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      庚基靈菌紅素高產(chǎn)菌株Notoacmeibacter sp.BGMRC2072的常壓室溫等離子體誘變(ARTP)選育*

      2021-01-13 03:10:48蘇志維盧天梅趙美婷李艷梅劉玉英高程海劉永宏
      廣西科學(xué) 2020年5期
      關(guān)鍵詞:突變率致死率初篩

      蘇志維,盧天梅,趙美婷,李艷梅,劉玉英,高程海,劉永宏

      (廣西中醫(yī)藥大學(xué)海洋藥物研究院, 廣西南寧 530200)

      0 引言

      靈菌紅素類色素是一類由微生物次級代謝所產(chǎn)生的,具有3個吡咯環(huán)母核結(jié)構(gòu)的天然紅色素的總稱[1],根據(jù)其側(cè)鏈烷基的長短及環(huán)化位置不同可分為多種結(jié)構(gòu)類似物,包括靈菌紅素、庚基靈菌紅素、十一烷基靈菌紅素、環(huán)烷基靈菌紅素、間環(huán)丙菌素、鏈玉紅菌素B等[2]。靈菌紅素是三吡咯類微生物色素的典型代表,研究人員已分離到很多產(chǎn)靈菌紅素類物質(zhì)的微生物,其中沙雷氏菌[3]、假單胞菌[4]、河氏菌[5]、弧菌[6]等是主產(chǎn)靈菌紅素的菌屬。庚基靈菌紅素是靈菌紅素的結(jié)構(gòu)類似物,其區(qū)別僅在于吡咯C環(huán)的3-位烷基側(cè)鏈被庚基取代。目前,僅有為數(shù)不多的菌株如Pseudovibriodenitrificans[7]、P.magnesiorubra[8]和Vibriogazogenes[9]被報道可產(chǎn)庚基靈菌紅素,且產(chǎn)量極低,如主產(chǎn)靈菌紅素的細菌P.magnesiorubra,其產(chǎn)生的庚基靈菌紅素的比例僅占總代謝物的1%[7]。現(xiàn)代藥理研究發(fā)現(xiàn),靈菌紅素及其類似物具有廣泛的生物活性,在醫(yī)藥、化妝品、環(huán)境治理、紡織染料等領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景和市場價值[1,2,10-13]。

      目前針對產(chǎn)靈菌紅素菌種誘變改良的方法較多,包括利用紫外或微波技術(shù)處理的物理誘變法[4,14]、用EMS處理的化學(xué)誘變法[5]和復(fù)合誘變法[15]等。張德偉等[16]采用常壓室溫等離子體(Atmospheric and Room Temperature Plasma,ARTP)誘變篩選靈菌紅素生產(chǎn)菌突變株,使靈菌紅素產(chǎn)量比誘變前提高1.23倍。與其他誘變育種手段相比,利用ARTP進行微生物誘變育種可造成DNA多樣性損傷,且具有操作簡便、成本低、無有毒有害物質(zhì)參與誘變過程、突變率高等優(yōu)點,并易獲得遺傳穩(wěn)定性良好的突變株[17]。目前尚未有關(guān)于使用ARTP誘變篩選庚基靈菌紅素高產(chǎn)菌株的方法報道。前期研究發(fā)現(xiàn)一株非致病性的海洋細菌Notoacmeibactersp.BGMRC2072(簡稱C9),其主要代謝產(chǎn)物為庚基靈菌紅素,對高溫、紫外線照射具有較強的抗性[18]。為了使海洋細菌C9能更高效、大量合成庚基靈菌紅素,本研究以C9為出發(fā)菌株,利用ARTP進行誘變,并結(jié)合遺傳穩(wěn)定性測試,篩選穩(wěn)定高產(chǎn)庚基靈菌紅素的菌株,為庚基靈菌紅素的生產(chǎn)發(fā)酵、現(xiàn)代藥理研究提供理論依據(jù)和技術(shù)借鑒。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 試劑

      酵母粉、麥芽提取粉、葡萄糖和瓊脂(廣州環(huán)凱微生物科技有限公司),海鹽(廣東鹽業(yè)集團有限公司),甲醇、丙酮和鹽酸(國藥集團化學(xué)試劑有限公司)。

