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    金黃色葡萄球菌檢驗技術介紹及分析

    2020-06-15 01:44:48李留洋銳德檢測技術天津有限公司
    食品安全導刊 2020年16期
    關鍵詞:計數(shù)法劃線金黃色

    □ 李留洋 銳德檢測技術(天津)有限公司

    金黃色葡萄球菌是生活中最常見的病原菌之一,也是革蘭氏陽性菌的代表,可引起許多嚴重的感染。該菌對營養(yǎng)的要求不高,在普通培養(yǎng)基上生長良好,需氧或兼性厭氧。容易受金黃色葡萄球菌污染的食品主要為乳制品、蛋及蛋制品、各類熟肉制品,其次是含有乳類的冷凍食品等,因此對于該菌的檢驗也被確定為食品致病性菌種檢驗中的重要項目。

    圖1 樣品處理

    按照現(xiàn)行的國標方法,金黃色葡萄球菌檢測方法分為第一法定性檢驗、第二法平板計數(shù)法(適用于金黃色葡萄球菌含量較高的食品),以及第三法MPN計數(shù)法(適用于金黃色葡萄球菌含量較低的食品)。

    第一法定性檢驗過程包括樣品處理、樣品增菌、平板分離劃線、初步鑒定、確證鑒定這5個步驟,整個流程全部完成至少需要5天時間。第二法平板計數(shù)法包括5個步驟—樣品稀釋、樣品接種涂布、典型菌和可疑菌計數(shù)、鑒定試驗、結果計算,整個流程全部完成至少需要4天時間。第三法MPN計數(shù)法同樣包括5個步驟,即樣品稀釋、樣品增菌、平板分離劃線、鑒定試驗、查MPN表確認結果,整個流程全部完成至少需要5天時間。以下將對金黃色葡萄球菌的檢測流程進行簡單介紹,并對難點、注意事項進行梳理和講解。

    1 第一法:金黃色葡萄球菌定性

    1.1 樣品處理

    固態(tài)和半固態(tài)樣品:稱取25g樣品至盛有225mL7.5%氯化鈉肉湯中,充分混勻。

    液體樣品:吸取2 5 m L樣品至盛有2 2 5 m L 7.5%氯化鈉肉湯的無菌錐形瓶(瓶內(nèi)可預置適當數(shù)量的無菌玻璃珠)中,振蕩混勻。

    1.2 樣品增菌

    將上述樣品勻液置于36±1℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)18~2 4 h。

    圖2 血平板(左)與BP平板(右)

    1.3 平板分離劃線

    該步驟是整個金黃色葡萄球菌檢測環(huán)節(jié)中最重要的步驟之一,因為平板劃線分離的效果決定了可疑菌落的判定和選擇。平板劃線選擇三分法或四分法則分離效果較好,更容易出現(xiàn)單菌落平板。

    圖3 鏡檢

    1.4 初步鑒定

    分離的培養(yǎng)基選用Baird-Parker平板(BP平板)和血平板。結果顯示,金黃色葡萄球菌在Baird-Parker平板上呈圓形,表面光滑、凸起、濕潤,菌落直徑為2~3 m m,顏色呈灰黑色至黑色、有光澤,常有淺色(非白色)邊緣,周圍繞以不透明圈(沉淀),其外常有一清晰帶,當用接種針觸及菌落時具有黃油樣黏稠感;有時可見到不分解脂肪的菌株—除沒有不透明圈和清晰帶外,其他外觀基本相同;從長期貯存的冷凍或脫水食品中分離的菌落,其顏色常較典型菌落略淺,且外觀可能較為粗糙,質(zhì)地較干燥。在血平板上,金黃色葡萄球菌形成的菌落較大,呈圓形、光滑凸起、濕潤、金黃色(有時為白色),菌落周圍可見完全透明的溶血圈。結合兩種培養(yǎng)基的特性即可確定可疑菌落。

