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      硒對樹突狀細胞和巨噬細胞功能的調(diào)控作用

      2022-09-30 06:27:00景麗榮海尼斯格高珍珍
      畜牧獸醫(yī)學(xué)報 2022年9期
      關(guān)鍵詞:批號抗原腹腔

      景麗榮,張 超,喬 杰,海尼斯格,楊 英,高珍珍

      (內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院,呼和浩特 010018)

      硒是動物必需的營養(yǎng)元素,也是植物有益的營養(yǎng)元素,具有抗氧化、抗癌、增強免疫功能等生物學(xué)作用。當動物攝取硒不足時可引起多種疾病,如癌癥、克山骨病、心血管疾病等,對動物的身體健康造成危害的同時,也對養(yǎng)殖業(yè)造成巨大的經(jīng)濟損失。硒不能由機體自主合成,只能從體外攝取,因此在畜牧生產(chǎn)中,常常會把亞硒酸鈉作為添加劑,用來補充動物機體需要的微量元素硒,再通過氧化還原反應(yīng)或復(fù)雜的生物酶反應(yīng)等使其被機體吸收并利用。有研究發(fā)現(xiàn),硒對T、B細胞的免疫功能和巨噬細胞的抗氧化功能具有調(diào)節(jié)作用,同時可抑制肺癌細胞增殖和遷移。樹突狀細胞(dendritic cells, DCs)和巨噬細胞是參與調(diào)節(jié)免疫刺激和耐受的重要抗原提呈細胞,在免疫系統(tǒng)中起著重要的作用。然而,硒對DCs和巨噬細胞免疫功能的影響報道少見,因此,本試驗以髓源性樹突狀細胞(bone marrow derived dendritic cells, BMDCs)和腹腔巨噬細胞為靶細胞,探究硒對樹突狀細胞和巨噬細胞的調(diào)控作用。

      1 材料與方法

      1.1 試驗材料

      亞硒酸鈉購自上海凌峰化學(xué)試劑有限公司(批號:W5070); RPMI1640培養(yǎng)液購自Gibco(批號:8120038);小牛血清購自四季青有限公司(批號:20060502)青鏈霉素購自Biological Industries(批號:1950172);噻唑藍(MTT),購自Solarbio公司(批號:CM27191620);二甲基亞砜(DMSO)購自Coolaber科技有限公司(批號:CD281315200);Phagocytosis Assay Kit購自Thermo公司(批號:2160425);rmGM-CSF(批號:BJ2418061)和rmIL-4(批號:BC1918101)購自RD Systems公司;小鼠脾淋巴細胞分離試劑盒購自天津顥洋生物制品有限公司;Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32(批號:0160289)、PE-Cy7 Hamster Anti-Mouse CD11c(批號:9345738)、488 Rat Anti-Mouse I-A/I-E(批號:1004521)、PE Mouse Anti-Rat CD86(批號:9338081)、BV421 Hamster Anti-Mouse CD80(批號:0009143)、APC Rat anti-Mouse CD40(批號:9128909)和7-AAD(批號:0017296-A)購自BD Pharmingen;IL-10、IL-12、IL-6、IL-1β、TNF-α、IFN-γ和NO的ELISA試劑盒購自酶免公司(批號:212104)。

      1.2 主要儀器

      酶聯(lián)免疫檢測儀購自Thermo公司;L420離心機購自上海生物科技有限公司;CytoFLEX流式細胞儀購自Beckman公司;DMi 1倒置顯微鏡購自LEICA公司。

      1.3 硒對小鼠未成熟BMDCs的影響

      1.3.1 小鼠未成熟BMDCs的制備 未成熟BMDCs取自4~6周齡KM小鼠脛骨和股骨的骨髓,重懸于含有10%小牛血清和1%青鏈霉素的RPMI-1640完全培養(yǎng)液中,未成熟BMDCs制備完成。

