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    姜黃素通過上調(diào)miR-124抑制牙齦卟啉單胞菌LPS誘導(dǎo)的人牙齦成纖維細胞炎癥反應(yīng)*

    2020-11-05 01:21:52李坤陽左春然劉愛群朱蘭省
    中國病理生理雜志 2020年10期
    關(guān)鍵詞:胞漿清液細胞核

    李坤陽, 陳 棟, 左春然, 劉愛群, 朱蘭省, 牛 兵 △

    [1河南省中醫(yī)院(河南中醫(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院)口腔科,河南鄭州450001;2鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院(河南省口腔醫(yī)院)口腔科,河南鄭州450052]

    牙周病是菌斑微生物引發(fā)的感染性疾病,其中牙周炎是成人失去牙齒主要原因,不僅影響牙周組織健康、引發(fā)神經(jīng)炎癥增加,還與糖尿病、腦血管疾病和阿爾茨海默氏病的關(guān)系密切[1],影響患者健康。牙齦卟啉單胞菌(Porphyromonas gingivalis,Pg)作為牙周炎主要致病菌,脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)是主要毒力因子,可導(dǎo)致牙周組織細胞破壞,加重牙周炎病程[2]。減少Pg LPS 的毒性作用對于緩解牙周炎至關(guān)重要。姜黃素(curcumin,Cur)是從姜黃中提取的酚類色素,具有抗炎和抗氧化等多種作用,在人牙髓干細胞中可促進組織修復(fù)[3];可緩解LPS誘導(dǎo)成骨細胞線粒體功能改變,并且使細胞凋亡數(shù)目明顯減少[4]。微小 RNA-124(microRNA-124,miR-124)是一個重要的炎癥相關(guān)miRNA,可抑制下游核因子κB(nuclear factor κB,NF-κB)活化發(fā)揮抗炎作用[5]。Cur 是否影響miR-124 的表達進而影響炎癥作用尚未發(fā)現(xiàn)報道。本研究采用Pg LPS誘導(dǎo)人牙齦成纖維細胞(human gingival fibroblasts,HGFs)建立HGFs 炎癥模型,探究Cur對HGFs炎性反應(yīng)的影響。

    材料和方法

    1 細胞

    HGFs購自貝納生物(編號BNCC339845)。

    2 藥品、試劑及儀器

    Pg LPS和Cur 均購自 R&D Systems(貨號分別為ATCC33277 和C1385G);免疫細胞化學(xué)染色試劑盒購自Protein(貨號為BPICC30-1KT);抗波形蛋白、角蛋白、NF-κB p-p65、骨架蛋白(F-actin)、GADPH和lamin B1 抗體,白細胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)和腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)ELISA 試劑盒均購自Abcam(貨號分別為ab92547、ab155078、ab222494、ab112127、ab181602、ab220797、ab1793 和ab9722);CCK-8 試劑盒(貨號為C0037)購自碧云天生物科技有限公司;RNA 提取試劑盒、miRNA First Strand cDNA Synthesis Kit和2× SYBR qPCR Mix 均購自天根生化科技(北京)有限公司(貨號分別為 DP405、KR211和KR108);核蛋白和胞漿提取試劑盒購自上海吉凱基因化學(xué)技術(shù)有限公司(貨號為KGF1100)。CO2培養(yǎng)箱購自上海精密儀器有限公司(型號為LRH-70F);酶標儀購自賽默飛世爾科技有限公司(型號為Varioskan LUX);實時熒光定量PCR 儀購自ABI(型號為7500);蛋白凝膠成像儀購自BIO-RAD(型號為GelDoc 2000)。

    3 方法

    3.1 實驗分組 將HGFs 分為對照(control)組、LPS組和 LPS+Cur(20、40 和80 μmol/L)組。除 control 組外,其余各組用 10 mg/L LPS[6]處理,同時各 LPS+Cur組分別添加 20、40和80 μmol/L Cur 置于 CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    3.2 CCK-8法檢測細胞活力 按3.1方法各組細胞置于96孔板中,分別培養(yǎng)24 h,添加CCK-8試劑,CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)2 h,酶標儀檢測450 nm 處各孔細胞吸光度(A)值。每個樣品做6個重復(fù)。

    3.3 ELISA 檢測上清液中炎癥因子 IL-1β和TNF-α水平 按3.1 方法處理各組細胞,置于6 孔板中培養(yǎng)24 h,收集細胞培養(yǎng)液,3 000 r/min離心5 min收集上清,分裝后置于4℃冰箱待用。嚴格按照人IL-1β 和TNF-α ELISA 試劑盒說明書檢測上清液中 IL-1β 和TNF-α水平。

