中圖分類號(hào):S682;S432 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1006-060X(2025)06-0090-06
引用格式:,等.湖南金絲皇菊花葉病害病原物鑒定[J].湖南農(nóng)業(yè)科學(xué),2025(6):90-95.DOI:10.16498/j.cnki.hnnykx.2025.006.016
Identification of Pathogens Causing Mosaic Disease of Chrysanthemum morifolium 'Jinsi Huangju' in Hunan Province
HOU Jia-yi 1,2,3 ,LI Ling',CHEN Xue-feng1,WU Bo-shun1,XIANG Li-li1,23,YU Xiao-ying 1,2,3 , XU Lu12.:
(1.Colegeoficuue,aricalUstsh,;.ndropalQality andUtilizationeinoeahntegh8C;3esnbratorygsha)
Abstract:To identifythe pathogens causingtypical mosaicdiseaseofChrysanthemum morifolium'Jinsi Huangju’inHunan,we colected the leaves withmosaic diseasesymptoms from the Hongcichrysanthemum plantingbase.RT-PCRamplification,enzymelinkedimmunosorbentassay(ELISA),andnegativestaining electronmicroscopywereemployedtoidentifythepathogensithee dimensions ofucleotide sequence,morphology,and protein specificity.RT-PCRamplifcationofthediseased leaves producedtwo targetbands,which wereat thesizessimilartothetarget gene lengthsofchrysanthemum chlorotic motleviroid(CChMVdand chrysanthemum virus B(CVB).ELISA confirmed the presenceof CVB-specific protein in the diseased leaves.Negative staining of the suspension preparedwiththediseasedleavesrevealedpathogencomponentintwodiferentshapes,whichweresimilarto morphologicalstructureofCChMVdandCVB.Thephylogenetic treeshowcasedthattheisolate(viroid)fromHunansharedthesame clade with four reference isolates (e.g., CChMVd,F(xiàn)J647546.1) from Spain, with the sequence similarityof 87% .In addition, the isolate (virus)fromHunansharedthe sameclade withthat fromNanjing (CVB,JQ904595.1),withthe sequencesimilarityof 100% .In conclusion,CChdandCBarethepathogenscausingmosaicdiseaseofC.morifoliumJinsiHuangju'inHunan,andteobied infection of the two viruses leads to the occurrence of this disease.
Key Words:Chrysanthemum morifolium'Jinsi Huangju'; virus identification; CChMVd; CVB; RT-PCR
