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    葛花解酲方對(duì)乙醇性HBV轉(zhuǎn)基因小鼠肝癌前病變GST-Pi和PCNA表達(dá)及Wnt/β-catenin信號(hào)通路的影響①

    2020-02-20 04:57:14吳文宇龍奉璽魏顯鰻稅會(huì)利唐東昕
    中國免疫學(xué)雜志 2020年1期
    關(guān)鍵詞:肝細(xì)胞染色肝癌

    吳文宇 楊 柱 龍奉璽 羅 莉 魏顯鰻 稅會(huì)利 唐東昕

    (貴州中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院腫瘤科,貴陽 550001)

    肝癌是我國常見的惡性腫瘤之一,肝癌的發(fā)病率和死亡率均比較高,對(duì)人類健康造成嚴(yán)重危害,有效防治肝癌的發(fā)生發(fā)展是臨床工作中面臨的艱巨而緊迫的問題。肝癌起病隱匿,預(yù)后差,肝癌的發(fā)生經(jīng)歷了慢性肝炎、肝硬化、肝癌前病變、肝癌等漫長(zhǎng)的病情發(fā)展過程,肝硬化是肝癌的獨(dú)立危險(xiǎn)因素。肝癌前病變的形態(tài)學(xué)特征為異型增生結(jié)節(jié),異型增生結(jié)節(jié)為肝硬化結(jié)節(jié)發(fā)展的結(jié)果,是肝癌啟動(dòng)、促進(jìn)、演變過程的中間環(huán)節(jié),阻斷肝硬化結(jié)節(jié)向肝異型增生結(jié)節(jié)發(fā)展是阻斷肝癌的理想時(shí)機(jī)[1]。葛花解酲方由豆蔻仁、葛花、砂仁、炒神曲、白術(shù)、干姜、澤瀉、茯苓、豬苓、橘皮、人參、木香、青皮組成,具有分消酒濕、溫中健脾、消補(bǔ)兼施的功效,在治療酒精性肝病中具有良好效果,研究發(fā)現(xiàn)葛花解酲方對(duì)肝癌的發(fā)生發(fā)展也有阻止作用[2,3],但其機(jī)制尚不完全清楚。GST-Pi在癌前階段已開始表達(dá),是肝癌的早期診斷指標(biāo)[4,5];PCNA為細(xì)胞核增殖相關(guān)抗原,可作為增殖期的標(biāo)志物[6];Wnt/β-catenin信號(hào)通路在惡性腫瘤的生長(zhǎng)、凋亡等過程中發(fā)揮中藥作用,參與惡性腫瘤的增殖過程[7,8]。本文通過對(duì)葛花解酲方對(duì)乙醇性HBV轉(zhuǎn)基因小鼠肝癌前病變GST-Pi和PCNA表達(dá)及Wnt/β-catenin信號(hào)通路的影響進(jìn)行研究,探討葛花解酲方逆轉(zhuǎn)肝癌前病變的可能機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 雄性、6~8周齡、體重20~24 g、HBV轉(zhuǎn)基因小鼠100只,購自中國人民解放軍第458醫(yī)院全軍肝病中心,許可證號(hào):SCXK(軍)2012-0018。

    1.1.2實(shí)驗(yàn)用藥 豆蔻仁15 g,葛花15 g,砂仁15 g,炒神曲6 g,白術(shù)6 g,干姜6 g,澤瀉6 g,茯苓4.5 g,豬苓4.5 g,橘皮4.5 g,人參4.5 g,木香1.5 g,青皮0.9 g,所有藥材購自北京同仁堂大藥房,按照藥方配方制成濃度為4 g/ml水煎劑備用。

    1.1.3主要試劑 紅星二鍋頭白酒(北京紅星股份有限公司),免疫組化染色試劑盒、二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色試劑盒、HE染色試劑盒(美國Sigma公司),兔抗鼠GST-Pi單克隆抗體、兔抗鼠PCNA單克隆抗體、兔抗鼠Wnt-1多克隆抗體、兔抗鼠β-catenin多克隆抗體等抗體(英國Abcam公司)等。