      1.1.2 菌種

      海洋細菌C9來源于廣西防城港怪石灘的海綿,經(jīng)16S RNA測序鑒定為Notoacmeibacter屬的一個種,本實驗室選育保藏,編號為BGMRC2072。

      1.1.3 培養(yǎng)基

      改良ISP2液體培養(yǎng)基(1 L):酵母粉0.2%,麥芽提取粉0.2%,葡萄糖0.2%,海鹽3%,加水溶解后121℃高壓滅菌20 min。固體培養(yǎng)基在此基礎(chǔ)上添加1.3%瓊脂。

      1.1.4 主要儀器

      高壓滅菌鍋(日本PHCbi,型號:MLS-371L-PC),萬分之一電子分析天平(廣州梅特勒,型號:ML204T),DHG-9246A電熱鼓風(fēng)干燥箱和SHP-250生化培養(yǎng)箱(上海精宏實驗設(shè)備有限公司),可見分光光度計(上海精科電子有限公司,型號:721G),常溫等離子誘變育種儀(無錫源清天木有限公司,型號:APTR-lls),臺式高速離心機(立日本日),超凈工作臺(蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司,型號:SW-CJ-2F),純水機(四川優(yōu)普超純科技有限公司,型號:UPH-ll-JDZB),手動移液槍(艾本德國際貿(mào)易有限公司,型號:Eppendorf-100/1000型),恒溫振蕩器(蘇州精騏有限公司,型號:IS-RDS3)。

      1.2 方法

      1.2.1 菌體干重及比生長速率測定

      結(jié)合Tu等[19]和Cao等[20]的方法,利用分光光度法測定600 nm處的光密度值(OD600)及菌體干重(CDW)來衡量菌體的生長情況。收集待測菌液加入離心管中,10 000 r/min 快速離心5 min收集菌體,棄上清,菌體用蒸餾水清洗3遍,100℃干燥至恒重。

      菌體的比生長速率μ=(lnWt-lnW0)/T,

      其中,W0和Wt分別代表進入對數(shù)生長期的菌體OD600初始值和最終值,T代表培養(yǎng)時間(h)。

      1.2.2 ARTP誘變處理方法

      (1)ARTP誘變致死曲線

      將菌種從-80℃超低溫冰箱中取出,轉(zhuǎn)接至改良ISP2固體培養(yǎng)基平板上,28℃培養(yǎng)2—3 d后,挑取單菌落轉(zhuǎn)接至改良ISP2液體培養(yǎng)基中,于28℃、180 r/min培養(yǎng)30—40 h至對數(shù)生長期。收集菌液,10 000 r/min 快速離心5 min,棄上清,用5%甘油生理鹽水重懸,分光光度計測量菌懸液OD600為0.6—0.8。取10 μL菌懸液至ARTP誘變金屬載片上進行誘變,以99.99% 氦氣作為工作氣體(流量10 mL/min),在電源功率115 W的條件下分別誘變處理0,10,20,30,40,50,60,70,80,90,105 s。誘變結(jié)束后用5%甘油生理鹽水稀釋,分別取10-4、10-5和10-63個濃度的菌液100 μL涂布于改良ISP2固體培養(yǎng)基平板上,置于28℃培養(yǎng)2—3 d后記錄每皿菌落數(shù),計算誘變致死率,繪制致死率曲線。

      (2)誘變時間確定

      結(jié)合張德偉等[16]和Cao等[20]的方法,綜合考慮不同生長階段的正負突變率及比生長速率,確定最佳誘變時間。若突變菌株的考察指標值(菌落形態(tài)、顏色、OD600、比生長速率等)高于原始菌株視為正突變,反之則視為負突變。

