[摘 要] 目的:探討小白菊內(nèi)酯 (PTL) 通過調(diào)控機械敏感性離子通道蛋白1(Piezo1) 表達對機械牽張應(yīng)力作用下軟骨細胞凋亡的影響,并闡明其相關(guān)作用機制。方法:按照拉伸性變量將軟骨細胞分為0%、5%、10%、15% 和20% 拉伸組。另取軟骨細胞,分為對照組、20% 拉伸組、20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組。使用Piezo1短發(fā)夾RNA (shRNA) 干擾慢病毒(sh-Piezo1) 或shRNA-NC 慢病毒感染軟骨細胞,將軟骨細胞分為sh-Piezo1 組和sh-NC 組,另設(shè)置空白對照組。另將軟骨細胞分為20% 拉伸組、20% 拉伸+PTL 組、20% 拉伸+sh-Piezo1 組和20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組。Hoechst 33258 熒光染色觀察各組細胞核形態(tài)表現(xiàn),流式細胞術(shù)檢測各組細胞凋亡率,分光光度法檢測各組細胞中含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白酶(Caspase)-3 活性, CCK-8 法檢測各組細胞增殖率, Fluo-4/AM 熒光探針法檢測各組細胞中鈣離子(Ca2+) 水平,實時熒光定量PCR (RT-qPCR) 法檢測各組細胞中Piezo1 mRNA 表達水平,Westernblotting法檢測各組細胞中Piezo1蛋白表達水平。結(jié)果:Hoechst 33258熒光染色觀察,隨著拉伸量逐漸增加,0%、5%、10%、15% 和20% 拉伸組軟骨細胞細胞核呈碎塊狀致密濃染的軟骨細胞數(shù)量逐漸增加。流式細胞術(shù)檢測,與0% 拉伸組比較,5%、10%、15% 和20% 拉伸組軟骨細胞凋亡率均明顯升高(Plt;0. 01); 與對照組比較, 20% 拉伸組軟骨細胞中細胞凋亡率明顯升高(Plt;0. 05); 與20% 拉伸組比較, 20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞細胞凋亡率均明顯降低(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+PTL 組和20% 拉伸+ sh-Piezo1 組軟骨細胞凋亡率均明顯降低(Plt;0. 05)。分光光度法檢測,與0%拉伸組表示,5%、10%、15% 和20% 拉伸組軟骨細胞中Caspase-3 活性均明顯升高(Plt;0. 01);與對照組比較,20% 拉伸組軟骨細胞中Caspase-3 活性明顯升高(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20%拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞中Caspase-3 活性均明顯降低(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+PTL 組和20% 拉伸+sh-Piezo1 組軟骨細胞中Caspase-3 活性均明顯降低(Plt;0. 05)。CCK-8 法檢測,與0 μmol·L-1 PTL 組比較, 40. 00、80. 00 和160. 00 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞增殖率均明顯降低(Plt;0. 05), 提示20. 00 μmol·L-1 PTL 為最高無毒性作用濃度。Fluo-4/AM 熒光探針法檢測,與對照組比較,20% 拉伸組軟骨細胞中Ca2+水平明顯升高(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞中Ca2+水平均明顯降低(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+PTL 組和20% 拉伸+sh-Piezo1 組軟骨細胞中Ca2+水平均明顯降低(Plt;0. 05)。RT-qPCR 法檢測,與空白對照組和sh-NC 組比較,sh-Piezo1 組軟骨細胞中Piezo1 mRNA 表達水平明顯降低(Plt;0. 05)。