      1.3.2 硒對小鼠未成熟BMDCs安全濃度的測定 將制備的未成熟BMDCs細胞濃度調(diào)整為2.5×10個·mL,加入至96孔板(100 μL·孔),分別加入不同質(zhì)量濃度的硒,硒以亞硒酸鈉的形式添加 (將硒用細胞培養(yǎng)液分別從45.66 mg·L倍比稀釋至0.02 mg·L,共11個濃度梯度,加入細胞孔后的終濃度依次為22.83、11.42、5.71、2.85、1.43、0.72、0.36、0.18、0.09、0.04、0.02 mg·L),每個濃度組100 μL·孔,并重復(fù)6個孔,另設(shè)空白組(blank group, BG),只加入RPMI-1640完全培養(yǎng)液。在37 ℃、50 mL·LCO條件下培養(yǎng)48 h。培養(yǎng)結(jié)束前4 h,每孔加入30 μL MTT(5 g·L)。培養(yǎng)結(jié)束后,棄去上清液,每孔加入100 μL DMSO,輕晃10 min,用酶聯(lián)免疫儀檢測570 nm處的吸光值。當硒最大質(zhì)量濃度在570 nm處的吸光值不顯著低于空白組(BG)時,作為硒對未成熟BMDCs最大安全質(zhì)量濃度。測得硒的最大安全質(zhì)量濃度為1.43 mg·L,選擇最大安全質(zhì)量濃度倍比稀釋5個質(zhì)量濃度,進行以下相關(guān)試驗,因此硒的質(zhì)量濃度選取范圍是1.43~0.09 mg·L。

      1.3.3 硒對小鼠未成熟BMDCs吞噬活性測定 將制備的未成熟BMDCs濃度調(diào)整為每毫升2.5×10個細胞,加入到12孔板中(1 mL·孔)。貼壁15 h后,棄去非貼壁細胞,在每個細胞孔中分別加入1 mL的硒(1.43、0.72、0.36、0.18、0.09 mg·L)、LPS和PHA(5和10 mg·L),另設(shè)空白組(BG),只加入RPMI-1640完全培養(yǎng)液,每個濃度組重復(fù)3個孔。在37 ℃、50 mL·LCO條件下培養(yǎng)46 h,收集細胞,分別加入200 μL FITC標記的大腸桿菌,避光孵育2 h后, 2 000 r·min離心5 min,PBS洗滌2次,在流式細胞儀中檢測各組細胞熒光強度。

      1.4 硒對小鼠成熟BMDCs的影響

      1.4.1 小鼠成熟BMDCs的制備 將制備的未成熟BMDCs細胞濃度調(diào)整為1.6×10個·mL,加入至6孔板中(2 mL·孔),在37 ℃、CO濃度為50 mL·L條件下培養(yǎng)15 h后,棄去非貼壁細胞,加入等量的RPMI-1640培養(yǎng)液(含有10% 胎牛血清、1% 青鏈霉素、25 mg·LrmGM-CSF和25 mg·LrmIL-4),然后隔天半量更換培養(yǎng)液,7 d后成熟BMDCs制備完成。

      1.4.2 硒對成熟BMDCs表型測定 將硒(1.43、0.72、0.36、0.18、0.09 mg·L)、LPS和PHA(5和10 mg·L)分別加入到培養(yǎng)至第7天的成熟BMDCs,另設(shè)空白組(BG),只加入RPMI-1640完全培養(yǎng)液,每個濃度組重復(fù)3個孔。在37 ℃、50 mL·LCO條件下培養(yǎng)48 h后收集成熟BMDCs,先與CD16/32共孵育10 min,再與5種熒光素偶聯(lián)抗體(PE-Cy CD11c、488 I-A/I-E、PE CD86、BV421 CD80和APC CD40)混合液在4 ℃避光條件下孵育染色30 min后,加入7-AAD標記死亡細胞,在流式細胞儀中檢測各組細胞熒光強度。

      1.4.3 硒對成熟BMDCs上清液中細胞因子含量的測定 如“1.4.1”制備小鼠成熟BMDCs,按“1.4.2” 進行分組處理,收集經(jīng)硒(1.43、0.72、0.36、0.18、0.09 mg·L)、LPS和PHA(5和10 mg·L)處理后的細胞,每個濃度組重復(fù)5個孔,離心收取各組成熟BMDCs上清液,并根據(jù)ELISA試劑盒按說明書檢測IL-10、IL-12、IL-6、IL-1β、TNF-α和IFN-γ的含量水平。