      1.2.3 突變菌株的篩選

      在最佳處理時間下誘變后,根據(jù)平板上菌落的生長狀況挑取生長大而豐滿、色澤鮮艷、菌落直徑較大的單菌落,接種于裝有50 mL 改良ISP2液體培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中,28℃、180 r/min 培養(yǎng)34 h。利用分光光度法測定菌體的OD600并觀察菌體顏色、形態(tài)進行初篩,再通過測定初篩突變菌株的庚基靈菌紅素含量進行復(fù)篩,最后將復(fù)篩得到的突變菌株接種發(fā)酵,以菌體生物量為指標篩選優(yōu)勢突變菌株。

      1.2.4 庚基靈菌紅素的提取與檢測

      取1 mL培養(yǎng)至34 h的菌體發(fā)酵液,加入9 mL酸性甲醇(pH=3),震蕩破壁,10 000 r/min 快速離心5 min,至菌體基本無色,取上清液稀釋至合適濃度后,用分光光度計檢測536 nm處的吸光值。庚基靈菌紅素含量的計算公式為

      庚基靈菌紅素含量(μg/mL)=(19.076×

      OD536+0.800)×D×V,

      其中,D為色素浸提液的稀釋倍數(shù),V為發(fā)酵液的體積(mL)。

      1.2.5 突變菌株的穩(wěn)定性

      將復(fù)篩得的突變菌株接種于改良ISP2固體培養(yǎng)基上,連續(xù)培養(yǎng)10代,再分別轉(zhuǎn)接到改良ISP2液體培養(yǎng)基中發(fā)酵培養(yǎng),并測定10代菌種的庚基靈菌紅素產(chǎn)量,考察突變菌株的遺傳穩(wěn)定性。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 ARTP誘變致死曲線

      如圖1所示,致死率隨著誘變時間的增加而增大,當(dāng)處理時間延長到40 s后,ARTP誘變導(dǎo)致的菌株致死率上升緩慢;當(dāng)處理時間延長到50 s后,菌株的致死率達90%以上且趨于平緩;誘變時間大于60 s后致死率小幅度回落?,F(xiàn)代育種研究表明,致死率達到90%以上時,菌株正突變概率大大增加[21]。但由于在只知致死率大小的情況下,無法判斷50,60,70 s中哪個處理時間點造成正突變的概率最大,因此還需結(jié)合這3個時間段的正負突變率來綜合考慮最終選擇的誘變處理時間。

      2.2 最佳突變時間

      選擇菌體生長初始期、對數(shù)生長期及穩(wěn)定期3個階段綜合考察菌體突變情況,結(jié)果如圖2所示,當(dāng)處理50 s時,對數(shù)生長期的正突變率最高,但初始期的正突變率較低;當(dāng)處理70 s時,初始期的正突變率最高,但對數(shù)生長期的正突變率最低;只有處理時間為60 s時,初始期、穩(wěn)定期、對數(shù)生長期的正負突變率都較均衡。經(jīng)綜合考慮,最終選擇60 s作為突變處理時間。

      圖1 ARTP誘變致死率曲線

      圖2 不同處理時間的正負突變率

      2.3 突變菌株篩選

      A、B兩組出發(fā)菌株經(jīng)ARTP平行誘變處理60 s后,根據(jù)菌落生長情況挑取生長大而豐滿,色澤鮮艷的菌落,接種發(fā)酵后測定菌液OD600,并觀察菌體顏色深淺,初篩得到35株OD600高于出發(fā)菌株且發(fā)酵顏色較深的突變株,測定其庚基靈菌紅素含量進行復(fù)篩,結(jié)果如圖3所示。根據(jù)文獻[20],選擇與出發(fā)菌株相比產(chǎn)量增加20%以上的菌株作為正突變篩選范圍,可以看出庚基靈菌紅素產(chǎn)量超過20%的菌株有A6、A7、A10、A11、A13、B4、B5、B6、B10、B13共10株。

      將上述篩選的10株突變菌株接種發(fā)酵,以生物量為指標篩選優(yōu)勢突變菌株,如圖4a所示,大多數(shù)突變菌株在穩(wěn)定期OD600與比生長速率無較大差別,而A11和B10這兩株突變菌株在穩(wěn)定期OD600和比生長速率明顯低于其他平行突變菌株,生長穩(wěn)定性欠佳。結(jié)合突變菌株菌體生物量(圖4b),除了突變菌株A10的菌體生物量顯著性高于出發(fā)菌株及其他突變菌株外,其余的菌株菌體生物量無較大差別,其中B5、B13這2株突變菌株略高于出發(fā)菌株。綜合菌落形態(tài)、庚基靈菌紅素產(chǎn)量和菌體生物量等因素,最終選擇B5、B13這2株突變菌株進行下一輪的遺傳穩(wěn)定性復(fù)篩。