Western blotting 法檢測,與對照組比較,20% 拉伸組軟骨細胞中Piezo1 蛋白表達水平明顯升高(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+5 μmol·L-1PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞中Piezo1 蛋白表達水平均明顯降低(Plt;0. 05);與空白對照組和sh-NC 組比較,sh-Piezo1 組軟骨細胞中Piezo1 蛋白表達水平明顯降低 (Plt;0. 05)。結(jié)論:PTL可抑制高強度周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)的軟骨細胞凋亡,其作用機制可能與抑制Piezo1 介導(dǎo)Ca2+內(nèi)流引起的細胞凋亡有關(guān)。
[關(guān)鍵詞] 小白菊內(nèi)酯; 機械敏感離子通道蛋白1; 機械牽張應(yīng)力; 軟骨細胞; 細胞凋亡
[中圖分類號] R681. 3 [文獻標志碼] A
骨關(guān)節(jié)炎是一種非炎癥性的退行性關(guān)節(jié)病,患者行動過程中會引發(fā)關(guān)節(jié)疼痛和僵硬,其生活質(zhì)量受到嚴重影響[1-2]。骨關(guān)節(jié)炎發(fā)病機制復(fù)雜,機械負荷是其發(fā)展過程中的重要因素之一。適度機械負荷能促進軟骨細胞生長發(fā)育,增強細胞合成代謝。但過度機械負荷會導(dǎo)致軟骨細胞凋亡,進而引發(fā)軟骨細胞丟失和骨關(guān)節(jié)炎發(fā)生[3]。因此,抑制過度機械負荷后軟骨細胞的凋亡是防治骨關(guān)節(jié)炎的關(guān)鍵。機械敏感性離子通道蛋白1 (piezo typemechanosensitive ion channel component 1, Piezo1)是一種機械敏感性離子通道蛋白,可感受細胞膜機械力的變化, 包括壓縮、拉伸、重力和流體剪切等,通過增強鈣離子(calcium ion,Ca2+) 內(nèi)流改變膜電位進而將胞外機械信號轉(zhuǎn)化為胞內(nèi)生物信號,參與調(diào)節(jié)發(fā)育、腫瘤發(fā)生和骨重塑等多種細胞生命進程[4-6]。然而,過度的機械應(yīng)力刺激可導(dǎo)致Piezo1 高表達, 造成Ca2+ 大量內(nèi)流, 引起細胞凋亡。陳墨龍等[7] 發(fā)現(xiàn): 過度機械牽拉應(yīng)力通過激活Piezo1 和下游需鈣蛋白酶2 (calpain 2,CAPN2) /B 細胞淋巴瘤2 相關(guān)X 蛋白(B-celllymphoma-2-associated X protein, BAX) /含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白酶(cysteinyl aspartate specificproteinase, Caspase)-3 通路誘導(dǎo)肌腱細胞凋亡。WANG 等[8] 發(fā)現(xiàn):Piezo1 在小鼠骨關(guān)節(jié)炎模型和機械牽張應(yīng)力作用下的人軟骨細胞模型中高表達,抑制其表達可降低Ca2+水平并上調(diào)谷胱甘肽過氧化物酶4 (glutathione peroxidase 4, GPX4) 表達,從而減少小鼠骨關(guān)節(jié)炎程度和人軟骨細胞凋亡水平。Piezo1 可能是治療機械性骨關(guān)節(jié)炎的潛在靶點。小白菊內(nèi)酯(parthenolide,PTL) 是一種倍半萜烯內(nèi)酯類天然產(chǎn)物,來源于艾菊和觀光木等藥用植物,具有抗腫瘤、抗病毒、抗炎和抗動脈粥樣硬化等多種重要的藥理活性,臨床上常用于治療偏頭痛、發(fā)熱和類風濕性關(guān)節(jié)炎等[9]。研究[10-11] 發(fā)現(xiàn):PTL 可通過抗炎途徑發(fā)揮改善膝骨關(guān)節(jié)炎模型動物關(guān)節(jié)損傷的作用。然而, PTL 與Piezo1 的關(guān)系及其對高強度的機械牽張應(yīng)力作用下軟骨細胞凋亡的影響尚未完全闡明。本研究探討PTL 對機械牽張應(yīng)力作用下軟骨細胞中Piezo1 的調(diào)控作用及干擾Piezo1 對細胞凋亡的影響, 并闡明其相關(guān)作用機制,為骨關(guān)節(jié)炎的治療提供參考。
1 材料與方法
