張秀麗 孫 麗 樊 怡 王力寧 馬健飛
腹膜透析(PD)是終末期腎病的主要替代療法之一,盡管技術(shù)不斷進(jìn)步,腹膜炎仍然是其主要并發(fā)癥和退出PD的主要原因,其中表皮葡萄球菌是其主要致病菌[1]。Toll樣受體(TLR)是重要的膜受體家族,近年來,TLR在機(jī)體防御反應(yīng)中的作用備受關(guān)注,其介導(dǎo)的天然免疫反應(yīng)是機(jī)體對(duì)感染因素入侵的第一道防線。迄今為止,TLR家族已經(jīng)發(fā)現(xiàn)10個(gè)成員[2-4]。其中TLR2和 TLR6主要識(shí)別革蘭陽性菌成分[5,6]。核因子 κB(NF-κB)是一種重要的核轉(zhuǎn)錄因子,普遍存在于體內(nèi)快反應(yīng)有核細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中,位于TLR下游信號(hào)通路的樞紐位置,通過調(diào)節(jié)免疫和炎癥相關(guān)因子及炎性遞質(zhì)之間的級(jí)聯(lián)放大瀑布效應(yīng),在炎癥和免疫反應(yīng)中起樞紐作用[7,8]。姜黃素具有多方面的藥理作用機(jī)制,在基因和細(xì)胞信號(hào)通路多水平上具有抗炎、抑菌、抗氧化應(yīng)激、抗癌、免疫調(diào)節(jié)等方面的復(fù)合特性[9]。姜黃素可下調(diào)多種炎癥相關(guān)因子,如白細(xì)胞介素6(IL-6),腫瘤壞死因子α(TNF-α)以及化學(xué)增活素[10]。這些炎癥因子都是TLR家族在免疫調(diào)節(jié)途徑中的下游因子。然而,表皮葡萄球菌誘發(fā)急性腹膜炎時(shí),姜黃素對(duì)腹膜組織TLR2和TLR6的表達(dá)有何影響,如何調(diào)節(jié)NF-κB信號(hào)通路及其炎癥效應(yīng)等問題目前尚無相關(guān)報(bào)導(dǎo)。因此,本研究擬探討姜黃素干預(yù)PD相關(guān)性腹腔局部炎癥的作用及其機(jī)制。
材料 清潔級(jí)SD雄性大鼠80只(體重250~300g),由中國醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
儀器 切片機(jī)(JUNG CM1800,Leica,德國);蛋白電泳儀(MINI-PROTEIN II,BIO-RAD,美國),DNA擴(kuò)增儀(UNOI248 BIOMETRAGER,德國)等。
主要試劑 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(杭州博日),NF-κB多克隆抗體 (Santa Cruz)。大鼠TNF-α ELISA試劑盒(武漢博士德公司);表皮葡萄球菌由中國醫(yī)科大學(xué)臨床微生物室饋贈(zèng)。菌液的制備:將表皮葡萄球菌菌株接種于300 ml腦心浸液肉湯培養(yǎng)基,以150 r/min 37℃震蕩培養(yǎng)過夜。4℃下6 000 r/min離心取沉淀。用50 ml預(yù)冷的生理鹽水混勻同前離心取沉淀,同法洗菌3次。最后沉淀用20 ml預(yù)冷的鹽水混勻,配制濃度為5×1010CFU/ml的菌液4℃保存?zhèn)溆?。根?jù)以往文獻(xiàn)[11]及預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,繪制回歸曲線計(jì)算半數(shù)致死量LD50,選擇實(shí)驗(yàn)細(xì)菌濃度為107CFU/ml。
分組 80只清潔級(jí)SD雄性大鼠,分為三組:對(duì)照組20只,模型組及姜黃素處理組各30只。對(duì)照組大鼠腹腔注射PBS,而模型組則腹腔注射表皮葡萄球菌溶液(107CFU/ml,溶于 PBS)[11]。姜黃處理組在注射表皮葡萄球菌前24h,先腹腔注射姜黃素(50 mg/kg,溶于二甲基亞砜)[12]。分別于感染后3h,6h,12h,24h,48h 后將大鼠處死并取材。
標(biāo)本留取和檢測 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物乙醚麻醉后,沿腹白線剪開腹壁,用滅菌吸管吸腹水1ml注于EDTA試管中做腹水檢測。然后迅速取出腹膜,部分材料浸入4%多聚甲醛溶液內(nèi)固定24h(4℃),常規(guī)制備連續(xù)石蠟切片,用于免疫組織化學(xué)染色。部分材料深凍冰箱凍存,用于檢測Western Blot及RT-PCR實(shí)驗(yàn)。
