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    紅藍(lán)復(fù)合光對(duì)龍眼愈傷組織生長(zhǎng)及類黃酮代謝的影響

    2020-08-18 02:55:56劉生財(cái)李漢生楊曦晨賴鐘雄
    河南農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年8期
    關(guān)鍵詞:胚性花青紅藍(lán)

    劉生財(cái),李漢生,楊曦晨,賴鐘雄

    (福建農(nóng)林大學(xué) 園藝植物生物工程研究所,福建 福州 350002)

    龍眼(DimocarpuslonganLour.)又名桂圓,屬于無(wú)患子科(Sapindaceae)龍眼屬(Dimocarpus),富含類黃酮等次生代謝物質(zhì),具有重要的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和藥用價(jià)值[1-3]。類黃酮廣泛存在于植物體內(nèi),如菊花[3]、大豆[4]、山楂葉[5]等,其合成受到多種因素的影響,如溫度、光照、傷害等,類黃酮的生物合成已經(jīng)成為植物次生代謝基因工程、代謝工程的主要目標(biāo)。表兒茶素是類黃酮化合物中重要一種類型,具有較強(qiáng)的抗氧化能力,營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和藥用價(jià)值更高[6-7]。

    光是植物的生長(zhǎng)發(fā)育及次生代謝產(chǎn)物形成的重要影響因子[8-10]。在單色光處理中,藍(lán)光有利于銀杏葉片[9]、迷迭香[11]和龍眼胚性愈傷組織[12]中類黃酮含量的積累。紅光和藍(lán)光是植物吸收的主要光源,有利于促進(jìn)次生代謝產(chǎn)物的合成與累積,紅藍(lán)復(fù)合光更有利于次生代謝產(chǎn)物的累積,能夠改善茄皮品質(zhì)并促進(jìn)類黃酮合成[13],提高韭菜類黃酮含量[14]。

    植物體內(nèi)類黃酮的生物合成是一系列酶促反應(yīng)過(guò)程。查爾酮合成酶(CHS)是類黃酮物質(zhì)生物合成途徑的關(guān)鍵酶,介導(dǎo)黃酮類化合物合成的第1步[15-16]。無(wú)色花色素還原酶基因(LAR)是類黃酮生物合成途徑中下游的一個(gè)重要基因,LAR蛋白能夠催化兒茶素、無(wú)色花青素和相關(guān)的黃烷-3-羥基阿福豆素與沒(méi)食子兒茶素等植物聚合型原花青素或者濃縮單寧合成起始物質(zhì)的合成。研究已證實(shí),CHS和LAR基因表達(dá)都受到光調(diào)控[17-18]。

    HY5是第1個(gè)被發(fā)現(xiàn)促進(jìn)光形態(tài)建成的轉(zhuǎn)錄因子,它能編碼1個(gè)bZIP類型的轉(zhuǎn)錄因子[19]。AKIFUMI等[20]研究表明,葡萄HY5的表達(dá)受光誘導(dǎo)。冀曉昊等[21]研究發(fā)現(xiàn),HY5不僅參與葡萄果樹(shù)發(fā)育進(jìn)程,還與花青苷的積累成正相關(guān)。HY5誘導(dǎo)擬南芥花青苷合成轉(zhuǎn)錄因子MYB75/PAP1[22]和葡萄VvMYBA1[21]的表達(dá),調(diào)控花青苷合成途徑結(jié)構(gòu)基因表達(dá),導(dǎo)致花青苷積累的差異。而且有研究發(fā)現(xiàn),COP1可泛素化降解HY5進(jìn)而影響CHS轉(zhuǎn)錄[23-24]。光質(zhì)調(diào)控龍眼胚性愈傷組織類黃酮的研究雖有報(bào)道[12],但紅藍(lán)復(fù)合光對(duì)龍眼胚性愈傷組織的研究尚未見(jiàn)報(bào)道。因此,探討不同紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)狀態(tài)及類黃酮代謝產(chǎn)物含量的影響,分析轉(zhuǎn)錄因子DlHY5及其與類黃酮結(jié)構(gòu)基因DlCHS、DlLAR之間的聯(lián)系,為揭示紅藍(lán)復(fù)合光調(diào)控龍眼胚性愈傷組織類黃酮代謝的機(jī)制提供線索。