1. 1 細胞、主要試劑和儀器 永生化人關(guān)節(jié)軟骨細胞及其專用培養(yǎng)液購自上??道噬锟萍加邢薰?。4% 多聚甲醛固定液、Hoechst 33258 染色液、Caspase-3 活性檢測試劑盒和Ca2+ 熒光探針(Fluo-4/AM) 購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司,PTL 購自美國MCE 公司, CCK-8 檢測試劑盒和Annexin Ⅴ -FITC/PI 細胞凋亡檢測試劑盒購自翌圣生物科技(上海) 股份有限公司,Piezo1 抗體購自美國ThermoFisher Scientific 公司,GAPDH 抗體購自武漢愛博泰克生物科技有限公,Piezo1 引物、Piezo1 短發(fā)夾RNA (short hairpin RNA, shRNA)干擾慢病毒(sh-Piezo1,滴度:3. 12×108 TU·mL-1)及其陰性對照慢病毒(shRNA-NC,滴度:1. 36×108 TU·mL-1) 由上海和元生物技術(shù)有限公司提供。張力系統(tǒng)(型號: Flexcell-5000) 購自美國Flexcell 公司, CO2 培養(yǎng)箱(型號: 311) 和化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)( 型號: CL750) 購自美國ThermoFisher Scientific 公司, 倒置熒光顯微鏡(型號:CKX41) 購自日本Olympus 公司,流式細胞儀(型號:FACSCtoⅡ) 購自美國BD 公司,多功能酶標儀( 型號: HH34000000) 購自美國Perkinelmer 公司。
1. 2 細胞培養(yǎng) 永生化人關(guān)節(jié)軟骨細胞采用專用培養(yǎng)液置于37 ℃、5% CO2 培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞密度生長至90% 時, 棄去培養(yǎng)基, 加入磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline, PBS) 清洗1 次,加入1 mL 胰蛋白酶室溫消化2 min,待大部分細胞變圓脫落后,加入2 mL 軟骨細胞專用培養(yǎng)液終止消化,收集細胞離心后分瓶培養(yǎng)并用于后續(xù)實驗。
1. 3 慢病毒感染 收集對數(shù)生長期軟骨細胞,以每孔1×105個細胞的密度接種至6 孔細胞培養(yǎng)板,置于培養(yǎng)箱中過夜。以病毒感染復(fù)數(shù)200 加入64. 1 mLsh-Piezo1 或147. 1 μL shRNA-NC 慢病毒, 將細胞分為sh-Piezo1 組和sh-NC 組,另設(shè)置空白對照組。同時,加入5 mg·L-1 Polybrene 促進病毒感染,8 h 后更換新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),72 h 后收集細胞進行后續(xù)檢測。
1. 4 周期性機械牽張應(yīng)力刺激細胞 取對數(shù)生長期人軟骨細胞,按照每孔1×105個細胞的密度接種于6 孔細胞培養(yǎng)板中,待細胞生長至約80% 融合度時,采用Flexcell-5000 張力系統(tǒng)對軟骨細胞進行周期性機械拉伸[4],以3 s 受力和3 s 放松為1 個周期,進行機械拉伸,頻率設(shè)置為0. 5 Hz,拉伸性變量為5%~20%,拉伸36 h。
1. 5 細胞分組和處理 按照拉伸性變量將軟骨細胞分為0%、5%、10%、15% 和20% 拉伸組。另取軟骨細胞,分為對照組、20% 拉伸組、20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組。其中對照組不作任何處理;20% 拉伸組軟骨細胞給予拉伸性變量為20% 的周期性機械牽張應(yīng)力刺激36 h; 20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞在20% 拉伸的基礎(chǔ)上分別給予5、10 及20 μmol·L-1PTL 處理。
