朱 凱,康懷彬,王德國
(1.河南科技大學食品與生物工程學院,河南 洛陽 471000;2.許昌學院食品與生物工程學院,河南 許昌 461000)
食品安全問題一直是制約肉制品行業(yè)乃至食品行業(yè)快速穩(wěn)定發(fā)展的一大難題。一般而言,肉類食品安全問題分為兩種,第1種是天然存在的,如大腸桿菌[1]、阪崎克羅諾桿菌[2]、副溶血性弧菌[3]等微生物污染,第2種是人為制造的,如獸藥殘留[4]、肉類摻雜摻假[5]等。其中肉類摻雜摻假給我國食品行業(yè)帶來了十分惡劣的影響,其主要表現(xiàn)癥狀為以次充好,因此發(fā)展實用的肉類摻假檢測方法是大勢所趨、而快速、低成本的檢測方法不僅受到商業(yè)化市場的青睞,在進出口肉制品檢測、市場抽查、中小型肉制品企業(yè)生產也有較大發(fā)展空間。
現(xiàn)有的肉類摻假檢測方法主要分為傳統(tǒng)方法和現(xiàn)代技術分析兩大類。傳統(tǒng)方法鑒別肉品質主要依賴于感官判斷和形態(tài)學檢驗[6],其局限性較大,多用于個人、家庭、肉制品商店等小規(guī)模鑒別?,F(xiàn)代技術分析多以特征性的脂肪、蛋白質、核酸作為靶標物進行肉類摻假檢驗[7],當前主要分析手段有紅外光譜分析、色譜分析、核磁共振法、質譜分析、免疫分析和核酸分析等[8]。環(huán)介導等溫擴增(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)法屬于核酸分析法,此技術是由Notomi等[9]發(fā)明,相比于傳統(tǒng)聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)技術,具有特異性更強、靈敏度更高等的優(yōu)點,目前廣泛運用于醫(yī)學、植物學、食品學、動物科學等領域,受到國內外專家學者及市場的認可。LAMP法檢測摻假肉的研究中,現(xiàn)已開發(fā)出多種肉類的不同改良的LAMP檢測方法,已有報道研究[10-12]對馬肉、牛肉、牛羊肉成分的摻假進行了LAMP檢測;楊麗霞等[13]建立了雞、鴨源性成分的LAMP可視化檢測方法;徐淑菲等[14]建立了牛源性成分熒光LAMP檢測方法;劉少寧等[15]建立了鑒別綿羊肉中狐貍源性成分的LAMP檢測方法。以上實驗均證明了LAMP檢測法在肉類檢測上的可靠性。
豬肉在我國肉制品中占據(jù)主要地位,我國是世界上最大的豬肉生產國和消費國。近年來豬肉價格持續(xù)走低[16],使得豬肉摻假的成本越來越低,不法商販往往將廉價的豬肉摻入到牛肉、羊肉、驢肉等價格較高的肉類中,以次充好。部分專家學者采用LAMP檢測法檢測豬肉成分的研究,如Lee等[17]針對線粒體D環(huán)基因和18S rRNA基因設計特異性豬引物,通過便攜式實時熒光檢測器檢測結果,建立了加工肉中豬肉成分檢測的實時熒光LAMP法,優(yōu)點是實驗時間短、可用于現(xiàn)場及時檢測;Roy等[18]將LAMP技術與磁珠技術相結合,LAMP擴增產生大量DNA與磁性物質結合形成聚集體,其表現(xiàn)為在紙上形成肉眼可見的黑點,以達到可視化的目的,成功建立檢測雞、豬肉成分摻假的可視化LAMP法,其優(yōu)點是可視化、對儀器需求低;Ran Guangyao等[19]以鈣黃綠素為染料,建立了檢測豬肉成分可視化LAMP檢測方法;楊麗霞等[20]針對豬肉線粒體DNA COXI基因設計LAMP引物,加入熒光染料SYBR Green I,建立了檢測牛羊肉中豬肉成分的實時熒光LAMP法;李向麗等[21]針對豬、鴨、羊的Cytb基因設計特異性引物,自主研發(fā)恒溫熒光檢測儀,以SYTO-9為染料,建立了豬、鴨、羊源成分的檢測恒溫實時熒光LAMP法。本實驗以間苯二酚鈉鹽為指示劑,目的是建立更簡單、更實用的可視化LAMP豬肉檢測方法。
