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    烏頭堿對H9c2細(xì)胞分化的影響

    2020-07-06 07:33:38張斌強(qiáng)陳龍冉鳳英杜開慧余飛陳煒楊麗萍薛旸陳琴華陳繼舜
    安徽醫(yī)藥 2020年7期
    關(guān)鍵詞:胎牛烏頭心肌細(xì)胞

    張斌強(qiáng),陳龍,冉鳳英,杜開慧,余飛,陳煒,楊麗萍,薛旸,陳琴華,陳繼舜

    作者單位:湖北醫(yī)藥學(xué)院附屬東風(fēng)醫(yī)院,a實驗中心,b心血管內(nèi)科,湖北 十堰442008

    附子是溫里藥中常用藥物之一,被稱為“百藥之長”,又譽(yù)為“回陽救逆第一要藥”?,F(xiàn)代的科學(xué)研究同樣認(rèn)為附子具有很高的醫(yī)學(xué)藥用價值,比如在強(qiáng)心、鎮(zhèn)痛、抗腫瘤、調(diào)節(jié)免疫等領(lǐng)域都有其獨特的價值并得到了廣泛的應(yīng)用[1-2],最近的研究發(fā)現(xiàn)它還能夠改善心衰大鼠體內(nèi)的抗氧化能力[3],但是臨床上經(jīng)常因服用不當(dāng)發(fā)生中毒死亡,其臨床應(yīng)用受到了嚴(yán)格的限制[4],而烏頭堿是附子中具有毒性的主要生物活性堿之一。先前的研究表明烏頭堿能誘導(dǎo)心肌細(xì)胞鈉離子通道開放,加速鈉離子內(nèi)流,促使細(xì)胞膜去極化并且改變心肌細(xì)胞K+通道活性從而引發(fā)心律失常[5-6]。烏頭堿還能通過激活和磷酸化p38/MAPK信號通路,增加細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度,最終誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[7],在體外實驗中,也有研究證實了烏頭堿通過降低PGC1α表達(dá)引起線粒體功能障礙,并且使得Cytoch rome c、Bax、cleaved、Caspase3表達(dá)上調(diào)以及Bcl2的表達(dá)下調(diào)最終導(dǎo)致H9c2心肌細(xì)胞的凋亡[8]。綜上所述,烏頭堿的毒性研究多集中在引起多種細(xì)胞和動物模型的電活動異常但對心肌細(xì)胞分化的影響的研究尚不多見。H9c2細(xì)胞株廣泛應(yīng)用于大鼠的生理和心臟毒性研究[9],該細(xì)胞在1%胎牛血清和全反式維甲酸(RA)的誘導(dǎo)下可分化為具有成熟表型的心肌細(xì)胞[10],應(yīng)用此種誘導(dǎo)方法,先后引起了與心臟發(fā)育[11]和藥理毒理學(xué)許多相關(guān)的研究[12-14]。2017年12月至2018年7月,本研究通過烏頭堿對H9c2分化的影響,進(jìn)一步闡釋烏頭堿對心肌細(xì)胞毒性作用機(jī)理。

    1 材料與方法

    1.1 材料與設(shè)備 大鼠H9c2心肌細(xì)胞(中國典型培養(yǎng)物保藏中心);烏頭堿(上海普譽(yù)科貿(mào)有限公司,生產(chǎn)批號w-006-151225);全反式維甲酸(美國Sigma公司,生產(chǎn)批號WXBC4500V);DMEM干粉培養(yǎng)基(美國Gibco公司);胎牛血清(美國Biological Industries公司,生產(chǎn)批號1640562);引物(上海Sangon Biotech合成);cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國Thermo Scientific公司);SYBR Green PCR Kit(中國TIANGEN公司);兔來源一抗α-actinin抗體(美國Cell Singaling公司);小鼠來源一抗cTnI抗體(美國Santa Cruz Biotechnology,Inc公司);山羊抗兔熒光二抗(美國antgene公司);山羊抗小鼠熒光二抗(美國antgene公司);熒光定量PCR儀(美國Corbett Research公司,Rotor gene 6000);倒置相差顯微鏡(日本Olympus Corporation公司,CKX41);熒光顯微鏡(德國Carl zeiss AG公司,Axio scope A1)。