    1.2方法

    1.2.1動(dòng)物分組 將100只小鼠根據(jù)隨機(jī)數(shù)字法分為對(duì)照組、模型組、葛花解酲方組和葛花解酲方+LiCl組,每組25只。

    1.2.2建立肝癌癌前病變小鼠模型 將模型組、葛花解酲方組和葛花解酲方+LiCl組小鼠給予53%(v/v)紅星二鍋頭灌胃,10 ml/(kg·d),每天灌胃1次,對(duì)照組小鼠每天等量生理鹽水灌胃,共20周。

    1.2.3各組小鼠處理 葛花解酲方組和葛花解酲方+LiCl組小鼠在每天紅星二鍋頭灌胃前30 min給予葛花解酲方水煎劑(40 g/kg)灌胃,每天1次;對(duì)照組和模型組每天給予等量生理鹽水灌胃;葛花解酲方+LiCl組小鼠在葛花解酲方灌胃前30 min給予LiCl[1 mEq/(kg·d)]灌胃[9],每天1次,其他三組小鼠給予等量生理鹽水灌胃。共20周。

    1.2.4標(biāo)本采集及處理 20周結(jié)束時(shí),每組取10只小鼠脫臼處死,立即取小鼠肝臟用于測(cè)定肝臟重量、肝臟指數(shù)和Western blot檢查;每組另取10只小鼠,脫臼處死后取肝臟組織于多聚甲醛中固定24 h,用于HE染色和免疫組化染色。

    1.2.5肝臟重量和肝臟指數(shù)測(cè)定 將10只小鼠處死前稱重,處死后立即取肝臟組織稱重,計(jì)算各小鼠肝臟指數(shù),肝臟指數(shù)=肝臟重量/小鼠體重(mg/g)。

    1.2.6HE染色觀察肝臟病理學(xué)變化 石蠟包埋多聚甲醛固定的肝臟組織,切成5 μm切片,經(jīng)脫蠟至水,蘇木素染色5 min,乙醇分色5 s,氨水返藍(lán)20 s,伊紅染色3 min,乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封固。

    1.2.7免疫組化染色測(cè)定肝臟GST-Pi和PCNA表達(dá) 將石蠟切片置入烤箱中烤片1 h,經(jīng)脫蠟至水,放入枸櫞酸鈉緩沖液中修復(fù)10 min,加入過氧化氫封閉10 min消除內(nèi)源性過氧化物酶的活性,加入抗原封閉液封閉30 min,加入一抗:兔抗鼠GST-Pi單克隆抗體(1∶200)、兔抗鼠PCNA單克隆抗體(1∶200)過夜孵育,加入抗兔二抗孵育30 min,DAB顯色10 min,蘇木素復(fù)染,二甲苯透明、中性樹膠封片。陰性對(duì)照用PBS代替。細(xì)胞核或細(xì)胞漿中出現(xiàn)棕黃色顆粒為陽性,GST-Pi主要分布在肝細(xì)胞漿中,PCNA主要分布在肝細(xì)胞核中。每張切片拍攝5個(gè)高倍視野(400倍),采用Image-Pro-plus6.0圖像分析軟件測(cè)定GST-Pi和PCNA的積分光密度(IOD)。

    1.2.8Western blot測(cè)定肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平 將肝臟組織勻漿,提取肝組織總蛋白,采用BCA測(cè)定肝組織蛋白濃度和含量,每孔上樣量20 μg,進(jìn)行轉(zhuǎn)膜、脫脂奶粉封閉,加入一抗:兔抗鼠Wnt-1多克隆抗體(1∶1 000)、兔抗鼠β-catenin多克隆抗體(1∶1 000)過夜孵育,以β-actin為內(nèi)參照,加入二抗孵育1 h,顯色液顯色,采用Quantity One軟件分析條帶亮度,肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平以Wnt-1、β-catenin條帶灰度值/β-actenin條帶灰度值表示。

    2 結(jié)果

    2.1各組小鼠肝臟重量、肝臟指數(shù)比較 與對(duì)照組比較,模型組小鼠肝臟重量和肝臟指數(shù)升高(P<0.05);與模型組比較, 葛花解酲方組小鼠肝臟重量和肝臟指數(shù)降低(P<0.05);與葛花解酲方組比較,葛花解酲方+LiCl組小鼠肝臟重量和肝臟指數(shù)升高(P<0.05)。見表1。

    GroupsnLiverweight(g)Liverindex(mg/g)Controlgroup101.358±0.02345.21±1.34Modelgroup101.542±0.0191)60.47±1.421)GehuaJiechenggroup101.411±0.0211)2)49.53±1.461)2)GehuaJiecheng+LiClgroup101.478±0.0221)2)3)54.37±1.391)2)3)F141.067218.290P0.0000.000

    Note:Compared with the Control group,1)P<0.05;compared with the Model group,2)P<0.05;compared with the Gehua Jiecheng group,3)P<0.05.