    3.4 RT-qPCR 法檢測細胞中miR-124 的水平 收集完細胞培養(yǎng)液后用RNA 提取試劑盒提取細胞的總RNA,miRNA First Strand cDNA Synthesis Kit 將其逆轉(zhuǎn)錄成第1 鏈cDNA。采用RT-qPCR 實驗對miR-124 和內(nèi)參照 U6 進行擴增,反應(yīng)體系為 10 μL 2×SYBR qPCR Mix、1 μL 40 mg/L cDNA、各0.5 μL 上、下游引物(10 μmol/L)和8 μL ddH2O。反應(yīng)條件為:95℃ 30 s;95℃ 30 s,62℃ 35 s,45個循環(huán)。miR-124的上游引物序列為5'-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACAG -TACA-3',下游引物序列為5'-GGTGGCTTATGTTTGTAATCCC-3';U6 的上游引物序列為5'-CTCGCTTCGGCAGCACA-3',下游引物序列為 5'-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3'。2-ΔΔCt法計算 miR-124 的相對表達水平。

    3.5 Western blot 檢測細胞胞漿和胞核中NF-κB pp65 蛋白的水平 按3.1 方法處理各組細胞,置于6孔板中培養(yǎng)24 h,收集細胞置1 mL 離心管中,PBS 重懸清洗細胞,500×g離心5 min,移去上清液,加入預(yù)冷的胞漿提取試劑Ⅰ充分震蕩直至離心管中出現(xiàn)均勻無殘留細胞團塊得到渾濁液體,振蕩器上震蕩15 s 后冰上放置10 min,加入胞漿提取試劑Ⅱ混勻,4℃、16 000×g離心5 min,立即取上清液為胞漿,立即吸出至新的EP 管中保存待用。加入預(yù)冷的核蛋白提取試劑震蕩混勻,振蕩器上震蕩15 s 后冰上放置10 min,重復(fù)4次,4℃、16 000×g離心5 min,立即取上清液為胞核,立即吸出至新的EP 管中保存待用。凝膠電泳分離蛋白質(zhì)后轉(zhuǎn)膜;5%脫脂奶粉室溫封閉2 h;對應(yīng)加入I 抗[NF-κB p65、內(nèi)參照GADPH(胞漿)和lamin B1(胞核)],4℃孵育過夜;加入對應(yīng)Ⅱ抗,室溫孵育1 h。DAB 顯色試劑盒避光顯色,蛋白凝膠成像儀拍照和定量分析。

    3.6 激光共聚焦顯微鏡檢測NF-κB p-p65蛋白入核情況 按3.1 處理各組細胞24 h 后的爬片,加入無水乙醇固定 30 min,PBS 清洗,200 μL 4%Triton 靜置15 min,滴加NF-κB p-p65(綠色熒光)和F-actin(紅色熒光)單克隆抗體,室溫孵育1 h,PBS 清洗,加入DAPI后室溫孵育5 min,PBS清洗,熒光顯微鏡下觀察并拍照。

    3.7 過表達miR-124 檢測細胞胞漿和胞核中NF-κB p-p65 蛋白的水平 在上述實驗基礎(chǔ)上添加mimic-NC 組和 miR-124 mimic 組,各組 10 mg/L LPS處理并同時添加mimic-NC 和miR-124 mimic,其余培養(yǎng)條件與3.2 培養(yǎng)過程相同,檢測control 組、LPS 組、mimic-NC 組和 miR-124 mimic 組細胞中 miR-124 的水平,并檢測細胞胞漿和胞核中NF-κB p-p65蛋白的水平,實驗方法同3.4和3.5。

    4 統(tǒng)計學(xué)處理

    用統(tǒng)計學(xué)軟件SPSS 25.0 和GraphPad 8.0 進行數(shù)據(jù)分析,計量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(mean±SD)描述,多組間比較采用方差分析,各組均數(shù)間的兩兩比較采用SNK-q法。當P<0.05 時認為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1 Cur對細胞活力的影響

    LPS 組細胞的活力水平低于 control 組(P<0.05);LPS+Cur(40和80 μmol/L)組細胞的活力高于LPS組(P<0.05),見圖1。

    Figure 1.Comparison of viability in each group after the cells were treated for 24 h.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖1 各組細胞處理24 h活力的比較

    2 Cur 對細胞上清液中 IL-1β和TNF-α 水平的影響

    LPS 組細胞上清液的 IL-1β和TNF-α 水平高于control 組(P<0.05);LPS+40 μmol/L Cur 組細胞上清液的 TNF-α 及 LPS+80 μmol/L Cur 組細胞上清液的IL-1β和TNF-α水平低于LPS組(P<0.05),見圖2。