HE染色 取石蠟包埋的臟層和壁層腹膜組織,做2 μm切片,60℃烘干融蠟,然后以二甲苯脫蠟,將切片置于蘇木精染色液中15~20 min后沖洗;切片置于0.5%HCL乙醇中數(shù)秒,水洗3次后稍浸泡;常規(guī)方法HE染色,光鏡下觀察病理改變結(jié)果。
免疫組織化學(xué)染色 石蠟切片10 μm經(jīng)二甲苯脫蠟,PBS沖洗,微波煮沸抗原修復(fù),自然冷卻,PBS沖洗。用于NF-κB免疫組化染色的標(biāo)本,5%BSA室溫孵育1h,NF-κB 抗體(1∶100)4℃孵育過夜,0.01M PBS充分漂洗,生物素-山羊抗兔IgG(1∶200)室溫孵育2h,0.05M Tris-HCl充分漂洗,SABC 試劑室溫孵育1h,漂洗后二甲基聯(lián)苯胺(DAB)和 H2O2Tris-HCL緩沖液顯色10 min,蒸餾水沖洗終止反應(yīng),甲苯胺蘭復(fù)染,常規(guī)梯度酒精脫水、二甲苯透明、中性樹膠封片,光學(xué)顯微鏡下觀察并采集圖像和分析,圖片經(jīng)Photoshop CS4軟件處理并打印。
Western Blot 樣品剪碎后加入裂解液4℃過夜。考馬斯亮藍(lán)法進(jìn)行蛋白定量,各組取等量蛋白,聚丙酰胺凝膠電泳分離,并轉(zhuǎn)至PVDF膜上;脫脂奶粉溶液封閉3~7h;一抗4℃孵育過夜;二抗常溫下孵育2h;然后進(jìn)行顯色、曝光、膠片掃描、定量分析。
RT-PCR 采用Trizol一步法提取大鼠腹膜總RNA,然后進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄。采用引物為:TLR2(5'-GGAGGTGTTGGATGTTAG-3';5'-GCTTGAAGGGTGG GTC-3');TLR6(5'-ACTCACCAGAGGTCCAA-3';5'-GGATGAATGGCGTGTC-3')。PCR 擴(kuò)增后,PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物用3%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分離觀察,成像,Image-pro Plus 6.0軟件包分析。
ELISA法檢測腹水TNF-α的表達(dá) 按照TNF-α ELISA試劑盒操作說明測定大鼠腹水中TNF-α蛋白濃度,450 nm波長測量各孔的光密度值,TNF-α含量計(jì)算結(jié)果以pg/ml表示。
統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 全部數(shù)據(jù)采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件分析。計(jì)量資料用ˉx±s表示,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
腹膜組織學(xué)改變 模型組和姜黃素處理組大鼠腹腔注射表皮葡萄球菌后,腹膜出現(xiàn)水腫和細(xì)胞形態(tài)改變。選取腹腔注射表皮葡萄球菌后24h的腹膜切片、HE染色發(fā)現(xiàn),模型組腹膜組織損傷嚴(yán)重,出現(xiàn)水腫,細(xì)胞變形、碎裂;姜黃素處理組也存在一定程度的腹膜組織損傷,但程度輕于模型組(圖1)。
NF-κB免疫組織化學(xué)染色 NF-κB免疫陽性反應(yīng)主要位于腹膜間皮細(xì)胞層(圖2)。NF-κB免疫組織化學(xué)染色逐漸增強(qiáng),在24h達(dá)高峰,故選擇24h作為本組實(shí)驗(yàn)的時(shí)間點(diǎn)。與模型組相比,姜黃素處理組NF-κB免疫組織化學(xué)染色在注射表皮葡萄球菌后明顯減弱。