    1.5 確證鑒定

    1.5.1 染色鏡檢

    金黃色葡萄球菌為革蘭氏陽性球菌,排列呈葡萄球狀,無芽胞和莢膜,直徑約為 0.5~1μm。

    1.5.2 血漿凝固酶試驗

    挑取Baird-Parker平板或血平板上至少5個可疑菌落(小于5個則全選),分別接種到5mL BHI和營養(yǎng)瓊脂小斜面,在36±1℃條件下培養(yǎng) 18~24h。

    購買凍干兔血漿,按照說明書加入0.5mL無菌生理鹽水溶解,然后加入0.3mL BHI培養(yǎng)物,輕微搖晃至完全溶解或按照說明書直接將0.8mL BHI培養(yǎng)物加入到凍干兔血漿中輕微搖晃至完全溶解(一般選用后者),置于恒溫培養(yǎng)箱中,每半小時觀察一次凝集情況,連續(xù)觀察6h。根據(jù)經(jīng)驗,若金黃色葡萄球菌呈強陽性,一般1~2h就可凝集,有的甚至長達3 h才會凝集。需注意,切忌直接放置6h才進行觀察,因為菌種凝固后會發(fā)生自溶現(xiàn)象,隔夜自溶是常見的判斷。凝集的最好方法就是倒立觀察結塊,如倒立后內(nèi)容物不下落,則效果較好。

    1.5.3營養(yǎng)瓊脂純化

    典型金黃色葡萄球菌在營養(yǎng)瓊脂上一般呈黃色,較容易判斷;有些呈淡色、白色,但不常見。如果認為鑒定結果可疑,可挑取營養(yǎng)瓊脂小斜面的菌落到5mL BHI,36±1℃培養(yǎng)18~48h,重復試驗。

    圖4 典型菌落、陰性及陽性對照凝集效果

    2 第二法:平板計數(shù)法

    2.1 樣品稀釋

    固態(tài)和半固態(tài)樣品:稱取25g樣品至225mL稀釋液中(可選用0.85%的生理鹽水或磷酸鹽緩沖溶液)充分混勻,即為稀釋度10-1溶液,之后進行梯度稀釋。

    液體樣品:吸取25mL樣品至盛有225mL7.5%氯化鈉肉湯的無菌錐形瓶(瓶內(nèi)可預置適當數(shù)量的無菌玻璃珠)中,振蕩混勻。

    2.2 樣品接種涂布

    選擇性平板采用BP平板,該平板可提前一天配制—潔凈臺中放置過夜或置于25~50℃培養(yǎng)基中干燥,直到平板表面的水珠消失后備用。該步驟的目的是檢查平板是否染菌,最重要的是揮發(fā)培養(yǎng)基內(nèi)部的水分以利于涂布。每個梯度分別吸取1mL樣品勻液,以0.3mL、0.3mL、0.4mL接種量分別接種至3塊BP平板上,然后用無菌涂布棒涂布整個平板。如涂布棒不是一次性的,可以提前滅菌備用,也可用酒精燈灼燒2min以上冷卻備用。涂布時盡量涂干,注意不要觸及平板邊緣。此后將平板靜置10min,如樣液不易吸收,可將平板放在培養(yǎng)箱36±1℃培養(yǎng)1h。等樣品勻液吸收后翻轉(zhuǎn)平板,倒置后于36±1℃培養(yǎng)24~48h(倒置培養(yǎng)的目的在于防止與空氣中的細菌交叉污染,還可防止培養(yǎng)基水分揮發(fā)太快),觀察結果。

    2.3 典型菌和可疑菌計數(shù)

    從圖5可以看出,10-1稀釋度下菌落生長繁多,難以計數(shù);最適計數(shù)范圍為20~200CFU,故10-2稀釋度滿足計數(shù)要求,可疑菌總數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi);而10-3稀釋度下可疑菌落很少,故舍去。從10-2梯度上可以看出,具有沉淀環(huán)的菌落很多,這就需要從這些菌種中選擇5個或以上可疑菌落進行血漿凝固酶試驗,但是這5個菌落該如何選擇才能使最終的結果最接近真實值是需要技巧的。