      1.4.4 硒對成熟BMDCs刺激同種異體淋巴細胞增殖能力的測定 取無菌KM小鼠脾,研磨成勻漿,用小鼠脾淋巴細胞分離液試劑盒提取脾淋巴細胞,調(diào)整脾細胞濃度至2.5×10個·mL。如“1.4.1”制備小鼠成熟BMDCs,按“1.4.2”進行分組處理,將制備好的脾淋巴細胞加入到經(jīng)硒(1.43、0.72、0.36、0.18、0.09 mg·L)、LPS和PHA(5和10 mg·L)處理后的細胞孔中(1 mL·孔),在37 ℃、50 mL·LCO條件下共同培養(yǎng)44 h后, 添加600 μL MTT, 繼續(xù)培養(yǎng)4 h,小心棄去孔內(nèi)液體,加入2 mL DMSO,吹打均勻后,吸100 μL至96孔板中,每個濃度組重復(fù)6個孔,在570 nm波長處測量其吸光度值。

      1.4.5 硒對成熟BMDCs抗原呈遞能力的測定 KM小鼠每20 g體重皮下接種100 μg OVA,2周后收集脾淋巴細胞,調(diào)整細胞濃度至2.5×10個·mL。如“1.4.1”制備小鼠成熟BMDCs,按“1.4.2”進行分組處理,將制備好的脾淋巴細胞加入到經(jīng)硒(1.43、0.72、0.36、0.18、0.09 mg·L)、LPS和PHA(5和10 mg·L) 處理后的細胞孔中(1 mL·孔),在37 ℃、50 mL·LCO條件下共同培養(yǎng)44 h后, 加入600 μL MTT,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,小心棄去孔內(nèi)液體,加入2 mL DMSO,吹打均勻后,吸100 μL至96孔板中,每個濃度組重復(fù)6個孔,在570 nm波長處測量其吸光度值。

      1.5 硒對腹腔巨噬細胞的影響

      1.5.1 硒對腹腔巨噬細胞的吞噬活性的測定 小鼠每20 g體重腹腔內(nèi)注射1 mL 6%淀粉溶液,48 h后收集小鼠腹腔巨噬細胞,調(diào)節(jié)細胞濃度為2.5×10個·mL,接種于12孔板(1 mL·孔),15 h后棄去非貼壁細胞,在每個細胞孔中分別加入1 mL的硒(1.43、0.72、0.36、0.18、0.09 mg·L)、LPS和PHA(終濃度分別為5和10 mg·L),另設(shè)空白組(BG),只加入RPMI-1640完全培養(yǎng)液,每個濃度組重復(fù)3個孔。在37 ℃、50 mL·LCO的條件下培養(yǎng)46 h,收集細胞,分別加入200 μL FITC標記的大腸桿菌,繼避避光孵育2 h后, 2 000 r·min離心5 min,PBS洗滌2次,在流式細胞儀中檢測各組細胞熒光強度。

      1.5.2 硒對腹腔巨噬細胞上清液中細胞因子含量的測定 同“1.5.1”制備并處理腹腔巨噬細胞,每個濃度組重復(fù)5個孔,于37 ℃、50 mL·LCO的條件下培養(yǎng)48 h,收集細胞,離心收取各組小鼠腹腔巨噬細胞上清液,并根據(jù)ELISA試劑盒按說明書檢測IL-6、IL-10、NO、TNF-α和IFN-γ的含量。

      1.6 數(shù)據(jù)處理

      試驗數(shù)據(jù)用SPSS 22.0中的One-way ANOVA程序進行單因素方差分析,Dunkan氏法進行多重比較,試驗結(jié)果以“平均值±標準差”表示,用<0.05作為差異顯著性判斷標準。

