水相體系中磷脂酶A1酶解南極磷蝦磷脂制備溶血磷脂的分析

胡 劼，俞博凱，呂 飛，丁玉庭,3，劉書來,3,*

（1.浙江工業(yè)大學海洋學院，浙江 杭州 310014；2.國家遠洋水產品加工技術研發(fā)分中心（杭州），浙江 杭州 310014；3.浙江工業(yè)大學海洋研究院，浙江 杭州 310032）

南極磷蝦巨大的生物量已受到人們廣泛關注，目前對于南極磷蝦的商業(yè)開發(fā)局限于動物飼料等的加工，經濟效益低下[1]。研究發(fā)現(xiàn)，南極磷蝦磷脂的主要成分是磷脂酰膽堿（phosphatidyl cholines，PC），還有少量磷脂酰乙醇胺（phosphatidyl ethanolamine，PE）和磷脂酰肌醇（phosphatidylinositol，PI）等[2]。磷蝦油中約60%～70%的ω-3長鏈多不飽和脂肪酸，主要是二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA）和二十二碳六烯酸（docosahexaenoic acid，DHA），并且與磷脂結合存在（位于Sn-2位居多）[3]，是目前自然界中發(fā)現(xiàn)的唯一一種以磷脂形態(tài)結合的多不飽和脂肪酸，而魚油中的DHA、EPA主要以甘油酯形式存在，因而比魚油具有更為重要的生理功能[4]。海洋源ω-3多不飽和脂肪酸（polyunsaturated fatty acid，PUFA），已被證明在預防心血管疾病中發(fā)揮有益作用[5-6]。除此之外，ω-3 PUFA還被證實可降低收縮壓、緩解血小板聚集、消炎以及預防心律失常[5]。ω-3 PUFA通常以甘油三酯（triglyceride，TG）的形式通過魚油或者補充劑攝入，而磷蝦油中ω-3 PUFA以磷脂的形式存在，能被更有效地吸收并摻入細胞膜中[7]，還可減少血漿脂質[8]、提高EPA和DHA的生物利用度及抗炎和抗氧化活性[9-10]。

溶血磷脂的乳化穩(wěn)定性、抗氧化性、潤濕性及親水親油平衡值（hydrophile-lipophile balance number，HLB）都優(yōu)于磷脂，其乳化體系有抗酸、抗鹽以及抗高溫等優(yōu)點[11]。同時，溶血磷脂的分子滲透能力、殺菌能力、溶血能力與藥物親和能力也引起生理藥理學家的極大興趣。目前磷脂酶解的原料主要為大豆和蛋黃等[12-13]，國內外關于南極磷蝦磷脂酶解改性制備溶血磷脂的報道較少，因此將其作為原料制備富含EPA和DHA的溶血磷脂，具有更重要的生理功能[14]。國內外溶血磷脂制備工藝通常采用非水相體系[15-16]或含緩沖液的水相體系[17]。非水相體系的酶改性工藝中有機溶劑的使用造成產品中溶劑殘留，另外溶劑的易揮發(fā)性還導致溶劑消耗大，不符合綠色加工發(fā)展趨勢；而含緩沖液的水相體系會影響產品的質量及后續(xù)處理難度。磷脂酶A1（phospholipase A1，PLA1）可用于水解磷脂酰膽堿制備溶血磷脂酰膽堿，且特異性地水解磷脂酰膽堿的Sn-1位，以制備Sn-2位富含EPA和DHA的溶血磷脂酰膽堿，但Sn-2-溶血磷脂酰膽堿（Sn-2-lysophosphatidylcholine，Sn-2-LPC）也會發(fā)生部分?；灰粕蒘n-1-溶血磷脂酰膽堿（Sn-1-lysophosphatidylcholine，Sn-1-LPC）[18-19]。在水相體系中PLA1催化南極磷蝦磷脂制備富含EPA和DHA的溶血磷脂，國內鮮見文獻報道。本研究以酸價衡量磷脂水解程度，通過高效液相色譜-紫外檢測（high performance liquid chromatographyultraviolet，HPLC-UV）儀和高效液相色譜-示差檢測（high performance liquid chromatography-refractive index detector，HPLC-RID）儀對酶解前后磷脂組分（PC、Sn-1-LPC、Sn-2-LPC）進行分析，通過高效液相色譜-蒸發(fā)光散射（high performance liquid chromatographyevaporative light scattering detector，HPLC-ELSD）儀檢測甘油磷脂酰膽堿（glycerol phosphatidylcholine，GPC）含量以進一步證實酰基位移現(xiàn)象，并利用氣相色譜-質譜（gas chromatography-mass spectrometer，GCMS）法分析磷脂酶解前后脂肪酸組成（尤其是EPA和DHA含量的變化），以期為南極磷蝦磷脂的酶解改性技術提供基礎數據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