豬肉、牛肉、羊肉均購于河南省許昌市農貿市場,驢肉、馬肉購于淘寶,雞肉、鴨肉及其他豬肉制品購于許昌美高美超市。
Buffer緩沖液、BstDNA聚合酶(10 000 U/mL)New England Biolab(北京)有限公司;dNTP(濃度10 mmol/L) 生工生物工程(上海)股份有限公司;二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO) 美國Amresco公司;DEPC水 上海翊圣生物科技有限公司;TE緩沖液(pH 8.0) 武漢百浩天生物科技有限公司;SYBR Green I 北京索萊寶科技有限公司;SYBR qPCR Mix 日本東洋紡公司。
指示劑配制(10 mmol/L):稱取0.002 371 g的4-(2-吡啶偶氮)-間苯二酚鈉鹽于離心管中,加入1 mL DMSO溶解,并混勻。
水浴鍋(實驗室定制) 河南康鴻生物科技有限公司;SCO-3201A數(shù)控定時超聲波清洗機 上海聲彥超聲波儀器有限公司;BCD-215KAJ冰箱 青島海爾股份有限公司;1-14K高速離心機 德國Sigma公司;Step one plus實時熒光定量PCR儀 美國ABI公司;FA2004B電子天平 上海佑科儀器儀表有限公司;NanoDrop One微量核酸蛋白測定儀 美國Thermo公司。
1.3.1 LAMP引物設計與配制
根據(jù)GenBank數(shù)據(jù)庫豬源基因,選取保守序列線粒體細胞b(GenBank: X56295.1)通過BLAST在線比對軟件進行分析,選取保守性和特異性都較好的片段,利用Primer Explorer Version 5在線設計軟件設計一套LAMP引物,如表1所示,交由安徽通用生物公司合成,所有引物均用TE緩沖液(pH 8.0)稀釋至100 μmol/L,按體積比FIP(BIP)∶LF(LB)∶F3(B3)為8∶4∶1混合均勻,作為最終引物混合液。
表1 豬引物序列Table 1 Primer sequences used for amplification of the porcine mitochondrial cytochrome b gene
1.3.2 DNA制備
1.3.2.1 線粒體提取
選擇使用試劑盒提取豬線粒體DNA,稍加改良。將不超過500 mg肌肉組織剪成小塊,加入1 mL磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffer saline,PBS)(pH 7.9)洗滌并用濾紙吸干,然后加入1 mL溶液I,冰浴研磨50 次;將研磨好的混合物移至離心管中4 ℃、1 000×g離心5 min,取上清液移至新離心管;將上清液4 ℃、12 000×g離心10 min,再棄上清液,留下白色沉淀;向白色沉淀中加入0.5 mL溶液I,劇烈搖晃使沉淀溶于液體,后4 ℃、1 000×g離心5 min;取上清液至新離心管,4 ℃、12 000×g離心10 min,再棄上清液,留下白色沉淀就是線粒體。
1.3.2.2 線粒體純化
向含有線粒體的離心管中加入190 μL buffer LC,10 μL蛋白酶K,充分混勻;加入200 μL buffer CQ到裂解液中,混勻;加入200 μL無水乙醇,充分混勻;取全部混合液加入到DNA純化柱,室溫放置2 min,10 000 r/min離心1 min,棄收集的廢液;向純化柱加入300 μL buffer WB,10 000 r/min離心1 min,再次棄廢液;加400 μL buffer WB到DNA純化柱,14 000 r/min離心2.5 min,棄廢液;將DNA純化柱放入新管,懸空滴加80 μL buffer EB到柱膜上,室溫溫育5 min,10 000 r/min離心1 min;重復上一步驟,buffer EB添加量從80 μL變?yōu)?0 μL,收集的液體即為線粒體DNA提取液,即可直接用于實驗。