      2 結(jié) 果

      2.1 硒對小鼠未成熟BMDCs安全濃度的分析

      當硒最大質(zhì)量濃度在570 nm處的吸光值不顯著低于空白組(BG)時,作為硒對未成熟BMDCs最大安全質(zhì)量濃度。由圖1可知,當硒的質(zhì)量濃度在1.43 mg·L時,吸光值顯著高于空白組(<0.05),因此對于未成熟BMDCs,硒最大安全質(zhì)量濃度為1.43 mg·L。在以下的試驗中,硒選擇的質(zhì)量濃度為1.43、0.72、0.36、0.18和0.09 mg·L。

      所標字母相異表示差異顯著(P<0.05),所標字母相同表示差異不顯著(P>0.05),下表同Different letters mean significant difference among treatments(P<0.05), same letter means no significant difference among treatments(P>0.05). The same as below圖1 硒對未成熟BMDCs的安全濃度(n=6)Fig.1 The safe concentration of selenium on immature BMDCs(n=6)

      2.2 硒對小鼠未成熟BMDCs吞噬活性分析

      由圖2B可知,當硒的質(zhì)量濃度為0.36~0.09 mg·L時,未成熟BMDCs吞噬活性顯著高于空白組、LPS和PHA組,且當質(zhì)量濃度0.18 mg·L時,吞噬活性最強,顯著高于其他各組(<0.05),達到61.19%。

      A.未成熟BMDCs的吞噬活性流式圖;B.未成熟BMDCs的吞噬活性統(tǒng)計圖A.Flow chart of phagocytic activity of immature BMDCs; B.Statistical chart of phagocytic activity of immature BMDCs圖2 硒對未成熟BMDCs吞噬活性的影響(n=3)Fig.2 Effect of selenium on phagocytic activity of immature BMDCs (n=3)

      2.3 硒對成熟BMDCs表型分析

      由圖3可知,成熟BMDCs的MHCⅡ、CD86和CD80的表達量隨硒質(zhì)量濃度的遞減呈現(xiàn)遞增趨勢,且當硒的質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,均顯著高于空白組(<0.05),而當硒的質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,MHCⅡ的表達量還顯著高于LPS和PHA組(<0.05),而CD40的表達量在不同硒處理組中雖然與空白組沒有顯著差異(>0.05),但有明顯上升的趨勢。

      A.成熟BMDCs的表型流式圖;B.成熟BMDCs的表型統(tǒng)計圖A.Flow chart of phenotype of mature BMDCs; B.Statistical chart of phenotype of mature BMDCs圖3 硒對成熟BMDCs表型的影響(n=3)Fig.3 Effect of selenium on phenotype of mature BMDCs(n=3)

      2.4 硒對成熟BMDCs上清中細胞因子含量的分析

      由圖4可知,隨著硒質(zhì)量濃度的遞減,IFN-γ的含量呈遞增趨勢,當質(zhì)量濃度為0.36~0.09 mg·L時,IFN-γ的含量顯著高于空白組,且質(zhì)量濃度在0.18~0.09 mg·L時,顯著高于LPS、PHA組及其他各組(<0.05);當硒的質(zhì)量濃度為0.18~0.09 mg·L時,IL-12的含量顯著高于空白組,當濃度為0.18 mg·L時,IL-12的含量最高且顯著高于其他各組(<0.05);隨著硒質(zhì)量濃度的遞減,TNF-α的含量呈遞減趨勢,且當硒的質(zhì)量濃度為0.36~0.09 mg·L時,TNF-α的含量顯著低于空白組、LPS和PHA組(<0.05);IL-10在硒的質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,其含量最高且顯著高于除PHA組外的其他各組(<0.05);當硒的質(zhì)量濃度為1.43~0.72 mg·L時,IL-6和IL-1β的含量顯著低于其他各組(<0.05),硒的質(zhì)量濃度為0.36~0.09 mg·L時,IL-6和IL-1β的含量雖然明顯升高,但與空白組無顯著性差異(>0.05)。

      A.IFN-γ的含量;B.IL-12的含量;C.TNF-α的含量;D.IL-10的含量;E.IL-1β的含量;F.IL-6的含量A.IFN-γ content; B.IL-12 content; C.TNF-α content; D.IL-10 content; E.IL-1β content; F.IL-6 content圖4 硒對成熟BMDCs上清液中細胞因子含量的影響(n=5)Fig.4 Effect of selenium on cytokine content in supernatant of mature BMDCs(n=5)