金絲皇菊(Chrysanthemummorifolium'JinsiHuangju')為藥食兼用型大花茶菊,不僅富含黃酮類、多糖和氨基酸等多種藥用活性成分,還極具觀賞價(jià)值[1-3]。隨著國家鄉(xiāng)村振興戰(zhàn)略的深人實(shí)施,金絲皇菊在湖南部分縣域地區(qū)已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了規(guī)?;N植,成為當(dāng)?shù)剞r(nóng)業(yè)特色支柱產(chǎn)業(yè)。由于金絲皇菊的規(guī)模化種植主要依賴無性繁殖,易導(dǎo)致病毒和類病毒積累,引發(fā)花葉、褪綠斑、分枝減少、不現(xiàn)蕾和不開花等癥狀,嚴(yán)重時(shí)整株枯死,造成種質(zhì)退化和產(chǎn)量下降等問題[4-5]。菊花極易受到病毒和類病毒侵染,目前全球已報(bào)道的侵染菊花的病原體超過20種,包括菊花B病毒[ChrysanthemumvirusB(CVB)]、煙草花葉病毒[Tobaccomosaicvirus(TMV)]、番茄花葉病毒[Tomatomosaicvirus(ToMV]、番茄不孕病毒[Tomatoaspermyvirus(TAV)]、菊花褪綠斑駁類病毒[Chrysan-themumchloroticmottleviroid(CChMVd)]、菊花矮化類病毒[Chrysanthemumstuntviroid(CSVd)]等。這些病原體引發(fā)的病害在我國多個(gè)菊花主產(chǎn)區(qū)頻繁發(fā)生,嚴(yán)重制約著產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展[。近年來,湖南部分種植區(qū)的金絲皇菊出現(xiàn)了花葉癥狀,導(dǎo)致產(chǎn)區(qū)菊花產(chǎn)量和品質(zhì)降低,而關(guān)于其病原物鑒定的研究尚未見報(bào)道。因此,采用高效、快速的檢測方法確定湖南金絲皇菊花葉癥狀的病原物種類,對(duì)當(dāng)?shù)鼐栈ú『Φ木珳?zhǔn)防控、產(chǎn)量品質(zhì)提升及抗病種質(zhì)篩選均具有重要意義[7-9]。當(dāng)前,植物病毒及類病毒病原鑒定方法主要包括逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)[10-12]、實(shí)時(shí)熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qRT-PCR)[13]和酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)[14]等。其中,qRT-PCR需使用精密熒光定量PCR儀,存在設(shè)備成本投人高、RNA提取技術(shù)要求高和操作復(fù)雜等問題;相比之下,RT-PCR對(duì)設(shè)備要求低、操作簡單且成本低廉,適用于病原物的快速初篩和常規(guī)檢測;ELISA法用于植物病毒檢測具有靈敏度高、應(yīng)用范圍廣、特異性強(qiáng)、設(shè)備自動(dòng)化程度高和成本較低等優(yōu)勢,其與分子檢測方法(如RT-PCR/qRTPCR)結(jié)合使用時(shí)可形成優(yōu)勢互補(bǔ)[15-16]。
研究以湖南洪慈菊花種植基地內(nèi)出現(xiàn)花葉癥狀的金絲皇菊植株病葉為試驗(yàn)樣本,通過RT-PCR擴(kuò)增測序、負(fù)染色電鏡觀察法和酶聯(lián)免疫吸附法,從核酸序列、形態(tài)結(jié)構(gòu)及蛋白質(zhì)特異性3個(gè)維度明確導(dǎo)致金絲皇菊花葉病害的病原物種類,以期為當(dāng)?shù)亟鸾z皇菊種植產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展提供技術(shù)指導(dǎo)。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