另取軟骨細胞,將其分為20% 拉伸組、20% 拉伸+PTL 組、20% 拉伸+sh-Piezo1組和20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組。其中20% 拉伸+PTL 組軟骨細胞進行拉伸性變量為20% 的周期性機械牽張應(yīng)力刺激36 h,同時給予20 μmol·L-1 PTL;20% 拉伸+sh-Piezo1 組軟骨細胞感染sh-Piezo1 慢病毒后再進行拉伸性變量為20% 的周期性機械牽張應(yīng)力刺激36 h 處理; 20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組軟骨細胞感染sh-Piezo1 慢病毒后再進行拉伸性變量為20% 的周期性機械牽張應(yīng)力刺激和20 μmol·L-1PTL 干預(yù)36 h。
1. 6 Hoechst 33258熒光染色觀察各組細胞核形態(tài)表現(xiàn) 取對數(shù)生長期軟骨細胞,以每孔3×104個細胞的密度接種至6 孔細胞培養(yǎng)板,置于培養(yǎng)箱中過夜,給予拉伸性變量為0%~20% 的周期性機械牽張應(yīng)力刺激36 h。取出培養(yǎng)板,經(jīng)4% 多聚甲醛固定液室溫固定10 min , PBS 緩沖液清洗3 次,每孔加入500 μL Hoechst 33258 染色液,室溫避光孵育5 min, PBS 緩沖液清洗3 次, 熒光顯微鏡觀察細胞核形態(tài)表現(xiàn)。
1. 7 流式細胞術(shù)檢測各組細胞凋亡率 收集各組細胞,加入400 μL Annexin Ⅴ-FITC 結(jié)合液重懸細胞,加入5 μL Annexin Ⅴ-FITC 染色液,輕輕吹打混勻,再加入10 μL PI 染色液,輕輕吹打混勻,室溫(20 ℃~25 ℃) 避光孵育20 min,采用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。細胞凋亡率=凋亡細胞數(shù)/總細胞數(shù)×100%。
1. 8 分光光度法檢測各組細胞中 Caspase-3活性 收集各組細胞,PBS 緩沖液清洗1 次,加入100 μL裂解液于冰上裂解15 min, 4 ℃ 、20 000 g 離心10 min, 取上清, 參照Caspase-3 活性檢測試劑盒檢測說明書操作, 同時設(shè)置標準品組。采用酶標儀檢測波長405 nm 處吸光度(A) 值,根據(jù)標準品A 值和標準品濃度繪制標準曲線,計算各組細胞中Caspase-3 活性。Caspase-3 活性= 實驗孔A 值/對照孔A 值。
1. 9 CCK-8法檢測各組細胞增殖率 收集對數(shù)生長期軟骨細胞,以每孔3×103個細胞的密度接種至96 孔細胞培養(yǎng)板中,置于培養(yǎng)箱中過夜。給予0、1. 25、2. 50、5. 00、10. 00、20. 00、40. 00、80. 00 和160. 00 μmol·L-1 PTL 處理36 h, 并設(shè)置空白孔,提前4 h 取出培養(yǎng)板,每孔加入10 μL CCK-8 工作液, 37 ℃ 孵育4 h, 采用多功能酶標儀檢測波長450 nm 處A 值。細胞增殖率= [ (實驗孔A值- 空白孔A 值) / (對照孔A 值- 空白孔A值)] ×100%。
1. 10 Fluo-4/AM 熒 光 探 針 法 檢 測 各 組 細 胞 中Ca2+水平 收集各組細胞,PBS緩沖液清洗 3次,加入500 μL 1 μmol·L-1 Fluo-4/AM 工作液, 37 ℃避光孵育45 min,PBS 緩沖液清洗3 次,流式細胞儀檢測細胞中Fluo-4 熒光強度,以Fluo-4 熒光強度代表細胞中Ca2+水平。
1. 11 實時熒光定量 PCR(real-time fluorescencequantitative PCR,RT-qPCR)法檢測各組細胞中Piezo1 mRNA 表達水平 收集各組細胞,加入TRIzol 裂解液,于冰上提取總RNA。多功能酶標儀檢測RNA 濃度,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA 逆轉(zhuǎn)錄為cDNA 并擴增。以β-actin 為內(nèi)參,采用2-△△Ct 法計算Piezo1 mRNA 表達水平。引物序列: Piezo1 F5'-ATCGCCATCATCTGGTTCCC-3', R 5'-TGGTGAACAGCGGCTCATAG-3'; β -actin F 5'-GCCGCCAGCTCACCAT-3', R 5'-TCGTCGCCCACATAGGAATC-3'。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性5 min,95 ℃、10 s,60 ℃、30 s,共40 次循環(huán)。