    1 材料和方法

    1.1 植物材料和光照處理

    龍眼胚性愈傷組織為福建農(nóng)林大學(xué)園藝植物生物工程研究所長(zhǎng)期繼代保存的紅核子龍眼胚性愈傷組織LC2細(xì)胞系[25]。取大小相一致的龍眼胚性愈傷組織接種于MS+2,4-D 1.0 mg/L培養(yǎng)基中。然后將相同接種量的龍眼胚性愈傷組織置于光照培養(yǎng)箱內(nèi),設(shè)計(jì)9種紅藍(lán)復(fù)合光配比,分別為紅∶藍(lán)=1∶9、紅∶藍(lán)=2∶8、紅∶藍(lán)=3∶7、紅∶藍(lán)=4∶6、紅∶藍(lán)=5∶5、紅∶藍(lán)=6∶4、紅∶藍(lán)=7∶3、紅∶藍(lán)=8∶2、紅∶藍(lán)=9∶1。光照總強(qiáng)度為32 μmol/(m2·s),光照時(shí)間為12 h/d,藍(lán)光中心波長(zhǎng)為457 nm,紅光中心波長(zhǎng)為660 nm。以黑暗條件作為對(duì)照。研究不同光照條件對(duì)龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)的影響。通過(guò)倒置電子顯微鏡(Leica)進(jìn)行龍眼胚性愈傷組織細(xì)胞觀察。每個(gè)處理25瓶,處理周期為25 d。每個(gè)處理設(shè)3次生物學(xué)重復(fù)。

    1.2 胚性愈傷組織生長(zhǎng)率測(cè)定

    取出龍眼胚性愈傷組織測(cè)定鮮質(zhì)量,計(jì)算其生長(zhǎng)率[26],生長(zhǎng)率=(終鮮質(zhì)量-接種鮮質(zhì)量)/接種鮮質(zhì)量×100%。

    1.3 類黃酮含量測(cè)定

    黃類酮提取方法參照李琨等[27]的方法并適當(dāng)改良。將龍眼胚性愈傷組織進(jìn)行凍干處理2 d,天平稱取0.2 g材料,首先加入60%乙醇溶液10 mL,通過(guò)超聲波清洗器(KQ-200SPDE)提取1 h(60 ℃,功率300 W),冷卻靜置20 min,再通過(guò)離心機(jī)(TGL-15B)離心10 min(8 000×g,20 ℃)。然后吸取5 mL上清液于新試管中,并稀釋至10 mL。最后取龍眼胚性愈傷組織提取液5 mL,精確加入0.3 mL 5%亞硝酸鈉溶液,搖勻后放置6 min,加入0.3 mL 10%硝酸鋁溶液,搖勻后放置 6 min,加入4 mL 20%氫氧化鈉溶液,加入10 mL 60%乙醇溶液定容至10 mL刻度線,搖動(dòng)均勻并靜置15 min。通過(guò)紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(T6)檢測(cè)吸光度,波長(zhǎng)設(shè)置為510 nm,根據(jù)所建立標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算龍眼胚性愈傷組織的類黃酮含量。

    1.4 表兒茶素提取和UPLC分析

    龍眼胚性愈傷組織表兒茶素的提取方法參照類黃酮提取方法。然后利用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將提取液蒸干,再用5 mL甲醇溶液溶解。最后,將提取液通過(guò)0.22 μm有機(jī)膜,待上機(jī)測(cè)定。色譜條件[28]:Waters ACQUITY HSS T3(100 mm×2.1 mm,1.8 μm) 色譜柱;流動(dòng)相為甲醇(A)-0.1%甲酸溶液(B),梯度洗脫(0~12 min,5%~20%A;12~30 min,25%~55%A);流速:0.2 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng):280 nm;柱溫:30 ℃;進(jìn)樣體積:1 μL。

    1.5 紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織中DlLAR、DlCHS、DlHY5基因表達(dá)影響試驗(yàn)