1.3.2.3 簡化DNA提取步驟
將不超過500 mg肌肉組織剪成小塊,加入1 mL PBS(pH 7.9)洗滌并用濾紙吸干;加入1 mL TE緩沖液(pH 8.0),冰浴研磨50 次;將研磨好的混合物移至離心管中4 ℃、1 000×g離心5 min,取上清液移至新離心管;將上清液4 ℃、12 000×g離心10 min,再棄上清液,留下白色沉淀;向白色沉淀中加入0.5 mL TE緩沖液(pH 8.0),劇烈搖晃使沉淀溶于液體,后4 ℃、1 000×g離心5 min;取上清液至新離心管,4 ℃、12 000×g離心10 min,再棄上清液;加入50~100 μL TE緩沖液(pH 8.0),劇烈振蕩使沉淀溶于液體;超聲波振蕩6 min,充分破碎線粒體使線粒體DNA釋放出來,此提取液即可直接用于LAMP實驗。
1.3.3 模擬樣品的制備
向其他肉類按比例添加豬肉,制造摻假模擬樣品,因受到電子天平精度(0.000 1 g)限制,最低可制造摻假比0.1%的摻假樣品;用核酸蛋白測定儀對1.3.2.3節(jié)純化后的純豬肉線粒體DNA模板溶液進行測定,確定濃度并按照一定比例進行稀釋,稀釋液為TE(pH 8)緩沖液,制成模板濃度為100、10、1 pg模板溶液。將上述提取的摻假樣品和模板溶液于-20 ℃保存。
1.3.4 LAMP豬肉成分檢測體系優(yōu)化
將增強劑、混合引物、buffer、dNTP、Mg2+、Mn2+、指示劑、BstDNA聚合酶、DEPC水、模板DNA于冰浴條件下依次加入到1.5 mL EP管中,混合均勻,放入水浴鍋反應1 h。待反應結束后于白色背景下觀察顏色變化,若結果為橘紅色則說明DNA未擴增,為陰性結果;若結果為明黃色則說明DNA已擴增,為陽性結果。
1.3.4.1 LAMP溫度優(yōu)化
根據(jù)預實驗結果,調整實驗溫度,若預實驗的陰性對照和陽性對照均發(fā)生變色反應則提高反應溫度,若陰性、陽性對照均未發(fā)生變色反應則降低溫度,若陰性對照不變色,陽性對照變色則說明此溫度較為合適,上下調整溫度選擇無假陽性,反應較快的溫度為最適反應溫度。
1.3.4.2 LAMP體系優(yōu)化
根據(jù)預實驗結果,參考1.3.4.1節(jié)的方法,對LAMP體系進行優(yōu)化,間苯二酚鈉鹽和Mn2+結合作為指示劑,其配方較為固定,只需要對Mg2+濃度進行優(yōu)化,觀察不同Mg2+濃度下空白實驗、陽性對照結果,選擇無假陽性、反應較快的一組Mg2+為最適Mg2+濃度。
1.3.5 LAMP特異性實驗
為驗證該引物的特異性是否能區(qū)分不同肉類,按1.3.2節(jié)方法提取牛、羊、雞、鴨、馬、驢等其他肉類線粒體DNA,以優(yōu)化好的體系配制反應液,加入不同肉的模板DNA,兩兩對照,在最適溫度下反應1 h,觀察顏色變化。最后用該引物進行熒光定量LAMP實驗,通過分析擴增曲線和熔解曲線進一步確定特異性。
1.3.6 LAMP靈敏度實驗
為驗證該方法的最低檢測限,用不同比例的摻假樣品和不同濃度的模板溶液進行靈敏度實驗,以優(yōu)化好的體系配制反應液,按豬肉線粒體DNA含量從高到低依次排序,在最適溫度下反應1 h,觀察顏色變化,以能穩(wěn)定變色的該組檢測限為最低檢測限。由于樣品新鮮度、研磨是否充分、人為因素誤差等會對DNA提取效果產生一定的影響,因此,多次提取DNA并重復靈敏度實驗,確保該實驗結果準確可靠。
1.3.7 LAMP適應性、穩(wěn)定性實驗