1. 12 Western blotting 法檢測各組細胞中 Piezo1蛋白表達水平 收集各組細胞,加入RIPA裂解液,冰上孵育30 min 提取總蛋白,4 ℃、12 000 r·min-1離心5 min 收集上清, 金屬浴煮沸10 min。采用BCA 蛋白檢測試劑盒測定蛋白濃度, 每組細胞取30 μg 蛋白上樣、電泳和轉(zhuǎn)膜處理后, 50 g·L-1 脫脂奶粉室溫孵育1 h,加入Piezo1 抗體(1∶1 000)和β-actin (1∶10 000) 抗體4 ℃孵育過夜,TBST 溶液清洗3次,加入HRP標記的羊抗兔二抗(1∶5 000)室溫孵育1 h,滴加顯影液,凝膠成像儀顯影。采用Image J 軟件分析蛋白條帶灰度值,計算目的蛋白表達水平。目的蛋白表達水平=目的蛋白條帶灰度值/β-actin 蛋白條帶灰度值。
1. 13 統(tǒng)計學(xué)分析 使用SPSS 26. 0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析。各組細胞凋亡率、細胞增殖率、細胞中Ca2+水平、Caspase-3 活性和Piezo1 mRNA 及蛋白表達水平均符合正態(tài)分布,以x±s 表示,多組間樣本均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間樣本均數(shù)兩兩比較采用LSD-t 檢驗。以Plt;0. 05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2 結(jié) 果
2. 1 各組軟骨細胞核形態(tài)表現(xiàn) 凋亡細胞的細胞核呈致密濃染或呈碎塊狀致密濃染, 熒光亮度增強。隨著拉伸量逐漸增加,0%、5%、10%、15%和20% 拉伸組軟骨細胞的細胞核呈碎塊狀致密濃染的軟骨細胞數(shù)量逐漸增加。見圖1。
2. 2 各組軟骨細胞凋亡率 與 0% 拉伸組比較,5%、10%、15% 和20% 拉伸組軟骨細胞凋亡率均明顯升高(Plt;0. 01)。與對照組比較,20% 拉伸組軟骨細胞中細胞凋亡率明顯升高(Plt;0. 05); 與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L- 1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞細胞凋亡率均明顯降低(Plt;0. 05)。與 20% 拉伸組(36. 36%±2. 61%)比較,20% 拉伸 + PTL 組(18. 80%±1. 41%) 和20% 拉伸+sh-Piezo1 組(11. 34%± 2. 49%) 軟骨細胞凋亡率均明顯降低(Plt;0. 05);與20% 拉伸+sh-Piezo1 組比較, 20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組(11. 86%±2. 17%) 軟骨細胞凋亡率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見圖2~6。
2. 3 各組軟骨細胞中Caspase-3活性 與0%拉伸組比較,5%、10%、15% 和20% 拉伸組軟骨細胞中Caspase-3 活性均明顯升高(Plt;0. 01)。與對照組比較,20% 拉伸組軟骨細胞中Caspase-3 活性明顯升高(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μmol·L-1PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞中Caspase-3 活性均明顯降低(Plt;0. 05)。與20%拉伸組比較, 20% 拉伸+PTL 組和20% 拉伸+sh-Piezo1 組軟骨細胞中Caspase-3 活性均明顯降低(Plt;0. 05),20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組軟骨細胞中Caspase-3 活性差異無統(tǒng)計學(xué)意義(Pgt;0. 05)。與20% 拉伸+sh-Piezo1 組比較, 20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組軟骨細胞中Caspase-3 活性差異無統(tǒng)計學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見圖7~9。