    1.2 方法

    1.2.1 H9c2細(xì)胞的培養(yǎng) H9c2細(xì)胞接種到含有10%胎牛血清、100 kU//L青霉素和100 mg/L鏈霉素的高糖DMEM培養(yǎng)基中,于37℃、5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng),胰蛋白酶消化傳代備用。

    1.2.2 烏頭堿對H9c2細(xì)胞增殖影響 采用噻唑藍(lán)比色法(MTT)檢測烏頭堿對H9c2細(xì)胞增殖的影響,取對數(shù)生長期的H9c2細(xì)胞以5×107個/L的細(xì)胞濃度接種于96孔培養(yǎng)板中,每孔加入200 μL細(xì)胞懸液。24 h后,加入200 μL的烏頭堿溶液,使其終濃度分別為10、30、50、70、90、110 μM/L,每組設(shè)7個復(fù)孔,繼續(xù)培養(yǎng)5 d、3 d換液。加入5 g/L的MTT,37℃孵育4 h,再加入150 μL DMSO。振蕩10 min使結(jié)晶甲臜充分溶解后用酶聯(lián)免疫檢測儀490 nm波長下檢測OD值。細(xì)胞增殖率=實驗組平均值/對照組平均值×100%。

    1.2.3 細(xì)胞分組培養(yǎng) 取對數(shù)生長期的H9c2細(xì)胞接種于6孔板和24孔板中,待細(xì)胞生長至90%融合度時加入不同實驗分組的誘導(dǎo)因子,實驗分組為:①正常培養(yǎng)組(含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基),②分化模型組(含1%胎牛血清、1 μM/L RA的DMEM培養(yǎng)基),③烏頭堿處理組(含1%胎牛血清、1 μM/L RA、50 μM/L烏頭堿的DMEM培養(yǎng)基)。于37℃、5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng),3 d換液培養(yǎng)5 d后光鏡照相。

    1.2.4 熒光定量PCR(qPCR)檢測分化相關(guān)基因的表達(dá) H9c2細(xì)胞分組培養(yǎng)結(jié)束后取6孔板用TRIZOL試劑完全裂解細(xì)胞,將細(xì)胞裂解液用氯仿抽提,異丙醇沉淀,沉淀RNA溶于DEPC水后測定其純度與含量后應(yīng)用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將其逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。將cDNA作為模板加入目的基因引物進(jìn)行熒光定量PCR檢測,反應(yīng)條件:95℃,5 min;60℃,20 s;72℃,1 min,40個循環(huán)。以目的基因域循環(huán)數(shù)(Threshold cycle,Ct)值對同一樣本的內(nèi)參照基因GAPDH Ct值進(jìn)行目的基因表達(dá)的相對定量分析。目的基因引物序列(見表1)。

    1.2.5 免疫熒光化學(xué)染色觀察胞質(zhì)內(nèi)α-actinin表達(dá) 將接種于24孔板中的不同組細(xì)胞用PBS洗3次,4%多聚甲醛固定30 min。PBS洗后加入1‰的TritonX-100破膜15 min;PBS洗3次,驢血清封閉30 min;加入PBS稀釋的兔來源α-actinin抗體(1∶100)4℃過夜;第2天37℃復(fù)溫1 h,洗去多余的一抗,PBS洗3次,每次5 min。加入用PBS稀釋的山羊抗兔二抗(1∶100),37℃孵育1h,PBS洗3次后加入濃度為1 μg/mL的DAPI染色15 min,PBS洗3遍,封片觀察。

    表1 引物序列

    1.2.6 蛋白質(zhì)印跡法檢測cTnI及α-actinin蛋白表達(dá) 將接種于6孔板中的不同組細(xì)胞棄培養(yǎng)基,加入RIPA裂解液,冰上孵育30 min,收集上清液。BCA法檢測上清液中蛋白質(zhì)濃度后,使用30 μg總蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳后,采用濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%脫脂牛奶室溫封閉2 h后,分別加入抗大鼠α-actinin、cTnI、和α-tublin抗體(1∶1 000稀釋),4℃孵育過夜。TBST漂洗后加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗孵育2 h,ECL顯色。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行單因素方差分析對比組間差異,結(jié)果以表示,LDS法均值兩兩比較。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 MTT法檢測烏頭堿對H9c2細(xì)胞生長活性的影響 與對照組相比,隨著烏頭堿作用濃度的增加,H9c2細(xì)胞的增殖率逐漸降低。不同濃度10、30、50、70、90、110 μM/L烏頭堿處理的H9c2細(xì)胞增殖率為(0.940±0.033),(0.732±0.027),(0.570±0.041),(0.347±0.031),(0.196±0.029),(0.137±0.026),與對照組相比增殖率降低,均差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。