南極磷蝦磷脂：以磷蝦油（由遼漁集團提供，采用乙醇提?。樵?，經過多次丙酮沉降，磷脂含量90%左右，酸價10.7 mg/g；磷脂酶A1（Lectise Ultra，酶活力2 000 U/g） 丹麥諾維信公司；無水乙醇、乙醚、丙酮（均為分析純） 上海凌峰化學試劑有限公司；氫氧化鉀、鄰苯二甲酸氫鉀（分析純） 國藥集團化學試劑有限公司；正己烷、草酸（H2C2O4·2H2O）、異丙醇、95%乙醇、乙酸（均為色譜純） 美國阿拉丁公司。

1.2 儀器與設備

DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器 杭州博研儀器設備有限公司；RE-2000A旋轉蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠；SHZ-D（III）循環(huán)水式真空泵 鞏義市予華儀器有限責任公司；FA1004型電子天平 常州市幸運電子設備有限公司；KQ-300DE型數控超聲波清洗器昆山市超聲儀器有限公司；DHG-9075電熱鼓風干燥箱上海一恒科學儀器有限公司；TRACE 1300 GC-MS譜儀賽默飛世爾科技公司；1525液相色譜儀 美國Waters公司。

1.3 方法

1.3.1 PLA1酶解南極磷蝦磷脂制備溶血磷脂

準確稱取0.6 g南極磷蝦磷脂于100 mL錐形瓶中，加30 mL去離子水均質分散，確保反應體系為水相，再加一定比例PLA1溶液，預混勻后，在一定溫度、時間及攪拌速度下進行反應，反應完成后沸水滅酶3 min，留樣待測定。

1.3.2 雙相薄層色譜定性分析磷脂組成成分

參考AOCS Ja 7-86[20]的方法測定，稍作修改。點樣：取樣品50 mg溶解后定容于10 mL容量瓶中，使用10 μL微量進樣器進行點樣，樣點距兩邊約1 cm，樣斑直徑不超過3 mm。層析步驟：將點過樣的薄板揮干溶劑后放入盛有展開劑A（氯仿-甲醇-氨水，65∶30∶4，V/V）的層析槽中進行展開。展至距板上沿1 cm左右時取出，在室溫下干燥30 min，揮干溶劑后再放入展開劑B（氯仿-甲醇-冰醋酸-水，170∶25∶25∶6，V/V）中展開，至頂邊1 cm左右時取出，再次晾干。顯色：將揮干溶劑的層析板放入碘缸中顯色。薄層層析板定性分析：將磷脂實驗產品按照上述步驟展開，顯色。參照PC、PE、LPC標樣圖譜和資料中的圖譜，對各磷脂組分進行定性。

1.3.3 磷脂酸價的測定

參考AOCS Ja 6-55[21]的方法測定，稍作修改。取干凈250 mL錐形瓶，用天平稱取0.5～3.0 g磷脂樣品，加入乙醚-異丙醇混合液50～100 mL和3～4 滴百里香酚酞指示劑（2%），充分振蕩溶解試樣。再用標準氫氧化鉀（0.1 mol/L）溶液進行手工滴定，當試樣溶液變?yōu)樗{色時，且15 s內無明顯褪色時，為滴定終點。記錄下此時消耗的氫氧化鉀的體積V。同時做一組空白實驗作對照，記錄體積V0，按公式（1）計算酸價：

式中：XAV為酸價/（mg/g）；V為試樣測定所消耗的標準滴定溶液的體積/mL；V0為相應的空白實驗所消耗的標準滴定溶液的體積/mL；c為標準滴定溶液的濃度/（mol/L）；56.1為氫氧化鉀的摩爾質量/（g/mol）；m為油脂樣品的稱樣量/g。

1.3.4 磷脂水解度的計算

磷脂水解度按公式（2）、（3）計算：

式中：X為磷脂Sn-1位脂肪酸水解度/%；A為水解產物酸價/（mg/g）；B為原料酸價/（mg/g）；C為磷脂Sn-1位完全水解產生的理論酸價/（mg/g）； 為磷脂平均相對分子質量。

1.3.5 磷脂各組成成分的HPLC-UV分析[22]