調(diào)查顯示,發(fā)病植株呈現(xiàn)明顯的病害感染癥狀,具體表現(xiàn)為:老葉呈紫紅色病變,紫紅色由葉片頂端向葉柄蔓延,花后病狀加重,病變范圍覆蓋全株葉片,部分葉片伴隨壞死斑(圖1A、D);花瓣邊緣同樣呈現(xiàn)紫紅色暈染且花朵畸形(圖1B);新葉脈間褪綠,腳芽新葉感病癥狀尤為明顯(圖1C、E、F)。供試材料于2020年春季采集自湖南省醴陵市茶山鎮(zhèn)洪慈菊花規(guī)模種植基地,選取呈現(xiàn)花葉癥狀的15株金絲皇菊植株,采摘病葉樣本置于無菌無酶 50mL 離心管中,冰上暫存后液氮速凍,于 -80°C 冰箱中保存。檢測于2020年5月至2021年5月在內(nèi)完成。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1RT-PCR檢測采用RNA提取試劑盒TRIGeneReagent(GenStar)提取病葉樣本總RNA,經(jīng)cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒TransScript?FlyFirst-StrandcDNASynthesisSuperMix(TransGenBiotech)將其反轉(zhuǎn)錄成cDNA,置于 -20°C 冰箱保存?zhèn)溆??;贜CBIGenBank中收錄的5種病原體(CVB、CChMVd、TAV、ToMV、TMV)的特異性目的片段,利用PrimerPremier5.0軟件進(jìn)行引物設(shè)計(jì),由生工生物工程(上海)股份有限公司(以下簡稱生工生物)合成5對(duì)特異性引物(表1。以cDNA為模板進(jìn)行擴(kuò)增后,對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳檢測。
1.2.2RT-PCR產(chǎn)物的克隆測序與分析使用PCR產(chǎn)物純化試劑盒B518141-0050(SangonBiotech)純化RT-PCR產(chǎn)物,得到目的DNA片段。利用第二代TOPO克隆試劑盒C601-01(Vazyme)將提純的目的DNA連接到T載體上,重組質(zhì)粒。將重組后的質(zhì)粒轉(zhuǎn)入 DH5a 感受態(tài)細(xì)胞中,吸取轉(zhuǎn)化后的菌液均勻涂布于含 100μg/mL 氨芐青霉素的LB固體培養(yǎng)基中進(jìn)行篩選,于 38°C 培養(yǎng) 12~18h ,挑取4個(gè)飽滿的白色單菌落,接種至預(yù)先制備的LB液體培養(yǎng)基(含氨芐青霉素 100μg/mL ), 38°C 、 200r/min 振蕩培養(yǎng) 12~18h ,抽取 400μL 菌液送至生工生物測序。1.2.3負(fù)染色電鏡觀察法取新鮮金絲皇菊病葉 10g 參照韋石泉等[的方法制備懸浮液,置于 2mL 離心管中, 4°C 避光封存。參照王學(xué)東等[18]的方法直接進(jìn)行負(fù)染色體制樣,將制備的樣本置于電鏡(FEITecnaiG2Spirit)中觀察。
1.2.4酶聯(lián)免疫吸附法參照何詠怡等[19的方法調(diào)整試驗(yàn)條件,取1g金絲皇菊病葉于液氮速凍研磨成粉,加入 9mL 磷酸緩沖液( 0.01molL,pH 值7.2\~7.4)研磨勻漿,將勻漿液分裝至 2mL 離心管中, 4000r/min 離心 15min ,取上清液按CVB酶聯(lián)免疫分析試劑盒(CB12257-Pt,COIBOBIO)說明書進(jìn)行操作,測定完成后分析結(jié)果。設(shè)置空白對(duì)照組、陽性對(duì)照組和陰性對(duì)照組。若陽性對(duì)照組OD值 gt;0.8 ,陰性對(duì)照組OD值 lt;0.2 ,則試驗(yàn)結(jié)果有效;判斷閾值 Σ=Σ 陰性對(duì)照OD值 +0.15 ,若試驗(yàn)組OD值 gt; 閾值,則試驗(yàn)結(jié)果為陽性;若試驗(yàn)組OD值 lt; 閾值,則試驗(yàn)結(jié)果為陰性。
1.2.5系統(tǒng)發(fā)育分析將克隆測序結(jié)果與NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì),采用Neighbor-Joining法在MEGA11軟件中構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,通過Bootstrap檢驗(yàn)(1000次重復(fù))評(píng)估節(jié)點(diǎn)支持率,分析目標(biāo)序列的親緣關(guān)系。
1.3 數(shù)據(jù)處理與分析
使用Excel2017進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)、整理和計(jì)算分析;使用MEGA11軟件繪制系統(tǒng)發(fā)育樹。