    根據(jù)龍眼基因組數(shù)據(jù)庫(kù)及轉(zhuǎn)錄組信息,篩選DIHY5、DlCHS、DlLAR基因序列。取不同光照處理后的龍眼胚性愈傷組織總RNA,RNA質(zhì)量檢驗(yàn)合格后采用PrimeScript? RT reagent Kit(TaKaRa)試劑盒進(jìn)行cDNA逆轉(zhuǎn)。參照LIN等[29]方法,以龍眼EIF4a、EF-la和FSD作為內(nèi)參基因,采用羅氏LightCyclers 480和SYBR Prumix EXTaqTM Ⅱ進(jìn)行不同光照處理下HY5、DlCHS、DlLAR基因qPCR分析。龍眼基因qPCR引物信息見(jiàn)表1。

    表1 龍眼基因qPCR引物信息Tab.1 Primers for qPCR of longan

    1.6 數(shù)據(jù)分析

    試驗(yàn)數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析使用SPSS V19.0 軟件,單因素方差分析采用Duncan法,顯著性水平設(shè)為P<0.05。制圖采用GraphPad Prism 6.0軟件。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)的影響

    通過(guò)對(duì)龍眼胚性愈傷組織形態(tài)進(jìn)行觀察,與黑暗相比,紅藍(lán)復(fù)合光配比為1∶9和2∶8時(shí),龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)量較多,生長(zhǎng)率分別為1 107.5%、1 130.0%;紅藍(lán)復(fù)合光配比為9∶1和8∶2時(shí),龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)量較少,生長(zhǎng)率分別為877.5%和912.5%(圖1)。

    不同小寫(xiě)字母表示各處理差異在0.05水平顯著,下同Different small letters indicate significant differences at 0.05 level,the same below圖1 紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)率的影響Fig.1 Effect of the ratio of red-blue composite light on growth rate of longan embryonic callus(ECs)

    通過(guò)對(duì)愈傷組織形態(tài)觀察(圖2A—D)也可以看出,藍(lán)光比例高時(shí)有利于愈傷組織增殖,而且顏色有些褐色,當(dāng)紅藍(lán)光配比為9∶1時(shí),愈傷組織呈淡黃色。而對(duì)龍眼胚性愈傷組織顯微觀察時(shí),并未發(fā)現(xiàn)紅藍(lán)復(fù)合光對(duì)其有明顯影響,但紅藍(lán)復(fù)合光配比為1∶9時(shí),細(xì)胞中的內(nèi)含物質(zhì)更多,顏色更深(圖2E—H)。

    A和E:黑暗;B和F:紅∶藍(lán)=1∶9;C和G:紅∶藍(lán)=5∶5;D和H:紅∶藍(lán)=9∶1

    2.2 紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織類黃酮和表兒茶素含量的影響

    由圖3可知,紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織類黃酮及表兒茶素含量有顯著影響。當(dāng)紅藍(lán)復(fù)合光配比為1∶9時(shí),類黃酮及表兒茶素含量均為最高,分別為12.49 mg/g和2 187.54 μg/g,顯著高于其他處理;隨著復(fù)合光中紅光比例的增加,龍眼胚性愈傷組織中類黃酮和表兒茶素含量都呈下降趨勢(shì)。其中,在紅藍(lán)光配比為7∶3、8∶2和9∶1時(shí),類黃酮含量較低,為8.38~8.73 mg/g,與黑暗處理(8.31 mg/g)差異不顯著;而在黑暗條件下表兒茶素含量最低。當(dāng)紅藍(lán)光進(jìn)行配比時(shí),藍(lán)光對(duì)總黃酮和表兒茶素的積累效率顯著大于紅光,隨著紅藍(lán)復(fù)合光中紅光比例的增加,類黃酮和表兒茶素含量逐漸降低;隨著藍(lán)光比例的增加,類黃酮和表兒茶素總含量逐漸增加。表明紅藍(lán)光配比中藍(lán)光比例高時(shí)有利于類黃酮及表兒茶素累積。

    圖3 紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)龍眼胚性愈傷組織類黃酮和表兒茶素含量的影響Fig.3 Effect of the ratio of red-blue composite light on the contents of flavonoids and epicatechin of longan ECs