    2.2各組小鼠肝臟HE染色情況 對(duì)照組小鼠肝臟結(jié)構(gòu)和形態(tài)正常,有完整的匯管區(qū)和肝小葉;模型組小鼠肝細(xì)胞變質(zhì)和結(jié)節(jié)性增生明顯,可見典型的假小葉,肝細(xì)胞變質(zhì)主要為小滴質(zhì)變、水腫、點(diǎn)狀壞死,增生肝細(xì)胞體積增大、核染色深,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、纖維增生和膽管異常增生明顯,膽管上皮增生并具有異型性;葛花解酲方組小鼠肝細(xì)胞變質(zhì)、結(jié)節(jié)性增生、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、膽管上皮增生及異型性較輕;葛花解酲方+LiCl組小鼠肝細(xì)胞變質(zhì)、結(jié)節(jié)性增生、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、膽管上皮增生及異型性介于模型組和葛花解酲方組之間。見圖1。

    2.3各組小鼠肝臟GST-Pi表達(dá)比較 與對(duì)照組比較,模型組小鼠肝臟GST-Pi IDO升高(P<0.05);與模型組比較,葛花解酲方組小鼠肝臟GST-Pi IDO降低(P<0.05);與葛花解酲方組比較,葛花解酲方+LiCl組小鼠肝臟GST-Pi IDO升高(P<0.05)。見表2和圖2。

    2.4各組小鼠肝臟PCNA表達(dá)比較 與對(duì)照組比較,模型組小鼠肝臟PCNA IDO升高(P<0.05);與模型組比較,葛花解酲方組小鼠肝臟PCNA IDO降低(P<0.05);與葛花解酲方組比較,葛花解酲方+LiCl組小鼠肝臟PCNA IDO升高(P<0.05)。見表3和圖3。

    圖1 各組小鼠肝臟HE染色(×100)Fig.1 HE staining of liver in each group of mice(×100)Note:A.Control group;B.Model group;C.Gehua Jiecheng;D.Gehua Jiecheng+LiCl group.

    GroupsnGST-PiIDOControlgroup102135.42±1053.26Modelgroup1094724.53±1215.461)GehuaJiechenggroup10 4728.57±1164.381)2)GehuaJiecheng+LiClgroup10 6908.46±1179.321)2)3)F15261.374P0.000

    Note:Compared with the Control group,1)P<0.05;compared with the Model group,2)P<0.05;compared with the Gehua Jiecheng group,3)P<0.05.

    圖2 各組小鼠肝臟GST-Pi免疫組化染色(×400)Fig.2 Immunohistochemical staining of liver GST-Pi in each group of mice(×400)Note:A.Control group;B.Model group;C.Gehua Jiecheng;D.Gehua Jiecheng+LiCl group.

    GroupsnPCNAIDOControlgroup10483.14±142.15Modelgroup1021424.15±1861.321)GehuaJiechenggroup10 3152.15±1253.161)2)GehuaJiecheng+LiClgroup10 7463.17±1574.381)2)3)F460.914P0.000

    Note:Compared with the Control group,1)P<0.05;compared with the Model group,2)P<0.05;compared with the Gehua Jiecheng group,3)P<0.05.

    圖3 各組小鼠肝臟PCNA IDO免疫組化染色(×400)Fig.3 Immunohistochemical staining of PCNA IDO in liver of each group of mice(×400)Note:A.Control group;B.Model group;C.Gehua Jiecheng;D.Gehua Jiecheng+LiCl group.