2 結(jié)果與分析
2.1 RT-PCR檢測結(jié)果
RT-PCR檢測結(jié)果如圖2所示,金絲皇菊病葉樣本中擴(kuò)增出2條目的條帶,其特異性擴(kuò)增片段大小約為250和 750bp ,分別與CChMVd和CVB的目的基因片段長度相近。此外,未檢測到其他目標(biāo)病毒(類病毒)的特異性目的條帶,初步證明金絲皇菊樣本中存在CChMVd和CVB的復(fù)合侵染,
2.2 酶聯(lián)免疫檢測結(jié)果
金絲皇菊病葉樣本的ELISA檢測結(jié)果顯示,空白對(duì)照組、陽性對(duì)照組和陰性對(duì)照組的OD值分別為0.044、1.301和0.084,均在標(biāo)準(zhǔn)范圍內(nèi)。CVB檢測的OD值為0.269,大于閾值(0.234),檢測結(jié)果為陽性。酶聯(lián)免疫檢測結(jié)果證實(shí)供試樣本中存在CVB的特異性蛋白結(jié)構(gòu)。
2.3 負(fù)染色電鏡觀察結(jié)果
經(jīng)負(fù)染色電鏡觀察發(fā)現(xiàn),用病葉樣本制備的懸浮液中存在兩種形態(tài)的病原組分:一種為環(huán)狀且有錘頭狀結(jié)構(gòu),無蛋白質(zhì)外殼,可見內(nèi)部結(jié)構(gòu),其大小約 200nm (圖3A),符合錘頭狀類病毒的結(jié)構(gòu)特征,與CChMVd形態(tài)結(jié)構(gòu)特征一致;一種單個(gè)粒子大小約 600nm ,呈桿狀結(jié)構(gòu),有蛋白質(zhì)外殼,內(nèi)部結(jié)構(gòu)不可見(圖3B),與CVB粒子的形態(tài)結(jié)構(gòu)特征一致。
2.4 系統(tǒng)發(fā)育樹分析
通過對(duì)RT-PCR產(chǎn)物的克隆測序及NCBI比對(duì)分析確認(rèn),金絲皇菊病葉樣本中同時(shí)存在CChMVd和CVB。系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖4)顯示,湖南地區(qū)分離物(類病毒)與西班牙發(fā)現(xiàn)的4個(gè)參考分離物(CChMVd,F(xiàn)J647546.1等)聚在同一分支,相似度為 87% ,親緣關(guān)系較近。圖5顯示,湖南地區(qū)分離物(病毒)與南京發(fā)現(xiàn)的分離物(CVB,JQ904595.1)序列相似度達(dá) 100% ,二者處于同一進(jìn)化分支,具有高度同源性。
3 討論與結(jié)論
金絲皇菊作為一種兼具藥用價(jià)值、觀賞價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值的特色作物,在中醫(yī)藥、園藝景觀和鄉(xiāng)村振興等領(lǐng)域展現(xiàn)出較高的綜合價(jià)值和廣闊的應(yīng)用前景[19-20]。然而,病毒或類病毒的侵染會(huì)對(duì)菊花的新陳代謝過程造成干擾,導(dǎo)致生長遲緩、植株矮化、花朵畸形、花色異常以及扦插成活率降低等一系列問題[14.21-22]。因病毒或類病毒引發(fā)的病害不僅影響金絲皇菊的產(chǎn)量和品質(zhì),還可能通過無性繁殖材料傳播,造成病害大面積擴(kuò)散,對(duì)產(chǎn)業(yè)可持續(xù)發(fā)展構(gòu)成嚴(yán)重威脅。因此,開展病原物精準(zhǔn)檢測與鑒定工作,不僅有助于科學(xué)防控病害,更是保障金絲皇菊品質(zhì)和產(chǎn)量的關(guān)鍵舉措之一。
研究通過系統(tǒng)的植物病毒與類病毒檢測,揭示了湖南洪慈菊花種植基地金絲皇菊花葉病害的病原物特征。試驗(yàn)結(jié)果顯示,湖南病葉樣本分離物(類病毒)與已知西班牙分離物(CChMVd,F(xiàn)J647546.1等)的系統(tǒng)發(fā)育相似度為 87% ,聚在同一分支;湖南病葉樣本分離物(病毒)與南京分離物(CVB,JQ904595.1)同源性高達(dá) 100% ,同屬一個(gè)分支。因此,可以確定該基地金絲皇菊花葉類病害是由菊花褪綠斑駁類病毒(CChMVd)和菊花B病毒(CVB)復(fù)合侵染引發(fā)。CChMVd和CVB這兩種病原物主要通過無性繁殖苗及汁液接觸傳播,傳播范圍涵蓋全球多個(gè)國家和地區(qū)[23-26]。其中,CChMVd侵染現(xiàn)象主要在菊花中被發(fā)現(xiàn),侵染后會(huì)導(dǎo)致菊花葉片褪綠斑駁、植株生長不良和花朵產(chǎn)量減少等問題;而CVB浸染可能引發(fā)菊花花葉、紅葉和矮化等癥狀,其在觀賞菊和栽培菊中普遍存在,發(fā)病率達(dá)40%[27-28]