從最常見的豬肉制品中提取線粒體DNA,于優(yōu)化體系下反應60 min,觀測反應結果,判斷該實驗方法的適應性。重提DNA、重配試劑,并在不同時間、多次重復該實驗,觀察是否有假陽性出現(xiàn),測定該體系的穩(wěn)定性。
1.3.8 其他方法比較驗證
1.3.8.1 實時熒光定量LAMP
為驗證可視化LAMP的可靠性,同時進行實時熒光定量LAMP實驗,引物同可視化LAMP引物,體系稍作改變,將Mn2+、間苯二酚鈉鹽改為SYBR Green I,每20 μL反應體系中加入0.2 μL(50×),用DEPC水補足體系,反應溫度同可視化LAMP最佳反應溫度,設置120 個循環(huán),每個循環(huán)30 s,即總反應時間為1 h,觀察擴增曲線。
1.3.8.2 實時熒光定量PCR[22]
為進一步驗證可視化LAMP的可靠性,同時還進行實時熒光定量PCR實驗,以LAMP反應的兩條外引物(F3、B3)為熒光PCR的引物,按照THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix說明書配制反應體系,觀察擴增曲線和熔解曲線。
qPCR條件:95 ℃預變性1 min,95 ℃變性15 s,60 ℃退火25 s,72 ℃延伸1 min,40 個循環(huán);熔解曲線從60 ℃開始,速率為1.5%。
圖1 不同提取方式提取豬線粒體DNA的LAMP實驗Fig. 1 Comparison of pig mitochondrial DNAs extracted by different extraction methods
如圖1所示,不同提取方法提取DNA的LAMP實驗結果均為明黃色,簡化后的豬線粒體DNA提取方法實際LAMP效果與試劑盒法相似,提取時間僅為原來的一半,且試劑更為安全,此后實驗均用簡化后的DNA提取法。
圖2 預實驗結果Fig. 2 Pretest results
如圖2所示,反應60 min后空白對照未變色呈橘紅色,陽性對照完全變色,呈明黃色。
如圖3所示,在56 ℃時,作為空白對照的1變?yōu)槊鼽S色,出現(xiàn)假陽性,不是最適溫度。57 、58 ℃在60 min均為空白對照全不變色、陽性對照全部變色,結果均符合實驗要求,因此選擇反應時間較短的57 ℃為最適反應溫度。
圖3 溫度優(yōu)化實驗Fig. 3 Temperature optimization
圖4 Mg2+優(yōu)化實驗Fig. 4 Optimization of Mg2+ concentration
如圖4所示,LAMP反應60 min后,僅Mg2+濃度3 mmol/L的未變色,出現(xiàn)假陰性結果,而Mg2+濃度3、3.5、4、4.5、5 mmol/L均為空白對照不變色、陽性樣品全部變色。Mg2+是較為重要的試劑之一,反應過程中起到降低反應所需要的活化能的作用,較高時容易出現(xiàn)假陽性,較少時混合溶液顏色偏淡難以區(qū)分,Mg2+濃度4 mmol/L變色時間較3.5 mmol/L組少10 min且顏色對比更明顯。因此選擇Mg2+較少、對比明顯、反應時間較短,即Mg2+濃度4 mmol/L為最適Mg2+濃度。
綜上,LAMP豬肉成分檢測最優(yōu)體系如表2所示。
表2 LAMP反應最優(yōu)體系Table 2 Optimal system of LAMP reaction
圖5 LAMP特異性實驗Fig. 5 Specificity evaluation of LAMP
圖6 實時熒光定量LAMP特異性實驗Fig. 6 Results of real-time fluorescent quantitative LAMP detection
如圖5、6所示,LAMP反應60 min后,只有加入豬DNA的1和2變色,而空白對照15、16以及陰性對照3~14均不變色,且熒光定量LAMP實驗表明,僅加入豬DNA的1有明顯的擴增曲線,其他組均未出現(xiàn),說明該引物特異性良好,實驗能有效區(qū)分豬DNA與其他DNA,不受其他動物線粒體DNA的干擾。