圖1 大鼠腹腔注射表皮葡萄球菌后24h的腹膜形態(tài)學(xué)改變(HE,×400)1A:對(duì)照組;1B:模型組腹膜組織損傷嚴(yán)重,出現(xiàn)水腫,細(xì)胞變形、碎裂;1C:姜黃素處理組也存在一定程度的腹膜組織損傷,但程度輕于模型組圖2 臟層腹膜核因子κB(NF-κB)染色(IH,×400)2A:對(duì)照組;2B:模型組NF-κB免疫陽性反應(yīng)主要位于腹膜間皮細(xì)胞層;2C:與模型組相比,姜黃素處理組NF-κB免疫組織化學(xué)染色在注射表皮葡萄球菌后明顯減弱
TLR2和TLR6 mRNA表達(dá) 采用RT-PCR技術(shù)對(duì)TLR2和TLR6 mRNA水平表達(dá)進(jìn)行了分析(圖3)。圖3A為TLR2和TLR6 mRNA表達(dá)的典型條帶。在各個(gè)時(shí)間點(diǎn),TLR2和TLR6 mRNA表達(dá)趨勢一致,在感染后6~24h呈時(shí)間依賴性上升。與模型組相比,姜黃素處理組TLR2和TLR6 mRNA表達(dá)明顯減少并具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖3B)。
NF-κB表達(dá) 采用 Western Blot技術(shù)對(duì) NF-κB的蛋白表達(dá)水平進(jìn)行分析(圖4)。統(tǒng)計(jì)結(jié)果表明,與模型組相比,姜黃素處理組NF-κB蛋白表達(dá)含量明顯下降。
腹水TNF-α 表皮葡萄球菌刺激3h后,腹水TNF-α水平逐漸升高至48h后有所回降。與模型組相比,姜黃素處理組TNF-α表達(dá)含量在感染后6h、12h及24h明顯下降(P<0.01)(圖5)。
圖3TLR2和TLR6的RT-PCR檢測結(jié)果
圖4 NF-κB表達(dá)的Western Blot檢測結(jié)果
圖5 大鼠腹水TNF-α蛋白表達(dá)變化
反復(fù)發(fā)生腹膜炎可致PD患者營養(yǎng)不良、腹膜硬化黏連及超濾能力喪失,是患者退出PD的主要原因。表皮葡萄球菌是PD相關(guān)性腹膜炎的重要致病菌,極易耐藥且很難徹底清除。因此,探討其致病機(jī)制和預(yù)防措施具有重要臨床意義[13]。TLR是迄今認(rèn)識(shí)的第一個(gè)機(jī)體通過感知微生物病原體直接做出防御反應(yīng)的天然免疫受體。研究表明各類TLR表達(dá)在參與宿主第一線防御的細(xì)胞上,如來自腸道和肺的巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、上皮細(xì)胞及內(nèi)皮細(xì)胞,表明TLR在發(fā)現(xiàn)微生物和激活特異性免疫系統(tǒng)中的重要作用[2]。TLR通過病原分子相關(guān)模式(pathogen-associated molecular patterns,PAMS)對(duì)配體進(jìn)行識(shí)別。TLR6不直接識(shí)別配體,而是通過與TLR2配對(duì)形成異源二聚體的形式發(fā)揮作用[14]。Aderem等[2]研究提示TLR2和TLR6協(xié)同作用可能參與對(duì)所有TLR2配體的識(shí)別,而且實(shí)驗(yàn)還證實(shí)融合的TLR2和TLR6可以抑制其配體的激活過程。本研究采用RT-PCR技術(shù)證實(shí)正常大鼠腹膜組織中存在TLR2和TLR6的少量表達(dá),而模型組的大鼠腹膜組織TLR2和TLR6基因表達(dá)較對(duì)照組明顯增加,說明其與表皮葡萄球菌腹膜炎相關(guān),且隨著感染時(shí)間的延長,模型組的大鼠腹膜組織TLR2和TLR6的基因表達(dá)逐漸增加。腹膜組織內(nèi)的細(xì)菌載量亦隨之增加,故可以認(rèn)為腹膜組織TLR2和TLR6基因表達(dá)增加與其細(xì)菌載量增加激活TLR2和TLR6有關(guān)。