此外,當(dāng)菊花受到多種病原物復(fù)合侵染時(shí),RT-PCR和ELISA等病原檢測鑒定技術(shù)的聯(lián)合應(yīng)用,能夠快速鑒別病原物組成,是實(shí)現(xiàn)金絲皇菊規(guī)模化脫毒的關(guān)鍵環(huán)節(jié)[29]。這些檢測技術(shù)還可以用于篩選無毒種苗,為金絲皇菊的種苗繁育提供健康的起始材料,從而在種源上保障其品質(zhì)和產(chǎn)量。
金絲皇菊作為區(qū)域特色農(nóng)作物,其種植和加工產(chǎn)業(yè)已在湖南等主產(chǎn)區(qū)形成規(guī)?;l(fā)展格局,其病害防控直接關(guān)系到產(chǎn)業(yè)效益和可持續(xù)發(fā)展。通過建立完善的病原檢測體系,可以有效降低病害發(fā)生率,提升產(chǎn)品品質(zhì)和市場競爭力。因此,筆者未來將進(jìn)一步優(yōu)化金絲皇菊病原檢測技術(shù),探索更高效的脫毒方法,以期為金絲皇菊的健康種植和產(chǎn)業(yè)發(fā)展提供助力。
參考文獻(xiàn):
[1]JIANGS,WANGMY,ZAFARS,etal. Structural elucidation,antioxidantandhepatoprotectiveactivitiesofchemical compositionfromJinsiHuangju(Chrysanthemummorifolium)flowers[J].ArabianJournalofChemistry,2022,15(11):104292.
[2]YUANHW,LUOJY,LYUMY,etal.Anintegratedapproach to Q-marker discoveryand qualityassessmentof edibleChrysanthemum flowers based on chromatogram-effectrelationshipand bioinformaticsanalyses[J].Industrial Cropsand Products,2022,188(PartB):115745.
[3]李曦,郭靈安,雷欣宇,等.金絲皇菊的營養(yǎng)成分分析與評(píng)價(jià)[J].現(xiàn)代食品科技,2019,35(11):237-241,260.
[4]劉輝輝,沈?qū)W根,毛碧增.菊花病毒病及其防治對(duì)策[J].藥物生物技術(shù),2015,22(1):91-94.
[5]陳婕,秦士嬌,王曄青,等.4種方法脫除杭白菊菊花B病毒效果研究[J].中國植保導(dǎo)刊,2021,41(1):66-69.
[6]SONGA,YOUY,CHENF,etal.A multiplex RT-PCRforrapidand simultaneous detection ofvirusesand viroidsinchrysanthemum[J].LettersinAppliedMicrobiology,2013,56(1):8-13.
[7]魏茂瓊,蘭珊珊,王麗,等.環(huán)境中毒死蜱的酶聯(lián)免疫分析方法研究[J].廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),2022,49(12):82-89.
[8]史子尹,張海楠,李浩,等.茶菊莖尖分生組織高效脫毒再生體系優(yōu)化[J].西北植物學(xué)報(bào),2024,44(10):1557-1566.
[9]王鐵霖,秦朗,杜用璽,等.菊花病毒病研究進(jìn)展[J].中國現(xiàn)代中藥,2021,23(9):1655-1663.
[10]田菲,王超,孫寶澤,等.地被菊CVB病毒基因的RT-PCR檢測[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2016,43(6):907-912.
[11]張利英,王森,陳東亮,等.菊花5種病毒及類病毒多重RT-PCR檢測方法的建立[J].病毒學(xué)報(bào),2023,39(4):1045-1052.