    3 Cur對細胞中miR-124水平的影響

    LPS 組細胞的 miR-124 水平低于 control 組(P<0.05);LPS+Cur(40和80 μmol/L)組細胞的miR-124水平高于LPS組(P<0.05),見圖3。

    4 Cur對細胞中NF-κB p-p65蛋白的影響

    LPS組細胞漿的NF-κB p-p65蛋白水平低于control 組(P<0.05);LPS+Cur(40和80 μmol/L)組細胞漿的NF-κB p-p65蛋白水平高于LPS 組(P<0.05),見圖 4。LPS 組細胞核的 NF-κB p-p65 蛋白水平高于control 組(P<0.05);LPS+Cur(40 和80 μmol/L)組細胞核的NF-κB p-p65 蛋白水平低于 LPS 組(P<0.05),見圖5。

    Figure 2.Comparison of the IL-1 β and TNF-α levels in the supernatant of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖2 各組細胞上清液的IL-1β和TNF-α水平比較

    Figure 3.Comparison of miR-124 levels in the cells of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖3 各組細胞的miR-124水平的比較

    5 Cur對細胞中NF-κB p-p65位置的影響

    NF-κB p-p65 顯示為綠色,F(xiàn)-actin 顯示為紅色。圖 6 中 Merged 1 顯示組合的 NF-κB p-p65和F-actin,Merged 2顯示組合的NF-κB p-p65、F-actin和核染色。control 組細胞核的 NF-κB p-p65 較少;LPS 組細胞核的 NF-κB p-p65 明顯高于 control 組;與 LPS 組相比,LPS+Cur(20、40和80 μmol/L)組細胞核的 NF-κB pp65 減少;且隨著 Cur 劑量升高,細胞核的 NF-κB pp65減少,見圖6。

    6 過表達miR-124細胞中miR-124表達水平

    LPS 組和 mimic-NC 組細胞的 miR-124 水平低于control 組(P<0.05);miR-124 mimic 組細胞的 miR-124水平高于LPS 組和mimic-NC 組(P<0.05),見圖7。

    Figure 4.The protein level of NF-κB p-p65 in the cytoplasm of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖4 各組細胞細胞漿的NF-κB p-p65蛋白水平的變化

    Figure 5.The protein level of NF-κB p-p65 in the cell nucleus of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖5 各組細胞細胞核的NF-κB p-p65蛋白水平的變化

    Figure 6.The changes of NF-κB p-p65 in the cells of each group(DAPI double staining,the scale bar=100 μm).圖6 各組細胞中NF-κB p-p65的變化

    Figure 7.Comparison of miR-124 levels in the cells of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖7 各組細胞的miR-124水平的比較

    7 過表 達 miR-124 細胞的 NF-κB p-p65 蛋白 的影響

    LPS 組和 mimic-NC 組細胞漿的 NF-κB p-p65 蛋白水平低于control 組(P<0.05);miR-124 mimic 組細胞漿的NF-κB p-p65 蛋白水平高于LPS 組和mimic-NC 組(P<0.05),見圖 8。LPS 組和 mimic-NC 組細胞核的NF-κB p-p65蛋白水平高于control組(P<0.05);miR-124 mimic 組細胞核的 NF-κB p-p65 蛋白水平低于LPS組、mimic-NC組(P<0.05),見圖9。

    討 論

    牙周疾病涉及宿主免疫反應(yīng)的激活,不僅充當牙周組織抵抗細菌侵襲的防御者,而且還充當組織破壞的介體,影響機體健康[7]。牙菌斑生物膜中微生物引起的牙周支持組織慢性感染疾病會導(dǎo)致牙周支持組織發(fā)生炎癥和牙周袋形成;進一步導(dǎo)致進行性附著喪失和牙槽骨吸收,牙周骨喪失[8],影響患者牙齒健康。Cur 具有抗炎和抗腫瘤等作用,同時低毒、安全、耐受性好[9];在線結(jié)扎誘導(dǎo)大鼠實驗性牙周炎模型中可抑制牙齦炎癥,對牙周組織起保護作用[10],但在人中尚未發(fā)現(xiàn)相關(guān)研究。

    Figure 8.The protein level of NF-κB p-p65 in the cytoplasm of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖8 各組細胞細胞漿的NF-κB p-p65蛋白水平的變化

    Figure 9.The protein level of NF-κB p-p65 in the cell nucleus of each group.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs LPS group.圖9 各組細胞細胞核的NF-κB p-p65蛋白水平的變化