2. 4 各組軟骨細胞增殖率 與0 μmol·L-1 PTL 組比較,1. 25、2. 50、5. 00、10. 00 和20. 00 μmol·L-1PTL 組軟骨細胞增殖率差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(Pgt;0. 05), 40. 00、80. 00 和160. 00 μmol·L-1 PTL 組軟骨細胞增殖率均明顯降低(Plt;0. 05),提示20. 00 μmol·L- 1 PTL 為最高無毒性作用濃度。見圖10。
2. 5 各組軟骨細胞中 Ca2+水平 與對照組比較,20% 拉伸組軟骨細胞中Ca2+水平升高(Plt;0. 05);與20%拉伸組比較,20%拉伸+5 μmol·L-1 PTL 組、20% 拉伸+10 μ mol·L - 1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L- 1 PTL 組軟骨細胞中Ca2+ 水平均明顯降低(Plt;0. 05)。與20% 拉伸組比較,20% 拉伸+PTL 組和20% 拉伸+sh-Piezo1 組軟骨細胞中Ca2+水平均明顯降低( Plt;0. 05),20%拉伸+sh-Piezo1+PTL 組軟骨細胞中Caspase-3 活性差異無統(tǒng)計學(xué)意義(Pgt;0. 05); 與20% 拉伸+sh-Piezo1 組比較,20% 拉伸+sh-Piezo1+PTL 組軟骨細胞中Ca2+ 水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見圖11~14。
2. 6 各組細胞中Piezo1 mRNA表達水平 與空白對照組(0. 99±0. 03) 和sh-NC 組(0. 95±0. 05)比較, sh-Piezo1 組軟骨細胞中Piezo1 mRNA 表達水平(0. 20±0. 08) 明顯降低(Plt;0. 05)。
2. 7 各組軟骨細胞中 Piezo1蛋白表達水平 與對照組比較, 20% 拉伸組軟骨細胞中Piezo1 蛋白表達水平明顯升高(Plt;0. 05);與20% 拉伸組比較,20% 拉 伸 + 5 μmol·L- 1 PTL 組、20% 拉 伸+10 μmol·L- 1 PTL 組和20% 拉伸+20 μmol·L- 1PTL 組軟骨細胞中Piezo1 蛋白表達水平均明顯降低(Plt;0. 05)。與空白對照組(0. 43±0. 05) 和sh-NC 組(0. 42±0. 06) 比較, sh-Piezo1 組軟骨細胞中Piezo1 蛋白表達水平(0. 07±0. 03) 明顯降低(Plt;0. 05), 提示軟骨細胞中Piezo1 基因表達被成功干擾。見圖15 和16。
3 討 論
研究[12] 顯示:機械負荷過高誘導(dǎo)的軟骨細胞凋亡是誘發(fā)骨關(guān)節(jié)炎的因素之一,長期從事體力勞動人群、肥胖人群及運動員關(guān)節(jié)長期受到過度負荷, 更易導(dǎo)致關(guān)節(jié)炎。CHANG 等[13] 發(fā)現(xiàn): 過度的機械負荷會通過DAN 結(jié)構(gòu)域BMP 拮抗劑家族成員1 (DAN domain BMP antagonist family member 1,gremlin-1) /核因子κB (nuclear factor kappa-B,NF-κB) 途徑促進小鼠骨關(guān)節(jié)炎發(fā)展。ZHAO 等[14]發(fā)現(xiàn):機械超負荷誘導(dǎo)的微小RNA (microRNAs,miR)-325-3p 表達水平降低可促進軟骨細胞衰老,加劇小關(guān)節(jié)退變。伍偉挺等[15] 發(fā)現(xiàn):高負荷周期性機械應(yīng)力可能通過激活內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激通路加速軟骨細胞凋亡,促進軟骨細胞炎癥反應(yīng)。本研究結(jié)果顯示:在體外培養(yǎng)的軟骨細胞中,周期性機械牽張應(yīng)力可明顯誘導(dǎo)軟骨細胞凋亡,并上調(diào)Piezo1 表達。PTL 和干擾Piezo1 基因表達均可抑制周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)的軟骨細胞凋亡, 同時抑制Ca2+內(nèi)流, 提示PTL 在周期性機械牽張應(yīng)力介導(dǎo)的軟骨細胞凋亡的作用和機制,可能為骨關(guān)節(jié)炎臨床治療提供新方向。