    2.2 大鼠H9c2細(xì)胞各組形態(tài)學(xué)觀察 對照組顯示出正常H9c2細(xì)胞形態(tài)為梭形,在分化模型組中H9c2細(xì)胞呈現(xiàn)出細(xì)長的形態(tài),而烏頭堿處理組中細(xì)長形態(tài)細(xì)胞減少,細(xì)胞密度相對減少,與對照組細(xì)胞形態(tài)相近(見圖1)。

    2.3 免疫熒光化學(xué)染色觀察α?actinin分布 大鼠H9c2細(xì)胞α-actinin免疫熒光表達(dá)情況主要為細(xì)胞質(zhì)表達(dá)。正常培養(yǎng)組的H9c2僅有個別細(xì)胞表達(dá),經(jīng)分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng)后的表達(dá)細(xì)胞數(shù)量增多,α-actinin陽性胞質(zhì)形態(tài)呈現(xiàn)細(xì)長形態(tài),DAPI染色且呈現(xiàn)出多核聚集的現(xiàn)象。細(xì)胞而加入烏頭堿后α-actinin陽性細(xì)胞減少,細(xì)長形態(tài)細(xì)胞減少,表達(dá)受到抑制(見圖2)。

    2.4 qPCR檢測目的基因的表達(dá)情況 qPCR結(jié)果顯示,與正常培養(yǎng)組相比,分化模型組中,actc1、myl1、myl2、tnnt2的mRNA表達(dá)均上調(diào)(P<0.01);nppb的mRNA表達(dá)降低(P<0.05)。與分化模型組相比,烏頭堿處理組中,actc1、myl1、myl2、tnnt2的mRNA表達(dá)均下調(diào)(P<0.01);nppb的mRNA表達(dá)上調(diào)但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(見表2)。

    2.5 各組H9c2細(xì)胞cTnI及α?actinin蛋白表達(dá)情況 蛋白質(zhì)印跡法結(jié)果顯示,與正常培養(yǎng)組相比,分化模型組中cTnI及α-actinin的蛋白表達(dá)升高。與分化模型組相比,烏頭堿處理組中cTnI及α-actinin的蛋白表達(dá)下降。見圖3。

    表2 熒光定量PCR(qPCR)分析大鼠H9c2細(xì)胞各組分化相關(guān)基因的表達(dá)/

    表2 熒光定量PCR(qPCR)分析大鼠H9c2細(xì)胞各組分化相關(guān)基因的表達(dá)/

    注:與正常培養(yǎng)組比較,aP<0.01;與分化模型組比較,bP<0.01

    images/BZ_24_1286_614_2240_673.pngactc1 myl1 myl2 tnnt2 nppb 0.000 0.000 0.000 0.000 0.005 1.00±0.10 1.00±0.09 1.00±0.11 1.00±0.12 1.00±0.12 2.30±0.17a 2.57±0.15a 18.64±0.53a 5.53±0.23a 0.49±0.06a 0.55±0.03b 1.22±0.13b 10.02±1.10b 2.23±0.10b 0.61±0.05 62.17 63.15 206.65 216.89 10.30