    2.3 紅藍(lán)光復(fù)合配比對(duì)龍眼DlCHS、DlLAR和DlHY5基因表達(dá)的影響

    通過(guò)對(duì)龍眼胚性愈傷組織類黃酮合成關(guān)鍵基因DlCHS和DlLAR在紅藍(lán)光配比中的表達(dá)量分析,DlCHS和DlLAR相對(duì)表達(dá)量變化趨勢(shì)一致(圖4a—b)。在黑暗培養(yǎng)時(shí),DlCHS和DlLAR的相對(duì)表達(dá)量都是最低。隨著紅藍(lán)復(fù)合光配比變化,DlCHS和DlLAR基因相對(duì)表達(dá)量也發(fā)生顯著變化。隨著紅光比例降低,DlCHS和DlLAR基因相對(duì)表達(dá)量呈先上升后下降趨勢(shì),在紅藍(lán)光配比為3∶7時(shí),DlCHS和DlLAR相對(duì)表達(dá)量最高。而且,還可以看出,有光存在時(shí)DlCHS和DlLAR基因相對(duì)表達(dá)量均顯著高于對(duì)照,說(shuō)明紅藍(lán)光配比可以影響龍眼胚性愈傷組織類黃酮代謝產(chǎn)物合成。

    同時(shí),DlHY5的相對(duì)表達(dá)量在黑暗培養(yǎng)條件下最低(圖4c)。當(dāng)復(fù)合光配比為紅∶藍(lán)=1∶9時(shí),DlHY5的相對(duì)表達(dá)量達(dá)到最高值,其他復(fù)合光配比處理的相對(duì)表達(dá)量均低于紅∶藍(lán)=1∶9處理,但是也高于黑暗處理。可知紅藍(lán)復(fù)合光比黑暗條件更適合轉(zhuǎn)錄因子DlHY5的表達(dá)。同時(shí),還發(fā)現(xiàn)DlHY5基因的表達(dá)量趨勢(shì)與類黃酮代謝產(chǎn)物含量趨勢(shì)基本一致。因此,推測(cè)紅藍(lán)復(fù)合光可能通過(guò)調(diào)控DlHY5基因表達(dá)量進(jìn)而影響類黃酮代謝產(chǎn)物的合成。

    圖4 紅藍(lán)復(fù)合光配比對(duì)DlCHS、DlLAR和DlHY5基因表達(dá)的影響Fig.4 Effect of the ratio of red-blue composite light on the expression levels of DlCHS,DlLAR and DlHY5 of longan ECs

    3 結(jié)論與討論

    3.1 紅藍(lán)復(fù)合光有利于龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)及類黃酮和表兒茶素積累

    光質(zhì)是調(diào)節(jié)控制植物生長(zhǎng)及代謝的基本因素之一,可以調(diào)控大多數(shù)生物合成過(guò)程,不僅影響植物的初生代謝和生長(zhǎng)狀態(tài),也會(huì)影響植物的次生代謝過(guò)程。紅藍(lán)復(fù)合光有利于次生代謝產(chǎn)物的累積,能夠改善茄皮品質(zhì)并促進(jìn)類黃酮合成[13],提高韭菜類黃酮含量[14]。不同藍(lán)光和紅光配比能顯著地影響櫻桃番茄果實(shí)的品質(zhì),藍(lán)光比例增大可促進(jìn)櫻桃番茄果實(shí)番茄紅素、游離氨基酸和類黃酮的形成,增加糖酸比;紅光比例增大有利于可滴定酸的形成[30]。本研究也得到相似結(jié)論,紅藍(lán)復(fù)合光有利于龍眼胚性愈傷組織中類黃酮及表兒茶素合成,且藍(lán)光比例越大越有利于次生代謝物質(zhì)的合成。