      2.5 硒對成熟BMDCs刺激同種異體淋巴細胞增殖能力的分析

      由圖5A可知,硒對成熟BMDCs刺激同種異體淋巴細胞增殖能力隨硒質(zhì)量濃度的遞減,呈現(xiàn)遞增趨勢。當硒質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,成熟BMDCs刺激同種異體淋巴細胞增殖能力顯著高于除PHA組之外的其他各組(<0.05)。

      A.同種異體淋巴細胞的增殖;B.抗原呈遞能力A. Proliferation of allogeneic lymphocytes; B. Ability of antigen presenting圖5 硒對成熟BMDCs刺激同種異體淋巴細胞增殖和抗原呈遞能力的影響(n=6)Fig.5 Effects of selenium stimulated on proliferation of allogeneic lymphocytes and ability of antigen presentation by mature BMDCs(n=6)

      2.6 硒對成熟BMDCs抗原呈遞能力的分析

      由圖5B可知,隨硒質(zhì)量濃度的遞減,硒對成熟BMDCs抗原呈遞的能力呈現(xiàn)遞增趨勢。當硒質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,成熟BMDCs抗原遞呈能力最高,且顯著高于其他各組(<0.05)。

      2.7 硒對腹腔巨噬細胞吞噬活性的分析

      當硒的質(zhì)量濃度為0.18~0.09 mg·L時,腹腔巨噬細胞吞噬活性顯著高于空白組和LPS組(<0.05),且當質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,吞噬活性顯著強于除PHA組之外的其他各組,達到71.85%(圖6)。

      A.腹腔巨噬細胞的吞噬活性流式圖;B.腹腔巨噬細胞的吞噬活性統(tǒng)計圖A. Flow chart of phagocytic activity of peritoneal macrophage; B. Statistical chart of phagocytic activity of peritoneal macrophage圖6 硒對腹腔巨噬細胞吞噬活性的影響(n=3)Fig.6 Effect of selenium on phagocytic activity of peritoneal macrophage(n=3)

      2.8 硒對腹腔巨噬細胞上清中細胞因子含量的分析

      由圖7可知,硒的各組質(zhì)量濃度組中IL-6的含量顯著低于空白組(BG)(<0.05);當硒的質(zhì)量濃度為0.72~0.09 mg·L時,IL-10的含量顯著低于空白組(BG)和LPS組(<0.05);當硒的質(zhì)量濃度為0.72 mg·L時,TNF-α的含量顯著高于空白組(BG)(<0.05);當硒的質(zhì)量濃度為0.36~0.09 mg·L時,IFN-γ的含量顯著高于空白組(BG)(<0.05);當硒的質(zhì)量濃度為0.72~0.09 mg·L時,NO的含量顯著高于空白組(BG)(<0.05),且在質(zhì)量濃度為0.18 mg·L時含量最高。

      A. IL-6的含量;B. IL-10的含量;C. TNF-α的含量;D. IFN-γ的含量;E. NO的含量A. IL-6 content; B.IL-10 content; C.TNF-α content; D. IFN-γ content; E. NO content圖7 硒對腹腔巨噬細胞上清液中細胞因子含量的影響(n=5)Fig.7 Effect of selenium on cytokine content in supernatant of peritoneal macrophages(n=5)

      3 討 論

      樹突狀細胞(DCs)發(fā)現(xiàn)于1973年,是機體最強大的抗原提呈細胞,在適應(yīng)性免疫應(yīng)答的啟動中起主要作用,參與一系列微生物病原體的防御。根據(jù)表型和功能成熟水平, 樹突狀細胞分為未成熟和成熟DCs。在不成熟狀態(tài)下,樹突狀細胞可以不斷地吸收各種自身抗原和外源抗原,具有較強的吞噬活性。在攝取抗原或受到某些因素刺激時會分化為成熟DCs,成熟DCs不僅可以啟動抗原特異性免疫,還可以誘導(dǎo)并維持對自身組織抗原的特異性耐受。機體的特異性免疫反應(yīng)是由抗原提呈細胞攝取抗原并在細胞內(nèi)進行處理,然后將抗原信息呈遞給T和B淋巴細胞,刺激T和B細胞增殖,進而誘導(dǎo)機體產(chǎn)生各種抗原特異性抗體,在細胞免疫和體液免疫調(diào)節(jié)中發(fā)揮重要作用,并且高表達抗原遞呈分子MHCⅡ和共刺激因子CD86、CD80和CD40。

