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    羥氯喹抑制系統(tǒng)性紅斑狼瘡Th17細胞的分化研究

    2020-02-20 04:57:28李鳳菊郭學軍濮陽市油田總醫(yī)院風濕免疫科濮陽457001
    中國免疫學雜志 2020年1期
    關鍵詞:強的松氯喹培養(yǎng)液

    李鳳菊 郭學軍 (濮陽市油田總醫(yī)院風濕免疫科,濮陽 457001)

    系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus, SLE)是一種累及多臟器、多系統(tǒng)損害的,嚴重影響人類正常生活的,呈多種免疫異常的復雜自身免疫性疾病,臨床主要特征為全身多器官組織如腎臟、皮膚、血管及中樞神經(jīng)系統(tǒng)等部位的免疫復合物沉積和炎癥/壞死反應[1-4]。其發(fā)病機制是遺傳因素與環(huán)境因素等共同作用導致的患者免疫平衡紊亂。多項研究表明,異常B細胞失調產(chǎn)生大量自身抗體,T細胞的表達和功能異常以及異常T細胞分泌的細胞因子參與系統(tǒng)性紅斑狼瘡的發(fā)病。

    Th17細胞是一種以白細胞介素IL-17的分泌為特征的效應性CD4+T細胞亞群,它具有與傳統(tǒng)的T細胞亞群Th1和Th2細胞不同的功能特征[5]。近年研究發(fā)現(xiàn),Th17細胞可能參與了系統(tǒng)性紅斑狼瘡等自身免疫性疾病的免疫功能異常,但在SLE中作用的具體機制仍不完全明了。研究表明,SLE患者外周血中Th17細胞增加,且Th17細胞可能參與SLE患者的腎炎、血管炎、中樞神經(jīng)系統(tǒng)感染以及自身抗體的產(chǎn)生[6]。目前,Th17細胞及其相關細胞因子的研究表明,其對SLE的靶向治療有很大的應用前景[7]。

    羥氯喹(hydroxychloroquine,HCQ)是一種常用的治療或預防瘧疾的藥物,同時,它也是一種抗風濕性藥物,可以減輕風濕性關節(jié)炎、盤狀紅斑狼瘡或SLE癥狀[8,9]。因此,羥氯喹在臨床得到了廣泛的應用,已成為治療SLE的必備藥物。研究表明,羥氯喹可以抑制IL-6、IL-1β和腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α等促炎細胞因子的生產(chǎn)[10]。然而,目前羥氯喹對SLE患者以及體外分化的Th17細胞和Treg細胞的影響機制尚不明確。本文旨在研究羥氯喹對SLE患者Th17細胞分化的影響。

    1 資料與方法

    1.1資料 選取2017年9月至2018年9月30例SLE患者均符合1982年美國風濕病學會(ARA)修訂的SLE診斷標準。其中男性5人,女性25人,年齡16~50歲(平均年齡35.4歲),病程1~70個月(平均病程18.1個月)。征得他們的同意后,我們采取兩組治療方案。一組治療方案用藥為強的松,另一組治療方案用藥為強的松+羥氯喹。在治療前后,分別采用ELISA試劑盒檢測IL-17的濃度,通過流式細胞儀檢測SLE患者的Th17水平。同時在治療后對他們進行動態(tài)隨訪。

    另外選擇了20例年齡、性別構成與上述病例相匹配的健康志愿者作為健康對照組?;颊吆徒】抵驹刚呋拘畔⒁姳?。

    1.2方法

    1.2.1體外分離、培養(yǎng)T細胞以及刺激分化Th17細胞 體外實驗,我們從健康志愿者血液體外培養(yǎng)分化出Th17細胞。從健康志愿者中靜脈采血2 ml,肝素抗凝,淋巴細胞分離液分離外周血單核細胞(PBMC),用10%的胎牛血清1640培養(yǎng)液調整細胞濃度為2×106ml-1,從外周血單核細胞中純化出T細胞,具體如下:PBS清洗后加入混合抗體(抗-CD14、CD56、CD19、CD8、CD235a),4℃孵育10 min,加入包被有人抗鼠IgG Ab的Depletion Dynabeads,除去PBMC中非CD4+T細胞,在上清中加入抗CD25 Dynabeads 4℃孵育25 min,將CD4細胞分選成CD25+Tregs細胞和CD25-Treps細胞,流式細胞儀鑒定分離細胞純度。將細胞懸液加入24孔細胞培養(yǎng)板,每孔1 ml,分別加入包含CD3/CD28抗體-磁珠(5 μl/ml)、IL-1β(50 ng/ml)、轉化生長因子(TGF)-β(1 ng/ml)、IL-6 (30 ng/ml)、IL-23(5 ng/ml)、IL-4抗體(5 ng/ml)、IL-12抗體(5 ng/ml)、IL-2抗體(20 U/ml)的RPMI1640培養(yǎng)液,于37℃、5%CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 d,刺激分化出Th17細胞。其中,所有細胞因子和抗體均來自Peprotech。