Piezo1 是機械敏感離子通道蛋白,其參與腫瘤細胞、肌腱細胞和軟骨細胞等多種細胞機械負荷誘導(dǎo)的凋亡進程[7,16-17]。Piezo1 在軟骨細胞中穩(wěn)定表達,不僅可以通過絲裂原活化蛋白激酶(mitogenactivatedprotein kinase,MAPK) /細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶1/2 (extracellular regulated protein kinases 1/2,ERK1/2) 的經(jīng)典MAPK 信號通路參與細胞凋亡過程,還可介導(dǎo)機械刺激下Ca2+內(nèi)流,維持細胞內(nèi)游離Ca2+和結(jié)合鈣動態(tài)平衡[18]。過度機械負荷可激活Piezo1 介導(dǎo)細胞內(nèi)Ca2+超載,導(dǎo)致線粒體呼吸功能障礙及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,從而啟動Caspase 級聯(lián)反應(yīng),進而誘導(dǎo)細胞凋亡[19-20]。因此,下調(diào)Piezo1 表達可能抑制胞內(nèi)Ca2+超載增強軟骨細胞機械負載的抵抗閾值,促進細胞活性,從而改善骨關(guān)節(jié)炎。本研究結(jié)果顯示:干擾Piezo1 基因表達可抑制周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)的軟骨細胞凋亡,并降低細胞內(nèi)Ca2+水平, 提示Poezo1 激活介導(dǎo)Ca2+超載是周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)軟骨細胞凋亡的關(guān)鍵因素。
PTL 來源于藥草短舌匹菊的倍半萜內(nèi)酯, 具有抗炎、抗病毒和抗腫瘤等藥理作用。朱芳曉等[21]發(fā)現(xiàn): PTL 可減輕兔骨關(guān)節(jié)炎癥狀, 可能是通過抑制血清和關(guān)節(jié)腔腫瘤壞死因子α (tumor necrosisfactor alpha, TNF- α) 和 白 細 胞 介 素 1β(interleukin-1β, IL-1β) 等炎癥因子分泌實現(xiàn)的。LIU 等[10] 發(fā)現(xiàn): Piezo1 可抑制促炎細胞因子的產(chǎn)生,并對膠原誘導(dǎo)的大鼠關(guān)節(jié)炎的進展表現(xiàn)出保護作用。然而,高強度的機械牽張應(yīng)力被認為是導(dǎo)致骨關(guān)節(jié)炎的重要外界致病因素, 但PTL 對高強度的機械牽張應(yīng)力作用下軟骨細胞凋亡的影響尚未完全闡明。本研究結(jié)果顯示: PTL 可以有效抑制周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)的軟骨細胞凋亡,并下調(diào)細胞中Piezo1 表達,同時降低軟骨細胞中Ca2+水平和Caspase-3 活性, 而在Piezo1 基因沉默的軟骨細胞中加入PTL 干預(yù)后, 并未進一步抑制周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)的軟骨細胞凋亡,提示PTL 通過調(diào)控Piezo1 表達,發(fā)揮抑制周期性機械牽張應(yīng)力誘導(dǎo)軟骨細胞凋亡的作用。
綜上所述, 周期性機械牽張應(yīng)力可通過調(diào)控Piezo1 介導(dǎo)Ca2+超載促進軟骨細胞凋亡,PTL 可通過下調(diào)Piezo1 表達降低細胞中Ca2+水平,進而抑制軟骨細胞凋亡。
利益沖突聲明:所有作者聲明不存在利益沖突。
作者貢獻聲明:馬旋參與研究選題、數(shù)據(jù)收集整理和論文撰寫,楊開祥參與實驗操作,鄧海參與數(shù)據(jù)統(tǒng)計學(xué)分析,黃玉成參與論文審校和指導(dǎo)。
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吉林大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版)2024年6期