    圖3 蛋白質(zhì)印跡法檢測心肌肌鈣蛋白I(cTnI)及α肌動蛋白(α-actinin)表達(dá)情況

    3 討論

    H9c2廣泛應(yīng)用于大鼠的生理和心臟毒性研究,先前的研究表明該細(xì)胞在1%胎牛血清和RA的誘導(dǎo)條件下可分化為具有成熟表型的心肌細(xì)胞,分化后的細(xì)胞與10%胎牛血清正常培養(yǎng)的H9c2細(xì)胞形態(tài)有顯著差異,其特點為形態(tài)細(xì)長并伴有多核聚集[10]。因為H9c2具有分化為成熟心肌細(xì)胞的能力,所以其作為一種分化模型在多個研究中得到應(yīng)用[15-16]。最近較為熱門的細(xì)胞外基質(zhì)微環(huán)境誘導(dǎo)H9c2分化為成熟心肌細(xì)胞的研究中發(fā)現(xiàn),H9c2細(xì)胞分化后具有高表達(dá)心肌細(xì)胞標(biāo)志物F-actin、α-actinin、cTnI、以及myl2和tnnt2基因表達(dá)的增高的特點。而BNP作為一個胚胎心肌高表達(dá)的標(biāo)記物受到nppb基因的調(diào)控,在未分化的H9c2心肌細(xì)胞中有較高的表達(dá)而分化后的成熟心肌細(xì)胞表達(dá)下降[17-18]。所以本研究采用qPCR檢測分化相關(guān)基因actc1、myl1、myl2、tnnt2、nppb,免疫熒光染色觀察αactinin表達(dá)以及蛋白質(zhì)印跡法檢測α-actinin、cTnI蛋白定量來分析H9c2心肌細(xì)胞的分化情況。

    之前的研究表明,烏頭堿對H9c2細(xì)胞有毒性作用能夠誘導(dǎo)其凋亡的產(chǎn)生[8]。本研究分別使用不同濃度的烏頭堿刺激H9c2細(xì)胞后用MTT檢測細(xì)胞增殖抑制率,烏頭堿對H9c2細(xì)胞的增殖抑制情況與先前的研究結(jié)果一致。因為RA誘導(dǎo)分化是一個較為長期的過程,之前的研究中誘導(dǎo)天數(shù)一般在5~7 d。我們用MTT檢測烏頭堿作用5 d后細(xì)胞的增殖率,挑選50 μM/L的烏頭堿濃度行后續(xù)實驗。本研究將H9c2在1%胎牛血清和RA培養(yǎng)條件下成功的誘導(dǎo)成為形態(tài)細(xì)長并伴有多核聚集的H9c2心肌細(xì)胞。在H9c2分化誘導(dǎo)的培養(yǎng)基中加入50 μM/L的烏頭堿后,結(jié)果表明經(jīng)烏頭堿處理后的H9c2細(xì)胞細(xì)長形態(tài)減少,多核聚集減少。mRNA呈現(xiàn)出actc1、myl1、myl2、tnnt2表達(dá)均降低(P<0.05),而nppb的mRNA表達(dá)處理前后差異無統(tǒng)計學(xué)意義。免疫熒光染色顯示出分化后的H9c2細(xì)胞胞質(zhì)內(nèi)α-actinin的表達(dá)增強(qiáng),而加入烏頭堿后α-actinin的表達(dá)降低,典型的分化細(xì)胞數(shù)量減少。同時蛋白質(zhì)印跡法檢測后顯示分化后cTnI及α-actinin蛋白表達(dá)增高,而烏頭堿處理組表達(dá)降低。說明分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基中加入烏頭堿后H9c2細(xì)胞的分化受到抑制。

    眾所周知,成熟的心肌細(xì)胞能夠有節(jié)律的跳動,這種生理功能是一系列復(fù)雜調(diào)控的結(jié)果,但是必不可少的就是粗細(xì)肌絲的滑動。目前對于H9c2向成熟心肌細(xì)胞分化的研究中,縱使沒有出現(xiàn)節(jié)律跳動的情況,但大多根據(jù)形態(tài)的改變,多核聚集的出現(xiàn),肌絲的形成以及相關(guān)基因和蛋白的表達(dá)來證明其向成熟心肌細(xì)胞分化的事實[18]。本研究通過烏頭堿對RA誘導(dǎo)H9c2分化的抑制作用,揭示了烏頭堿對H9c2分化相關(guān)基因和蛋白的抑制情況。其中actc1、myl1、myl2、tnnt2都是參與肌絲形成所需蛋白的重要調(diào)控基因,這些基因的表達(dá)能夠直接反應(yīng)心肌細(xì)胞的分化的程度。另外α-actinin表達(dá)的改變也印證了烏頭堿對心肌分化標(biāo)志物的抑制作用。我們可以猜想烏頭堿能夠通過某種方式影響心肌細(xì)胞肌絲中蛋白的表達(dá)從而導(dǎo)致肌絲的功能出現(xiàn)障礙,成為烏頭堿引發(fā)心臟毒性的機(jī)制。(本文圖1,2見插圖7-1)

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