      圖3 突變菌株的庚基靈菌紅素產(chǎn)量

      **表示突變菌株A10菌體生物量顯著高于其他水平突變株

      2.4 突變菌株的穩(wěn)定性

      突變菌株B5在傳代3代后菌株的庚基靈菌紅素產(chǎn)量開始下降(圖5a),推測突變菌株B5的遺傳不穩(wěn)定;而突變菌株B13的庚基靈菌紅素產(chǎn)量相對穩(wěn)定在748.91—756.27 μg/mL,沒有隨著傳代數(shù)的增加而下降(圖5b),所以最終確定突變菌株B13為最佳突變菌株。

      圖5 B5和B13的遺傳穩(wěn)定性

      3 討論

      海洋細菌Notoacmeibactersp.BGMRC2072代謝過程中主要累積庚基靈菌紅素,盡管生物合成途徑未明確,但課題組前期研究發(fā)現(xiàn)庚基靈菌紅素在對數(shù)生長期前期產(chǎn)量極低,培養(yǎng)16—32 h菌體進入穩(wěn)定期后開始大量合成,并于接種后40 h達到最大值,約為(384.27±13.25) mg/L,且這類靈菌紅素對高溫、紫外線照射具有較強的抗性[18],因此提高海洋細菌Notoacmeibactersp.BGMRC2072的庚基靈菌紅素生產(chǎn)能力具有重要的研究意義。利用ARTP誘變技術(shù)得到的突變菌株存在正突變和負突變,為了快速高效地篩選到有利的菌株,結(jié)合菌株生長形態(tài)和生物量(OD600)進行快速初篩。金瑋玥等[22]通過測定OD600并觀察菌株顏色深淺進行初篩,最終結(jié)合實驗篩選到一株高產(chǎn)類胡蘿卜素的菌株。Cao等[20]綜合考慮菌體密度、比生長速率、菌體干重、脂肪酸產(chǎn)率等最終獲得一株總脂肪酸含量明顯提高的突變株,該方法顯著提高ARTP誘變突變株的篩選效率。本研究通過觀察單菌落的形態(tài)及顏色,結(jié)合細菌生物量OD600進行初篩,得到35株突變株,再通過測定初篩菌株的庚基靈菌紅素的產(chǎn)量,獲得10株庚基靈菌紅素產(chǎn)量高于出發(fā)菌株產(chǎn)量20%的突變株,最后以生物量為指標篩選優(yōu)勢突變菌。結(jié)果表明突變菌株的菌體生物量和庚基靈菌紅素產(chǎn)量均高于出發(fā)菌株,進一步證明通過菌體生物量、單菌落個體大小及菌體顏色深淺能夠提示菌株發(fā)生了正突變。

      為了更好地發(fā)酵生產(chǎn)庚基靈菌紅素,下一步還需對突變菌株開展培養(yǎng)條件優(yōu)化、發(fā)酵罐發(fā)酵培養(yǎng)等,并對突變菌株進行全基因測序分析,明確庚基靈菌紅素的生物合成分子調(diào)控機理,為實現(xiàn)庚基靈菌紅素的產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。

      4 結(jié)論

      本實驗以海洋細菌Notoacmeibactersp.BGMRC2072為出發(fā)菌株,利用常壓室溫等離子體(ARTP)進行誘變,得到一株高產(chǎn)庚基靈菌紅素的突變菌株B13,其庚基靈菌紅素產(chǎn)量為748.91 μg/mL,而出發(fā)菌株為384.27 μg/mL,突變菌株B13比原始菌株的庚基靈菌紅素產(chǎn)量增加了94.9%,且突變菌株B13具有良好的遺傳穩(wěn)定性。

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