    GroupsnWnt-1β-cateninControlgroup100.08±0.020.07±0.03Modelgroup100.82±0.111)0.64±0.091)GehuaJiechenggroup100.17±0.051)2)0.15±0.041)2)GehuaJiecheng+LiClgroup100.29±0.061)2)3)0.31±0.051)2)3)F236.129194.275P0.0000.000

    Note:Compared with the Control group,1)P<0.05;compared with the Model group,2)P<0.05;compared with the Gehua Jiecheng group,3)P<0.05.

    圖4 各組小鼠肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白Western blot電泳圖Fig.4 Western blot analysis of Wnt-1 and β-catenin proteins in liver tissues of mice in each groupNote:1.Control group;2.Model group;3.Gehua Jiecheng group;4.Gehua Jiecheng+LiCl group.

    2.5各組小鼠肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平比較 與對(duì)照組比較,模型組小鼠肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平升高(P<0.05);與模型組比較,葛花解酲方組小鼠肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平降低(P<0.05);與葛花解酲方組比較,葛花解酲方+LiCl組小鼠肝臟組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平升高(P<0.05)。見表4和圖4。

    3 討論

    肝癌前病變的發(fā)生是一個(gè)復(fù)雜而緩慢的過程,癌前病變是癌癥啟動(dòng)、促進(jìn)和演變的中間階段,僅有少量細(xì)胞在特定條件下發(fā)生癌變,因此癌前病變過程是可逆的,是癌癥防治的重點(diǎn)。HBV感染可促進(jìn)肝癌的發(fā)生發(fā)展,我國大部分肝癌由HBV感染進(jìn)一步發(fā)展而來;我國酒精性肝損傷是繼肝炎后的第二大肝損傷原因。慢性肝病經(jīng)過癌前病變演變?yōu)楦伟┦嵌嗖襟E多階段的過程,其中細(xì)胞失控性生長(zhǎng)是惡性惡性腫瘤發(fā)生的生物學(xué)特征,細(xì)胞失控性生長(zhǎng)的主要分子機(jī)制為細(xì)胞增殖過度以及細(xì)胞凋亡減少[10]。GST-Pi是谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶家族成員之一,是細(xì)胞抗癌變的重要解毒系統(tǒng)[11],在多種惡性腫瘤中表達(dá),在癌前狀態(tài)中表達(dá)升高,是癌癥啟動(dòng)細(xì)胞最早和最準(zhǔn)確的標(biāo)志酶,其表達(dá)數(shù)量和癌細(xì)胞的增殖多少關(guān)系密切[12,13]。PCNA和DNA合成關(guān)系密切,是DNA聚合酶輔助蛋白,在DNA復(fù)制的調(diào)節(jié)中發(fā)揮重要作用[14];在細(xì)胞增殖后期G1期PCNA表達(dá)升高,在G1/S期交界時(shí)其表達(dá)達(dá)高峰,和細(xì)胞增殖關(guān)系密切[15];在增殖活性旺盛的腫瘤細(xì)胞中表達(dá)升高,和惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切[16,17]。本研究通過建立乙醇性HBV轉(zhuǎn)基因小鼠肝癌前病變模型,發(fā)現(xiàn)乙醇性HBV轉(zhuǎn)基因肝癌前病變小鼠中,肝臟重量、肝臟指數(shù)升高,肝細(xì)胞變質(zhì)和結(jié)節(jié)性增生明顯,可見典型的假小葉,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)明顯,膽管上皮增生并具有異型性,表明肝癌前病變小鼠模型建立成功;小鼠肝臟組織中GST-Pi和PCNA表達(dá)量升高,GST-Pi和PCNA表達(dá)量與癌前病變細(xì)胞增殖關(guān)系密切,表明肝癌前病變小鼠肝臟細(xì)胞存在異常增殖。

