植株。而大葉楊扦插繁殖幾乎不能成活,原因可能是不易生根。本研究采用了兩個(gè)促進(jìn)生根的措施解決了這個(gè)問題,一是使用無機(jī)元素減半的1/2MS作為基本培養(yǎng)基促進(jìn)側(cè)根的發(fā)育[13];二是采用IBA與NAA兩種促進(jìn)生根的激素組合。付成華[14]在對(duì)常綠楊生根培養(yǎng)時(shí)發(fā)現(xiàn),過高濃度的IBA會(huì)使根系纖細(xì),毛狀根少,基部產(chǎn)生膨大的愈傷。本研究中在IBA濃度達(dá)到0.4 mg/L(R5)時(shí),植株基部膨大,根系細(xì),分支少,而在0.2 mg/L的IBA(R3)中生長(zhǎng)的植株根系粗壯,分支發(fā)達(dá)(圖1D)。

    參 考 文 獻(xiàn)

    [1]洪濤,麻左力,陳敬詩(shī).大葉楊花部形態(tài)及其在楊屬的分類位置[J].Acta Botanica Sinica, 1987,29(3):236241.

    [2]朱彤,李文鈿.大葉楊胚囊及胚珠的形成和發(fā)育[J].武漢植物學(xué)研究,1989,7(1):1322.

    [3]全永壽,楊年友,李玲,等.鄂西大葉楊快速繁育技術(shù)研究[J].湖北林業(yè)科技,2008,(5):3233.

    [4]Wang Huimei,Liu Hongmei,Wang Wenjie,et al. Effects of Thidiazuron, basal medium and light quality on adventitious shoot regeneration from in vitro cultured stem of Populus alba×P.berolinensis. [J].Journal of Forestry Research,2008, 19(3), 257259

    [5]于志水,金紅,苘勝軍,等.黑楊派楊樹組培再生系統(tǒng)的研究[J].遼寧林業(yè)科技,2002,(6):1113.

    [6]陶延珍,李楓,李毅.箭桿楊組織培養(yǎng)再生體系的建立[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2008,36(3):203207.

    [7]張利平,曹孜義,李唯.多效唑在葡萄試管種質(zhì)常溫保存中的應(yīng)用[J].園藝學(xué)報(bào),1994,21(4):389391.

    [8]王大元,李建知,彭素蘭,等.用組織培養(yǎng)方法保存柑桔種質(zhì)的初步研究[J].園藝學(xué)報(bào),1979,6(2):9597.

    [9]祖元?jiǎng)?,劉紅梅,王慧梅,等.鉆天楊的組織培養(yǎng)與植株再生[J].植物生理學(xué)通訊,2007,43(3):522522.

    [10]張冰玉,蘇曉華,鄭書星.山新楊葉片高頻率植株再生體系建立及其遺傳穩(wěn)定性[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2008,30(3):6873.

    [11]李昆.I-63楊和I-69楊組織培養(yǎng)研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2007.

    [12]浦艷吉,李國(guó)懷,姚延興,等.李莖尖離體培養(yǎng)與植株再生[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2009,28(2):214217.

    [13]祁春芳,鄭智禮.白楊派楊樹組培技術(shù)研究.山西林業(yè)科技[J],2000,(4):2123.

    [14]付成華.黑楊派楊樹再生體系建立的研究[D].武漢:華中農(nóng)大學(xué),2005.

    (責(zé)任編輯:鄭京津)

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