[12]陳兆貴,張蒙,肖軍委,等.惠州市冬種馬鈴薯卷葉病毒病的發(fā)生、鑒定及氣象影響因子研究[J].湖南農(nóng)業(yè)科學(xué),2016(3):65-68.
[13]謝秀菊,夏啟玉,霍姍姍,等.利用ELISA與qRT-PCR技術(shù)檢測番木瓜PRSV病毒的方法研究[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2024,45(12):2534-2541.
[14]盧曉靜,蒙姣榮,肖冬,等.日本山藥花葉病毒外殼蛋白多克隆抗體的制備及檢測方法的建立[J].植物病理學(xué)報(bào),2024,54(6):1226-1235.
[15]孫偉,焦奎.酶聯(lián)免疫吸附分析法在植物病毒檢測中的應(yīng)用[J].化學(xué)研究與應(yīng)用,2002,14(5):511-514,510.
[16]劉鵬,劉金,趙艷紅,等.菊花的組織培養(yǎng)、脫毒與快繁技術(shù)研究[J].內(nèi)蒙古民族大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2005,20(4):410-413.
[17]韋石泉,徐慧民.應(yīng)用負(fù)染色技術(shù)電鏡觀察快速檢測植物病毒粒子的研究[J].微生物學(xué)雜志,1985,5(4):7-10.
[18]王學(xué)東,崔琳.植物病毒電鏡樣品制備方法的研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1995,26(1):99-102.
[19]何詠怡,古汶玉,鄧常繼,等.兩款酶聯(lián)免疫吸附試劑盒檢測玉米嘔吐毒素的性能評(píng)價(jià)[J].糧食加工,2021,46(3):85-88.
[20]楊家穎.鄉(xiāng)村振興視域下陜西省安康市鎮(zhèn)坪縣中藥材產(chǎn)業(yè)發(fā)展探究[J].智慧農(nóng)業(yè)導(dǎo)刊,2024,4(20):100-103.
[21]楊夢(mèng)宇,宋義前,王德鋼,等.金絲皇菊化學(xué)成分與藥理作用研究進(jìn)展[J].黑龍江農(nóng)業(yè)科學(xué),2023(3):114-120.
[22]歐宇馨,孫穎.探究園林植物病毒病的診斷與防治[J].福建農(nóng)業(yè),2015(3):105.
[23]MISHRAJ,SRIVASTAVAR,TRIVEDIPK,etal.Effectof virusinfection on the secondary metabolite production and phytohormonebiosynthesisinplants[J].3Biotech,2020,10(12):547.
[24]王鐵霖,秦朗,杜用璽,等.菊花病毒病研究進(jìn)展[J].中國現(xiàn)代中藥,2021,23(9):1655-1663.
[25]葉琪明,郭方其,吳超,等.浙江省菊花病害種類及危害特征與分布調(diào)查[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2019,31(3):82-86.
[26]READDA,PIETERSENG,SLIPPERSB,etal.ChrysanthemumvirusBand Chrysanthemumchloroticmottleviroidinfectchrysanthemumin SouthAfrica[J].AustralasianPlantDiseaseNotes,2022,17(1):29.
[27]EBATAM,MATSUSHITAY,MORIMOTOM,etal.Distributionofchrysanthemumchloroticmottleviroidin shootmeristemandflowerbudsofchrysanthemum[J].EuropeanJournalofPlantPathology,2019,154(3):555-563.
[28]顏克如.杭白菊病毒檢測及不同世代脫毒苗產(chǎn)量品質(zhì)的研究[D].杭州:浙江大學(xué),2021.
[29]郭倩楠,張文芳,賈小玉,等.菊花病毒脫除及其檢測技術(shù)研究進(jìn)展[J].浙江農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,57(12):2035-2039.
[30]王涌,曾祥國,肖桂林,等.草莓白化伴隨病毒RT-LAMP檢測方法的建立[J].植物保護(hù),2024,50(6):237-245,253.
(責(zé)任編輯:彭靜瀾)