    3.2 紅藍(lán)復(fù)合光對(duì)龍眼胚性愈傷組織類黃酮合成基因的影響

    CHS是類黃酮物質(zhì)生物合成途徑的關(guān)鍵酶。它介導(dǎo)了黃酮類化合物合成的第1步,并且具有功能多樣性,參與不同發(fā)育階段、組織特異性和環(huán)境響應(yīng)等方面調(diào)控,對(duì)類黃酮的合成起到極為關(guān)鍵的作用,不但對(duì)調(diào)控植物體內(nèi)黃酮類化合物的生物合成具有重要意義,還對(duì)提高植物體內(nèi)類黃酮物質(zhì)的產(chǎn)量具有非常重要的意義。CHS基因的表達(dá)受到多種因素的影響,如環(huán)境脅迫、光照、傷害、誘導(dǎo)劑,甚至中間產(chǎn)物如肉桂酸,這些都能影響CHS的表達(dá)水平;CHS和苯丙氨酸解氨酶基因(PAL)的表達(dá)量降低,糖和表兒茶素含量下降[31]。對(duì)擬南芥、芥菜、歐芹等植物研究表明,CHS啟動(dòng)子含有光響應(yīng)元件ACE(ACGT containing element)和MRE(MYB recognition element),受紫外光和藍(lán)光誘導(dǎo)表達(dá)[32-33]。

    CHS基因在柑橘類黃酮生物合成中具有非常關(guān)鍵的作用,CHS基因的表達(dá)水平與類黃酮含量之間表現(xiàn)出很明顯的正相關(guān)關(guān)系[34],表明CHS基因的表達(dá)水平與類黃酮含量是十分密切的。LAR基因?qū)τ诒韮翰杷氐恼{(diào)控極為重要,在龍眼胚性愈傷組織中能對(duì)表兒茶素物質(zhì)進(jìn)行催化、轉(zhuǎn)化,對(duì)表兒茶素含量起到極大的促進(jìn)作用,對(duì)表兒茶素的合成至關(guān)重要。LAR蛋白能夠催化兒茶素、無(wú)色花青素和相關(guān)的黃烷-3-羥基阿福豆素與沒(méi)食子兒茶素這些植物聚合型原花青素或者濃縮單寧合成起始物質(zhì)的合成。本研究也發(fā)現(xiàn),DlCHS基因和DlLAR基因受到紅藍(lán)復(fù)合光的影響,紅光在一定程度上會(huì)抑制相關(guān)基因的表達(dá),隨著藍(lán)光在紅藍(lán)復(fù)合光中所占比例的增加,類黃酮和表兒茶素含量也提高,這說(shuō)明藍(lán)光會(huì)對(duì)龍眼胚性愈傷組織中類黃酮和表兒茶素合成基因的表達(dá)起到促進(jìn)作用,有利于類黃酮合成。

    3.3 轉(zhuǎn)錄因子HY5參與紅藍(lán)復(fù)合光對(duì)龍眼胚性愈傷組織類黃酮代謝的調(diào)控

    不同波長(zhǎng)的光被植物體內(nèi)不同光受體感知,并通過(guò)光信號(hào)途徑調(diào)控植物生長(zhǎng)發(fā)育和次生物質(zhì)代謝。HY5能夠受到光質(zhì)誘導(dǎo)表達(dá)。李慧峰等[35]研究表明,蘋(píng)果HY5能夠被白光、藍(lán)光、紫外光誘導(dǎo),而紅光對(duì)HY5表達(dá)沒(méi)有明顯誘導(dǎo)。冀曉昊等[21]研究還發(fā)現(xiàn),HY5在葡萄果實(shí)發(fā)育過(guò)程中有2次表達(dá)高峰,分別在花青苷快速積累期與果實(shí)成熟后期,說(shuō)明HY5的表達(dá)還與發(fā)育進(jìn)程有關(guān),且與花青苷的積累呈正相關(guān)。已有研究表明,HY5可以誘導(dǎo)擬南芥花青苷合成轉(zhuǎn)錄因子MYB75/PAP1的表達(dá)[22]。VvMYBA1是擬南芥MYB75/PAP1的同源基因,其表達(dá)規(guī)律與VvHY5基本一致,說(shuō)明紅藍(lán)復(fù)合光可能是通過(guò)光信號(hào)轉(zhuǎn)錄因子VvHY5調(diào)控VvMYBA1的表達(dá),進(jìn)而調(diào)控花青苷合成途徑結(jié)構(gòu)基因的表達(dá),導(dǎo)致花青苷積累的差異。而在本研究中也發(fā)現(xiàn),隨著紅光在紅藍(lán)復(fù)合光中比例的增加,DlHY5表達(dá)也受到抑制,這就表明紅藍(lán)復(fù)合光能夠誘導(dǎo)龍眼胚性愈傷組織中DLHY5基因表達(dá),進(jìn)而影響類黃酮代謝產(chǎn)物的合成。

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