動(dòng)物體內(nèi)存在許多信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,TLR-NF-κB-細(xì)胞因子通路是其中之一,其主要作用是調(diào)控機(jī)體內(nèi)在免疫反應(yīng)。TLR通過 PAMS激活 MyD88,使IL-1相關(guān)激酶1(IRAK-1)磷酸化并與腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子6(TRAF6)結(jié)合,參與激活轉(zhuǎn)化生長因子β的蛋白激酶1(TAKI)和TAKI結(jié)合蛋白1和2(TAB1,TAB2)的復(fù)合物的形成,TAKI激活 NF-κB蛋白激酶(IKK)和有絲分裂原激活蛋白激酶(MKK)復(fù)合物后,IκB 磷酸化使 NF-κB 移位至核內(nèi),刺激炎癥性細(xì)胞因子產(chǎn)生,觸發(fā)天然免疫反應(yīng),最終引起獲得性細(xì)胞免疫反應(yīng)以促進(jìn)病原體的清除。NF-κB是一種多效應(yīng)轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,是介導(dǎo)炎癥反應(yīng)強(qiáng)弱的核心[15]。本實(shí)驗(yàn)中大鼠腹腔注射表皮葡萄球菌后,腹膜組織NF-κB表達(dá)明顯增多;此外,表皮葡萄球菌刺激3h后,大鼠腹膜組織TNF-α顯著激活,并持續(xù)至24h。TNF-α 是 TLR 和 NF-κB信號(hào)通路中的下游重要炎性因子,也是腹膜炎的特征性細(xì)胞因子之一。TNF-α一方面對(duì)保護(hù)性免疫起著關(guān)鍵性的作用,體內(nèi)適量的TNF-α對(duì)機(jī)體抗感染有一定的保護(hù)作用;另一方面,TNF-α還是一種多效性的細(xì)胞因子,分泌過多時(shí)可致瀑布效應(yīng)使炎癥加重,同時(shí)激活的NF-κB及下游炎性因子TNF-α可促進(jìn)TLR2和TLR6的轉(zhuǎn)錄表達(dá),形成TLR的自身循環(huán)。所以有必要對(duì)炎癥反應(yīng)進(jìn)行適當(dāng)?shù)目刂疲?6]。Margetts等[17]用腺病毒介導(dǎo)的IL-1β基因與 TNF-α基因轉(zhuǎn)染至大鼠腹腔,可致明顯的腹膜炎癥及纖維化。
姜黃素是姜黃中提取的一種植物多酚,是其發(fā)揮藥理作用最重要的活性成分。近年的研究證實(shí)姜黃素具有抗炎、抑菌、抗氧化、清除氧自由基、保護(hù)肝臟和腎臟、抗纖維化以及防癌抗癌等作用。本研究證實(shí)姜黃素可下調(diào)表皮葡萄球菌誘導(dǎo)的大鼠腹膜炎癥過程中TLR2,TLR6以及NF-κB的過表達(dá)。既往研究證實(shí),姜黃素作為過氧化物酶增生物激活受體(PPAR)表型之一的 PPAR-γ激動(dòng)劑可通過抑制NF-κB 途徑來抑制炎癥反應(yīng)[17]。PPAR-γ 可直接與NF-κB的亞基p65/p50結(jié)合,發(fā)生蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用,形成轉(zhuǎn)錄抑制復(fù)合物,降低了 NF-κB與DNA結(jié)合活性,抑制NF-κB的DNA合成,從而抑制其表達(dá)[18]。有研究表明,姜黃素能夠降低急性胰腺炎過程中TNF-α的表達(dá)和下調(diào)炎癥介質(zhì)的釋放,進(jìn)而減輕胰腺組織損傷和系統(tǒng)性炎癥反應(yīng)[19]。本研究結(jié)果提示,在表皮葡萄球菌誘導(dǎo)的急性大鼠腹膜炎中TNF-α的表達(dá)明顯上調(diào),而姜黃素能夠有效抑制TNF-α的過表達(dá),對(duì)TLR具有負(fù)性調(diào)節(jié)作用,進(jìn)而減輕腹膜的炎癥反應(yīng)。
小結(jié):本實(shí)驗(yàn)證實(shí),在表皮葡萄球菌誘發(fā)的急性腹膜炎過程中,姜黃素在基因水平抑制了TLR2和TLR6的表達(dá),同時(shí)下調(diào)NF-κB及其下游炎癥因子TNF-α的表達(dá),減輕腹膜組織損傷。本研究提示姜黃素在表皮葡萄球菌誘導(dǎo)的炎性反應(yīng)中起到一定的保護(hù)作用,為PD相關(guān)腹膜炎及腹膜纖維化的防治提供了新思路。
1 Baciulis V,Jankauskiene A,Cerkauskiene R.Incidence of peritonitis and catheter exit site infection in children undergoing automatic continuous cyclic peritoneal dialysis.Medicina(Kaunas),2003,(39 Suppl 1):70-74.