    表1 患者和志愿者基本信息表[n(%)]
    Tab.1 Information of patients and volunteers[n(%)]

    InformationPatientswithSLE(n=30)Control(n=20)Averageage(year)35.432.8Agerange16-20yearsold2(6.7%)1(5%)21-30yearsold7(23.3%)4(20%)31-40yearsold13(43.3%)10(50%)41-50yearsold6(20%)4(20%)51-60yearsold2(6.7%)1(5%)GenderMale5(16.7%)3(15%)Female25(83.3%)17(85%)Pathogenesis1-6months5(16.7%)None7-12months6(20%)None13-24months12(40%)None25-36months4(13.3%)None≥37months3(10%)None

    培養(yǎng)液分為兩組,一組作為正常對照組,另一組加入20 μmol/L的HCQ[11],用于分析羥氯喹對Th17細胞分化的影響。

    1.2.2流式細胞分析法檢測PBMC中Th17細胞的表達 我們分離出SLE患者的外周血單核細胞,在含50 ng/ml佛波酯(PMA)、750 ng/ml離子霉素的培養(yǎng)液中,于37℃、5%CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1 h后加入20 μg/ml莫能霉素混勻后繼續(xù)培養(yǎng)5 h。用PE-Cy5/CD3抗體和FITC/CD8抗體染色15 min,再用PE/IL-17抗體進行胞內染色。最后,以CD3+CD8-設門,用流式細胞儀分析Th17細胞。

    在體外實驗中,我們從原始T細胞刺激分化出Th17后,用含/不含羥氯喹的培養(yǎng)液培養(yǎng)6 d,然后用FITC/CD4抗體和PE/IL-17抗體進行染色,用流式細胞儀從CD4+T細胞中篩選出IL-17+細胞。此外,我們用熒光素CFSE標記原始T細胞,然后在有/沒有羥氯喹的Th17細胞培養(yǎng)條件下培養(yǎng)6 d,通過流式細胞術分析檢測CFSE+細胞的比例。

    1.2.3ELISA檢測IL-17的濃度 ELISA試劑盒購自eBioscience公司。收集SLE患者及健康對照組的血清,用ELISA試劑盒檢測IL-17濃度。此外,分離出的T細胞在有/沒有羥氯喹的Th17細胞培養(yǎng)條件下培養(yǎng)6 d后,用ELISA檢測上清中IL-17的濃度。

    1.2.4PCR基因表達分析 使用Trizol試劑(購自Invitrogen)從SLE患者和健康對照組的PBMC中純化總RNA,采用PrimeScript RT Master Mix (Perfect Real Time)試劑盒合成cDNA,加入SYBR Premix EX Taq RT-PCR Master Mix (TaKaRa)后,用Bio-Rad iCycler 7500光學系統(tǒng)測定mRNA表達。以β-actin為內參采用2-ΔΔCt法計算變異倍數(shù)。使用的引物對如下:Hum β-actin(F:ATC ATG TTT GAG ACC TTC AAC A;R:CAT CTC TTG CTC GAA GTC CA);Hum IL-17A(F:AAA GTG GCC CGG ATG TGA GA;R:GAC ATT GTG CCC TGC CCT TCT);ROR-γt(F:TGA GAA GGA CAG GGA GCC AA;R:CCA CAG ATT TTG CAA GGG ATC A);FOXP3(F:GAA ACA GCA CAT TCC CAG AGT TC;R:ATG GCC CAG CGG ATG AG),引物均購自瑞博。

    2 結果

    2.1HCQ抑制SLE患者Th17細胞分化和IL-17產(chǎn)生 ELISA結果顯示,HCQ與強的松聯(lián)合治療與單純強的松治療相比,前者抑制了IL-17的產(chǎn)生(圖1A)。同樣,RT-PCR結果顯示,聯(lián)合治療后的SLE患者PBMC中IL-17 mRNA表達也比單純強的松治療的結果有所降低(圖1B)。此外,我們還對FOXP3的表達進行了評估,因為它是Treg細胞分化過程中的關鍵轉錄因子[12]。我們發(fā)現(xiàn)HCQ和強的松聯(lián)合治療與單純強的松治療相比,并不能有效提高FOXP3基因的表達(圖1C)。