圖7 模擬樣品豬LAMP靈敏度實驗Fig. 7 Sensitivity of LAMP to model porcine samples
模擬樣品的靈敏度實驗結果見圖7,在57 ℃反應60 min后,1~4均為明黃色,呈陽性結果,而5~6為橘紅色為陰性結果;不同模板DNA濃度的靈敏度實驗結果見圖8,57 ℃水浴加熱60 min后,2、3、4均變色且變色明顯,1、6、7、8完全不變,5微變,說明該方法可以有效檢測DNA質量濃度10 pg/μL以上摻假樣品,檢測1 pg/μL則不穩(wěn)定,難以檢測DNA質量濃度在1 pg/μL以下的樣品。因此,此方法能檢測豬肉含量1%及其以上的樣品,靈敏度為10 pg/μL。
圖9 豬肉制品LAMP實驗Fig. 9 Detection of pork products by LAMP
豬肉制品LAMP實驗結果見圖9,含豬肉制品的各類反應均顯示陽性結果,證實該方法能有效檢測常見狀態(tài)的豬肉成分。經(jīng)過長時間、多次實驗,在60 min的實驗時間內,該體系能且只能對豬線粒體DNA進行擴增,對其他常見各種肉類均無擴增,且實驗過程中未出現(xiàn)假陽性,表明該LAMP法穩(wěn)定性良好。
由圖10可知,當實驗進行到45 個循環(huán)(即22.5 min)時,陽性組開始擴增,到75 個循環(huán)(即37.5 min)達到擴增峰值,隨后進入平臺期,陰性實驗組在120 個循環(huán)內均未出現(xiàn)明顯的擴增,反應曲線平緩,未出現(xiàn)峰值。
圖10 實時熒光定量LAMP擴增曲線Fig. 10 Real time fluorescence quantitative LAMP amplification curves
圖11 實時熒光定量PCR擴增曲線(A)和熔解曲線(B)Fig. 11 Real-time fluorescence quantitative PCR amplification curve (A) and melting curve (B)
如圖11所示,陽性實驗組在40 個循環(huán)內完成擴增,熔解曲線Tm為79.25 ℃,與陰性實驗組對比明顯,陰性實驗組未擴增,且無Tm值,進一步證明了引物特異性良好。
提取DNA的方法有很多,如磁珠法、離心柱法、苯酚氯仿抽提法、CTAB法、差速離心法等,不同提取方法優(yōu)缺點較為明顯,在實際使用時實驗人員往往根據(jù)實驗室條件進行改良[23-25],如劉昊等[26]在檢測開心果過敏原成分中提DNA用改良后的CTAB法提DNA,本實驗前期所用為商品化的試劑盒法,其原理是先通過差速離心提取目的基因,后用離心柱法進行純化,其優(yōu)點是安全、所提DNA純度較高,常用于PCR實驗,缺點是較為繁瑣、耗時較長、成本較高,LAMP技術較PCR技術等常規(guī)其他核酸擴增技術特異性更強,大量文獻表明LAMP實驗只需要幾十個拷貝甚至幾拷貝模板即可擴增[27-29],在實際實驗過程中LAMP無需高純度的模板DNA,本實驗將提取過程簡化改良,原理是用差速離心法提取線粒體,而后通過超聲振蕩破碎線粒體直接釋放目的基因,此方法提取出來的DNA可在4 ℃穩(wěn)定保存1 d,-20 ℃穩(wěn)定保存7 d,如需長時間保存,依然需要用步驟1.3.2.1節(jié)和1.3.2.2節(jié)方法(即試劑盒法)提取DNA并于-20 ℃保存。