    首先可以觀察到,平板上的可疑菌落沉淀環(huán)有兩種:一種是和菌落有些距離的沉淀環(huán),記為可疑菌1—經(jīng)過后期確認試驗可知此菌為干擾菌,即表皮葡萄球菌;另一種是從菌落邊緣直接延伸出來的沉淀環(huán),記為可疑菌2。將所有可疑菌1與所有可疑菌2的菌落數(shù)出來,可判斷出可疑菌落是兩類不同的細菌。根據(jù)兩者的比例,決定挑選可疑菌落數(shù)的分配情況,比例大的多選,比例小的少選。

    2.4 鑒定試驗

    平板法的鑒定試驗過程及注意事項按第一法的“1.4”“1.5”進行。

    2.5 結果計算

    ①若只有一個稀釋度平板的典型菌落數(shù)在20~200CFU之間,應計數(shù)該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算;

    ②若最低稀釋度平板的典型菌落數(shù)小于20CFU,應計數(shù)該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算;

    ③若某一稀釋度平板的典型菌落數(shù)大于200CFU,但下一稀釋度平板上沒有典型菌落,應計數(shù)該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算;

    ④若某一稀釋度平板的典型菌落數(shù)大于200CFU,而下一稀釋度平板上雖有典型菌落但不在20~200CFU范圍內(nèi),應計數(shù)該稀釋度平板上的典型菌落,按式(1)計算;

    ⑤若2個連續(xù)稀釋度的平板典型菌落數(shù)均在20~200CFU之間,應按式(2)計算。

    式(1)中,T為樣品中金黃色葡萄球菌菌落數(shù);A為某一稀釋度典型菌落的總數(shù);B為某一稀釋度鑒定為陽性的菌落數(shù);C為某一稀釋度用于鑒定試驗的菌落數(shù);d為稀釋因子。

    式(2)中,T為樣品中金黃色葡萄球菌菌落數(shù);A1為第一稀釋度(低稀釋倍數(shù))典型菌落的總數(shù);B1為第一稀釋度(低稀釋倍數(shù))鑒定為陽性的菌落數(shù);C1為第一稀釋度(低稀釋倍數(shù))用于鑒定試驗的菌落數(shù);A2為第二稀釋度(高稀釋倍數(shù))典型菌落的總數(shù);B2為第二稀釋度(高稀釋倍數(shù))鑒定為陽性的菌落數(shù);C2為第二稀釋度(高稀釋倍數(shù))用于鑒定試驗的菌落數(shù);1.1為計算系數(shù);d為稀釋因子(第一稀釋度)。

    3 第三法:MPN計數(shù)法

    3.1 樣品稀釋

    按照“2.1”進行。

    3.2 樣品增菌

    根據(jù)對樣品污染狀況的估計,選擇3個適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),在進行10倍遞增稀釋的同時,每個稀釋度分別接種1mL樣品勻液至7.5%氯化鈉肉湯管(如接種量超過1mL,則用雙料7.5%氯化鈉肉湯)。每個稀釋度接種3管,將上述接種物于36℃±1℃培養(yǎng)18~24 h。用接種環(huán)從培養(yǎng)后的7.5%氯化鈉肉湯管中分別取培養(yǎng)物1環(huán),移種于Baird-Parker平 板,3 6±1 ℃下培養(yǎng)2 4~4 8h。

    3.3 平板分離劃線

    用 接種環(huán)從培養(yǎng)后的7.5% 氯化鈉肉湯管中分別取培養(yǎng)物1環(huán),移種于Baird-Parker平 板,36±1 ℃下培養(yǎng)24~48h。

    3.4 鑒定試驗

    MPN法的鑒定試驗過程及注意事項按第一法的“1.4”“1.5”進行。

    3.5 查MPN表確認結果

    MPN結果按GB 4789.10-2016中附錄C查詢。

    4 總結

    以上便是金黃色葡萄球菌檢樣3種方法的簡單操作過程。該菌檢測過程的關鍵步驟是劃線分離和可疑菌落的判定,其中不要放過任何一個可疑菌落;檢測人員進行血漿凝固酶試驗時,需要注意對時間和凝固現(xiàn)象的把控,有些細節(jié)的處理還需要大量經(jīng)驗的積累。

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