      吞噬是生物最古老、最基本的防御機制之一,是單細胞生物最基本的營養(yǎng)過程。當DCs分化成熟后,吞噬能力降低,但由于MHCⅡ類分子的高表達,其抗原捕獲和呈遞能力就有相應(yīng)的增強,同時CD86、CD80和CD40作為DCs的共刺激因子,表達量上調(diào)可誘導(dǎo)T細胞的活化。本研究表明,在硒的安全質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著硒質(zhì)量濃度的降低,未成熟的BMDCs吞噬活性和腹腔巨噬細胞的吞噬活性顯著增強,吞噬活性最高分別能達到61.19%和71.85%。當未成熟BMDCs分化成熟后,表面分子MHCⅡ和共刺激分子CD86和CD80表達量顯著高于空白組,CD40的表達量也明顯增高。當硒質(zhì)量濃度為0.09 mg·L時,BMDCs刺激同種異體淋巴細胞增殖能力和抗原呈遞能力顯著增強。

      細胞因子是由多種組織細胞合成分泌的小分子多肽或糖蛋白,具有多種生物學(xué)功能,可以直接表征細胞功能。輔助T細胞(TH)為免疫系統(tǒng)的其他細胞提供輔助功能,在免疫應(yīng)答中起重要作用,而1型輔助性T細胞(Th1)、2型輔助性T細胞(Th2)和17型輔助性T細胞(Th17)是TH的效應(yīng)細胞亞群,一般認為Th細胞前體在抗原的刺激下,Th0細胞選擇性分化為Th1、Th2或TH17細胞。當DCs和巨噬細胞受到刺激時,會分泌各種細胞因子,其中IFN-γ、IL-12和TNF-a是Th1 CD4和CD8T細胞分化的標志,IL-10、IL-6和IL-1β可誘導(dǎo)Th2和Th17分化,主要作為防御細胞內(nèi)外病原體的免疫防線。巨噬細胞被激活時可產(chǎn)生大量NO,具有細胞毒性作用,可殺死細胞內(nèi)的細菌、寄生蟲和腫瘤細胞等,因此,NO分泌的增加可以直接反應(yīng)巨噬細胞的生理功能。本試驗結(jié)果顯示,一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi)的硒作用于BMDCs和腹腔巨噬細胞,在其上清液中IFN-γ的含量均隨硒質(zhì)量濃度的遞減而增多;在成熟BMDCs上清液中,IL-12的含量在硒的質(zhì)量濃度為0.18 mg·L時含量最高,IL-10隨硒質(zhì)量濃度的遞減而增多,TNF-α的含量隨硒質(zhì)量濃度遞減而降低,IL-6和IL-1β雖然也隨硒質(zhì)量濃度的遞減而增多,但從硒的質(zhì)量濃度0.36 mg·L時與空白組沒有顯著差異;在腹腔巨噬細胞上清液中,NO的含量在硒的質(zhì)量濃度為0.18 mg·L時含量最高,IL-10的含量隨硒質(zhì)量濃度遞減而降低,IL-6的含量隨硒質(zhì)量濃度遞減而增高,TNF-α的含量在硒的質(zhì)量濃度為0.72 mg·L時含量最高。分析細胞因子含量結(jié)果表明,在硒的作用下,DCs和巨噬細胞對TH1型和TH2型免疫應(yīng)答均有促進作用,并且對TH1型免疫應(yīng)答的促進作用更加明顯。

      4 結(jié) 論

      綜上所述,一定質(zhì)量濃度的硒可以增強對樹突狀細胞和巨噬細胞的調(diào)控作用,且以濃度為0.18~0.09 mg·L時,效果更加顯著,因此值得進一步探究硒對機體免疫功能的影響。

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