    中醫(yī)無肝癌前病變之說,根據(jù)肝癌前病變的病因病機(jī),考慮類似于“肋痛”、“黃疸”、“積聚”、“臌脹”等范疇。肝癌前病變由多種致病因素共同作用的結(jié)果,病因包括:①內(nèi)因:陰陽氣血虧虛、臟腑經(jīng)絡(luò)失調(diào);②外因:傷食、六淫等邪毒郁積,從而導(dǎo)致邪毒縮聚成塊,形成癌瘤。葛花解酲方來自李東垣的《脾胃論》,具有減少肝細(xì)胞破壞、穩(wěn)定肝細(xì)胞、調(diào)節(jié)細(xì)胞因子水平、減輕肝損傷;減輕肝細(xì)胞變性壞死等作用,是治療酒精性肝病的良方。近來研究發(fā)現(xiàn)葛花解酲方對(duì)肝癌具有保護(hù)作用,如王鏡輝等[18]研究發(fā)現(xiàn)葛花解酲方通過抑制端粒酶蛋白表達(dá)、抑制細(xì)胞增殖對(duì)小鼠肝癌原位移植瘤發(fā)揮防治作用;李軍等[19]發(fā)現(xiàn)葛花解酲方可通過調(diào)節(jié)外周血中免疫炎癥因子含量改善小鼠的免疫功能,從而抑制小鼠移植性肝癌的生長(zhǎng);郭斌等[20]發(fā)現(xiàn)葛花解酲方可通過調(diào)控細(xì)胞周期調(diào)控因子的表達(dá)逆轉(zhuǎn)肝癌癌前病變的發(fā)生,發(fā)揮肝臟保護(hù)作用。本文對(duì)肝癌前病變小鼠給予葛花解酲方處理,發(fā)現(xiàn)經(jīng)葛花解酲方處理小鼠肝臟重量、肝臟指數(shù)、GST-Pi IDO、PCNA IDO降低;肝細(xì)胞變質(zhì)、結(jié)節(jié)性增生、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、膽管上皮增生及異型性較輕。表明葛花解酲方可逆轉(zhuǎn)乙醇性HBV轉(zhuǎn)基因小鼠肝癌前病變,其機(jī)制可能與葛花解酲方可降低GST-Pi和PCNA表達(dá)、抑制肝組織細(xì)胞增殖有關(guān)。

    Wnt信號(hào)通路為一條多作用位點(diǎn)、多環(huán)節(jié)的開放通路,在細(xì)胞增殖、細(xì)胞分化和細(xì)胞凋亡中發(fā)揮重要作用,Wnt/β-catenin信號(hào)通路為典型的Wnt通路[21,22];β-catenin為多功能細(xì)胞漿蛋白,其在機(jī)體處于疾病狀態(tài)下,因體內(nèi)環(huán)境的改變,游離的β-catenin進(jìn)入細(xì)胞核,調(diào)節(jié)相關(guān)基因的表達(dá),參與細(xì)胞的增殖過程[23-25]。如RARα敲低通過抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路抑制其下游靶標(biāo)PCNA、Ki67、MMP7和MMP9的表達(dá)抑制食道癌的增殖和轉(zhuǎn)移[26];姜黃素通過抑制Wnt/β-catenin途徑抑制其下游細(xì)胞周期蛋白D1和PCNA的表達(dá)[27]。上述研究表明通過抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路可抑制惡性腫瘤細(xì)胞的增殖,且PCNA為Wnt/β-catenin信號(hào)通路的下游基因,通過抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路可抑制其下游PCNA等細(xì)胞增殖相關(guān)因子,從而發(fā)揮抑制細(xì)胞增殖的作用。本文研究發(fā)現(xiàn)肝癌前病變小鼠肝組織中Wnt-1、β-catenin蛋白水平升高,給予葛花解酲方處理后肝組織Wnt-1、β-catenin蛋白水平降低,在給予葛花解酲方處理的同時(shí)給予Wnt/β-catenin信號(hào)通路激動(dòng)劑干預(yù),則小鼠肝臟重量、肝臟指數(shù)、GST-Pi IDO、PCNA IDO、Wnt-1和β-catenin蛋白升高,可見Wnt/β-catenin信號(hào)通路激動(dòng)劑對(duì)葛花解酲方對(duì)肝癌前病變的逆轉(zhuǎn)有阻止作用,表明葛花解酲方可能通過Wnt/β-catenin信號(hào)通路抑制肝癌前病變的進(jìn)展。

    綜上所述,葛花解酲方可能通過抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路降低肝組織GST-Pi和PCNA表達(dá),從而抑制肝細(xì)胞增殖、逆轉(zhuǎn)肝癌前病變過程。

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