    IL-1β 屬典型致炎因子,可促進炎癥反應(yīng),在牙周炎中高表達,可作為治療牙周炎抗炎效果的標志物[11];TNF-α 參與炎癥反應(yīng)和免疫反應(yīng),可激活破骨細胞活性促進牙槽骨吸收從而損害牙周組織[12]。IL-1β和TNF-α 協(xié)同刺激可抑制破骨細胞增殖、分化。本研究發(fā)現(xiàn)LPS 組細胞活力低于control 組,提示Pg LPS 誘導(dǎo)HGFs 后抑制細胞活力,細胞生長受到影響。Pg LPS 誘導(dǎo) HGFs 可使細胞上清液中 IL-1β 和TNF-α 水平升高,提示 IL-1β和TNF-α 可能損害HGFs 導(dǎo)致細胞炎癥嚴重,進而影響細胞生長。Cur處理Pg LPS 誘導(dǎo)的HGFs,隨著劑量增加,細胞活性逐漸恢復(fù),上清液中 IL-1β和TNF-α 水平逐漸降低,提示 Cur 可以減少 IL-1β和TNF-α 釋放從而緩解炎癥作用,但具體機制尚不清楚。

    NF-κB 可參與應(yīng)激反應(yīng)、免疫和炎性疾病等過程,在牙周炎中可誘導(dǎo)炎癥因子表達從而發(fā)揮促炎作用[13]。NF-κB 特異性藥理抑制劑加入變形鏈球菌共培養(yǎng)的HGFs 可促進細胞增殖和膠原合成從而改變細胞活力和黏附性,改善 HGFs 狀態(tài)[14]。IL-1β 和TNF-α 激活表面的細胞因子受體導(dǎo)致NF-κB 從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)移向細胞核,從而促進炎癥介質(zhì)表達,促進炎癥反應(yīng)[15];活化 TNF-α 激活 NF-κB 信號通路進而抑制牙周膜干細胞成骨分化導(dǎo)致組織受損[16]。若將NF-κB 抑制在細胞漿中將會下調(diào)NF-κB 活化水平從而抑制炎癥發(fā)生。本研究發(fā)現(xiàn)LPS 組細胞漿中NF-κB p-p65 蛋白水平低于 control 組,細胞核中 NF-κB pp65蛋白水平高于control組,激光共聚焦顯微鏡同樣發(fā)現(xiàn)LPS 組NF-κB p-p65 蛋白向核轉(zhuǎn)移較明顯,提示可能是由于IL-1β 和TNF-α 等促炎因子的刺激導(dǎo)致NF-κB 從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)移向細胞核發(fā)揮炎癥作用和抑制HGFs生長。Cur處理Pg LPS 誘導(dǎo)的HGFs,隨著劑量增加,細胞漿中NF-κB p-p65 蛋白水平升高、細胞核中 NF-κB p-p65 蛋白水平降低,NF-κB p-p65 活性被抑制從而減緩炎癥反應(yīng),緩解疾病。

    miRNA 在炎癥中研究廣泛,外傷性腦損傷后小膠質(zhì)外泌體中miR-124 的增加抑制神經(jīng)元炎癥[17];miR-124 可通過NF-κB 信號通路調(diào)節(jié)鼻咽癌細胞增殖和凋亡[18];在Amadori糖化白蛋白誘導(dǎo)的視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞活化和炎癥中miR-124 表達下調(diào),下調(diào)miR-124 表達可刺激NF-κB p65 磷酸化并誘導(dǎo)視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞釋放TNF-α 從而加重炎癥反應(yīng)[19]。本研究發(fā)現(xiàn)LPS組細胞中miR-124水平低于control 組,提示 miR-124 在 Pg LPS 誘導(dǎo) HGFs 中表達下調(diào),促進炎癥反應(yīng),可能是 miR-124 下調(diào)促進 NF-κB p-p65 活化誘導(dǎo)炎癥因子 IL-1β和TNF-α 激活并釋放,IL-1β和TNF-α 激活后進一步促進NF-κB 從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)移向細胞核加重炎癥反應(yīng)。Cur處理Pg LPS誘導(dǎo)的HGFs后miR-124 水平升高,且進一步發(fā)現(xiàn),miR-124 mimic組細胞漿中NF-κB p-p65 蛋白水平高于LPS 組,細胞核中 NF-κB p-p65 蛋白水平低于 LPS 組,Cur 處理與過表達miR-124 功能類似,均可高表達miR-124 從而緩解上述過程從而實現(xiàn)對HGFs的保護。

    綜上所述,Cur 可能通過上調(diào)miR-124 進而抑制NF-κB p-p65入核實現(xiàn)對Pg LPS誘導(dǎo)的HGFs炎性反應(yīng)的保護。但Cur 藥理機理復(fù)雜,miR-124 有多個調(diào)控位點,Cur 具體影響miR-124 調(diào)控位點尚未清楚,也是接下來研究重點。

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