2 Aderem A,Ulevitch RJ.Toll-like receptors in the induction of the innate immune response.Nature,2000,406(6797):782 -787.
3 Takeuchi O,Kawai T,Sanjo H,et al.TLR6:A novel member of an expanding toll-like receptor family.Gene,1999,231(1 -2):59 -65.
4 Du X,Poltorak A,Wei Y,et al.Three novel mammalian toll-like receptors:gene structure,expression,and evolution.Eur Cytokine Netw,2000,11(3):362 -371.
5 Yoshimura A,Lien E,Ingalls RR,et al.Cutting edge:recognition of Gram-positive bacterial cell wall components by the innate immune system occurs via Toll-like receptor 2.J Immunol,1999,163(1):1-5.
6 Lien E,Sellati TJ,Yoshimura A,et al.Toll-like receptor 2 functions as a pattern recognition receptor for diverse bacterial products.J Biol Chem,1999,274(47):33419-33425.
7 Mehlin C,Headley CM,Klebanoff SJ.An inflammatory polypeptide complex from Staphylococcus epidermidis:isolation and characterization.J Exp Med,1999,189(6):907 -918.
8 Muzio M,Ni J,F(xiàn)eng P,et al.IRAK(Pelle)family member IRAK-2 and MyD88 as proximal mediators of IL-1 signaling.Science,1997,278(5343):1612-1615.
9 Strimpakos AS,Sharma RA.Curcumin:preventive and therapeutic properties in laboratory studies and clinical trials.Antioxid Redox Signal,2008,10(3):511 -545.
10 Jagetia GC,Aggarwal BB.“Spicing up”of the immune system by curcumin.J Clin Immunol,2007,27(1):19 -35.
11 Ni J,Moulin P,Gianello P,et al.Mice that lack endothelial nitric oxide synthase are protected againstfunctionaland structural modifications induced by acute peritonitis.J Am Soc Nephro,l 2003,14(12):3205-3216.
12 Yu WG,Xu G,Ren GJ,et al.Preventive action of curcumin in experimental acute pancreatitis in mouse.Indian J Med Res,134(5):717-724.
13 Monsen T,Olofsson C,R?nnmark M,et al.Clonal spread of staphylococciamong patients with peritonitis associated with continuous ambulatory peritoneal dialysis.Kidney Int,2000,57(2):613-618.
14 Hajjar AM,O'Mahony DS,Ozinsky A,et al.Cutting edge:functional interactions between toll-like receptor(TLR)2 and TLR1 or TLR6 in response to phenol-soluble modulin.J Immunol, 2001,166(1):15-19.
15 Zhang G,Ghosh S.Toll-like receptor-mediated NF-kappaB activation:a phylogenetically conserved paradigm in innate immunity.J Clin Invest,2001,107(1):13 - 19.
16 Medzhitov R,Preston-Hurlburt P,Janeway CA Jr,et al.A human homologue of the Drosophila Toll protein signals activation of adaptive immunity.Nature,1997,388(6640):394 -397.
17 Margetts PJ,Kolb M,Yu L,etal.Inflammatory cytokines,angiogenesis,and fibrosis in the rat peritoneum.Am J Pathol,2002,160(6):2285-2294.
18 Kunnumakkara AB,Anand P,Aggarwal BB.Curcumin inhibits proliferation,invasion,angiogenesis and metastasis of different cancers through interaction with multiple cell signaling proteins.Cancer Lett,2008,269(2):199 -225.
19 Gulcubuk A,Altunatmaz K,Sonmez K,et al.Effects of curcumin on tumour necrosis factor-alpha and interleukin-6 in the late phase of experimental acute pancreatitis.J Vet Med A Physiol Pathol Clin Med,2006,53(1):49 -54.