本實驗1.3.2.3節(jié)所提線粒體DNA未經(jīng)過純化,因此用于檢測模擬摻假樣品的檢測限僅有1%,相較Shi Ya等[30]建立的LAMP鴨源摻假檢測方法低一個數(shù)量級,但考慮到實際應用方面,低于1%的摻假率難以產生經(jīng)濟價值,因此1%已滿足現(xiàn)場快速定性檢測,若需要更低的檢測限,可用步驟1.3.2.1節(jié)和1.3.2.2節(jié)提取純化樣品DNA,本方法用純化提取的DNA靈敏度為10 pg/μL,優(yōu)于Taqman探針實時熒光PCR檢測方法[31](0.5 ng/μL)、實時熒光PCR法[32](0.5 ng/μL)。
快速、冰浴、充分研磨是保證提取線粒體DNA成功的關鍵要素,其中最為關鍵的是充分研磨,在摻假率較低時(1%),未能充分研磨很可能導致豬肌肉組織中的線粒體無法充分釋放,從而導致提取量少,產生假陰性。
自Notomi等[9]發(fā)明LAMP檢測技術到如今已有近20年的發(fā)展,最初通常以檢測焦磷酸鎂沉淀或凝膠電泳檢測擴增基因判斷結果,然而焦磷酸鎂沉淀難以肉眼觀測因此隨后發(fā)明了實時濁度儀用于檢測擴增,實時濁度儀用途狹窄、價格昂貴不利于推廣;而凝膠電泳耗時長且必須開蓋容易污染產生假陽性,因此部分學者開發(fā)出加入染料通過變色反應來檢測基因是否擴增,此方法具有低成本、耗時短、不易受到污染等優(yōu)點,目前常用的染料有 SYBR Green I[33]、鈣黃綠素[34]、疊氮溴化丙錠[35]以及羥基萘酚藍等,然而以上染料也有明顯的缺點限制,例如SYBR Green I是熒光染料,需要在特殊環(huán)境下進行觀察結果,而且這些都有較大的毒性,處理不慎容易對人體造成損害或是污染環(huán)境,4-(2-吡啶偶氮)間苯二酚鈉鹽是一種金屬離子顯色劑,本實驗以間苯二酚鈉鹽為染料,與Mn2+螯合作為LAMP實驗的指示劑,可與LAMP反應產物焦磷酸根反應,從原來的橘紅色變?yōu)槊鼽S色,此染料具有顏色變化明顯,易于保存,毒性相較更低且價格低廉等優(yōu)點,在實際使用中較其他染料有明顯優(yōu)勢。
目前從事LAMP研究的專家學者除了研究對象的創(chuàng)新外,其主要創(chuàng)新點為檢測結果方法的改良,LAMP擴增的直接表現(xiàn)為焦磷酸根和目的基因的大量擴增,二者都無法通過肉眼直接觀測,如今一類方法通過觀察焦磷酸根的變化量判斷LAMP反應是否發(fā)生,如實時濁度儀等;另一類通過觀察目的基因是否擴增,如凝膠電泳、加入熒光染料等,目前這兩類改良研究頗多、較為成熟,然而目前針對LAMP技術的前處理方面研究較少,LAMP技術在食品檢測方面的實際應用一大難點是前處理復雜,目的微生物的培養(yǎng)和模板基因的提取存在提取時間長、純化步驟復雜、試劑毒性大等缺點,此類問題的出現(xiàn)并非LAMP技術本身的問題,而是因為現(xiàn)有的基因提取純化技術起初是針對PCR技術設計的,PCR對提取液純度要求較高,眾所周知,LAMP技術相較于PCR技術最大的優(yōu)點是靈敏度更高、特異性更強,本實驗證明了LAMP不需要過于復雜的DNA提取純化方法,純度不高的提取液依然可以用于LAMP實驗。簡化后的提取方法有效縮短整體實驗時間,提高了效率。可應用于本實驗建立起的豬肉成分LAMP檢測法,至于是否通用于其他LAMP檢測實驗還待進一步研究。
本實驗建立了檢測常見肉制品中豬肉成分的可視化LAMP檢測方法,并針對該方法進行了模板基因提取方法的簡化,極大地簡化了實驗過程,降低了實驗時間和條件,靈敏度為10 pg/μL,避免了常規(guī)LAMP法易出現(xiàn)假陽性的問題。進一步降低了成本,縮短了實驗時間,簡化實驗條件。豬肉成分摻假檢測中,從提取DNA到觀測結果時間最短為2 h,并且重復性和穩(wěn)定性效果良好,相較于其他豬肉檢測方法具有成本更低、操作更簡單、特異性強、靈敏度高等優(yōu)點,相較于其他LAMP檢測法具有可視化、不易污染、基因提取方便的特點,適用于多種常見肉制品豬肉摻假快速檢測。