    26例SLE患者在HCQ治療后的動態(tài)隨訪中,流式細胞術分析顯示,HCQ +強的松治療4周后,Th17細胞百分比受到了抑制(圖2A),但是,HCQ+強的松治療后Treg細胞的百分比卻增加(圖2B)。ELISA檢測結果顯示,HCQ+強的松聯(lián)合治療4周后,SLE患者血清中IL-17的產(chǎn)生降低(圖2C),F(xiàn)OXP3 mRNA基因表達增加(圖2D)。這些數(shù)據(jù)表明,HCQ聯(lián)合治療可以抑制SLE患者Th17細胞的擴增和IL-17的產(chǎn)生。

    2.2HCQ抑制體外Th17細胞分化和IL-17的產(chǎn)生 從健康志愿者的外周血單核細胞中分離純化出人T細胞,在有/沒有HCQ的Th17細胞培養(yǎng)基中培養(yǎng)。流式細胞術分析表明,HCQ抑制了CD4+IL-17+Th17細胞的分化(圖3A)。此外,我們發(fā)現(xiàn)HCQ可以抑制IL-17的產(chǎn)生和基因表達(圖3B和3C)。同時,RORγt是Th17細胞分化的關鍵轉錄因子,結果表明HCQ也抑制了RORγt的產(chǎn)生(圖3D)。此外,HCQ阻止CD4+IL-17+Th17細胞擴張的能力隨時間變化(圖3E)。同時,HCQ還可以抑制CFSE標記的Th17細胞的增殖(圖4A、B)。這些數(shù)據(jù)均表明,HCQ可以抑制體外Th17細胞的分化和IL-17的產(chǎn)生。

    圖3 流式細胞術檢測CD4+IL-17+Th17細胞百分比(n=3)Fig.3 HCQ inhibits Th17 cell differentiation and IL-17 production in vitro(n=3)Note: A.The percentage of CD4+IL-17+Th17 cells was analyzed by flow cytometry (n=3);B.The concentration of IL-17 in supernatants was analyzed by ELISA (n=3);C.Expression of IL-17 mRNA was analyzed by RT-PCR (n=3);D.Naive CD4+T cells were cultured for 12 days in conditions designed to induce Th17 differentiation,with or without 20 μmol/L HCQ;the gene expression of retinoic acid receptor related orphan receptor gamma t (RORγt) was analyzed by RT-PCR;E.The number of CD4+IL-17+cells could be induced in a time-dependent manner,and 20 μmol/L HCQ could time-dependently inhibit CD4+IL-17+cell proliferation (n=3).

    圖4 CFSE+Th17細胞的含量Fig.4 Content of CFSE+Th17 cellsNote: A.Sorted naive CD4+T cells were labeled with CFSE and cultured for 6 days in conditions designed to induce Th17 cell differentiation,with or without 20 μmol/L HCQ.CFSE+Th17 cells were analyzed by flow cytometry;B.The percentage of CFSE+among CD4+cells.

    3 討論

    Th17細胞是Th細胞的促炎亞群,在自身免疫疾病的發(fā)病機制中起著關鍵作用[13]。Th17細胞強有力的促炎活性可能導致SLE的許多病理特征,如誘導血管炎癥、白細胞募集、B細胞激活和自身抗體的產(chǎn)生[14]。多項研究表明,在SLE患者外周血中Th17細胞和IL-17都增加了,且在這些患者的皮膚病變、肺和腎臟中也發(fā)現(xiàn)了Th17細胞的增長[15]。因此,我們推測抑制Th17細胞或對抗IL-17可能是治療SLE的有效治療方法。本實驗我們發(fā)現(xiàn),HCQ和強的松聯(lián)合治療與單獨使用強的松治療相比,前者抑制了SLE患者Th17細胞分化和IL-17的產(chǎn)生,同時我們發(fā)現(xiàn)在HCQ處理數(shù)周后Th17細胞和IL-17的產(chǎn)生也受到了抑制。此外,我們的體外研究進一步證實HCQ抑制了Th17細胞分化、細胞數(shù)量增殖和IL-17的產(chǎn)生。綜上,HCQ可抑制Th17細胞,減輕后續(xù)炎癥反應是SLE治療的強效藥。

    Treg細胞可以調節(jié)效應T細胞的功能,從而維持免疫穩(wěn)態(tài)[16]。眾所周知,在SLE患者發(fā)病時,循環(huán)Treg細胞的數(shù)量會減少,并且Treg細胞的免疫抑制功能受損[17]。我們的研究表明,經(jīng)過強的松和HCQ聯(lián)合治療后,體內Treg細胞百分比和FOXP3基因表達均上升,這表明HCQ有可能促進了Treg細胞的分化。但是,強的松和強的松加HCQ治療的平行對照實驗卻沒有發(fā)現(xiàn)FOXP3表達的顯著差異,我們推測Treg細胞和FOXP3基因在體內表達上升可能是由于強的松的作用。

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