色譜柱：Sunfire Prep Silica（250 mm×4.6 mm，5 μm）；柱溫30 ℃；流速1 mL/min；檢測波長206 nm；流動相為正己烷-異丙醇-0.05%乙酸（6∶8∶1.38，V/V），過0.22 μm有機膜，超聲脫氣處理30 min；進樣量10 μL。樣品的定性分析采用標樣保留時間比對，定量分析采用標樣外標法。

1.3.6 磷脂酶解后GPC含量的HPLC-ELSD分析[18]

色譜柱：Sunfire Prep Silica（250 mm×4.6 mm，5 μm）；柱溫30 ℃；漂移管溫度80 ℃；流速1 mL/min；梯度洗脫：流動相A為甲醇-水（8∶1，V/V），流動相B為甲醇。流動相A的梯度洗脫，開始10 min，以40%梯度增加到60%并保持5 min，最后3 min由60%降低到40%；進樣量10 μL，樣品的定性分析采用標樣保留時間比對，定量分析采用標樣外標法。

1.3.7 Sn-1-LPC和Sn-2-LPC含量的HPLC-RID分析

參考GB/T 22506—2008《酶改性磷脂中1-和2-溶血磷脂酰膽堿的測定》[23]中方法。色譜柱：Waters spherisorb NH2（250 mm×4.6 mm，5 μm）；柱溫25 ℃；進樣量10 μL。等度洗脫，流動相為95%乙醇-草酸溶液（92:8，V/V），過0.22 μm有機膜，超聲脫氣處理30 min，流速1 mL/min。示差檢測器檢測峰面積，以峰面積為縱坐標（Y），標樣質量濃度為橫坐標（X，mg/mL）進行標準曲線的繪制。

樣品處理：稱取50～100 mg酶改性磷脂樣品，用95%乙醇溶解稀釋至25 mL，用高速離心機離心（8 000 r/min，10 min），取上清液用0.45 μm纖維膜過濾，現(xiàn)配現(xiàn)用。

1.3.8 磷脂脂肪酸組成測定[24-27]

采用薄層制備板分離磷脂和游離脂肪酸。帶狀點樣后，以正己烷-乙醚-冰乙酸（80∶19∶1，V/V）為展開劑進行展層，顯色，刮板收集磷脂層和游離脂肪酸層，用無水乙醇萃取硅膠中的磷脂和游離脂肪酸，氮吹揮干溶劑，得到樣品。

樣品甲酯化：在樣品中加入1 mL 0.5 mol/L NaOH-甲醇溶液，搖勻后于80 ℃水浴振蕩5 min，冷卻至室溫后，再加入1 mL 14% BF3-甲醇溶液和0.3 mL 0.1%對苯二酚溶液，在80 ℃水浴中振蕩2 min，冷卻至室溫后加0.2 mL鹽溶液，振蕩10 s后加入1 mL正己烷，振蕩搖勻后靜置。待分層后取含脂肪酸甲酯的上層溶液，加入一定量無水硫酸鈉脫除水分，使用0.22 μm孔徑有機相濾膜過濾后進行GC-MS分析。

GC條件：HP-INNOWax毛細管柱（60 m×0.32 mm，0.25 μm）；載氣為高純氦氣；采用恒流模式；流速為2 mL/min，不分流；進樣量1 μL；進樣口溫度240 ℃；檢測器溫度250 ℃；柱溫以初始溫度90 ℃保持5 min，先以15 ℃/min升至200 ℃，再以1 ℃/min升至240 ℃并保持10 min，整個分析過程為62.3 min。MS條件：GC-MS接口溫度250 ℃；電子電離源；電離能量70 eV；離子源溫度250 ℃；掃描周期，0.2 次/s；質量掃描范圍m/z 35～450 u。

1.3.9 酶解前后磷脂乳化穩(wěn)定性測定[28-29]

配制一定量1%酶解后磷脂水溶液，然后按一定油水比加入大豆油，經高速剪切機（10 000 r/min）分散2 min，得乳狀液。將乳化液轉移到100 mL具塞量筒中，間隔一定時間觀察分層情況，并與磷脂原料作比較。以乳化層比例大小衡量乳化能力和乳化穩(wěn)定性，乳化層比例越大，乳化能力和乳化穩(wěn)定性越好，按公式（4）計算：

1.4 數據分析與處理

數據結果采用Origin 8.6進行處理。所有實驗平行測定3 次以上，結果以±s表示。

2 結果與分析

2.1 南極磷蝦磷脂的組成分析

用雙相薄層色譜法對原料磷脂中的主要組分進行定性分析，結果如圖1所示。采用乙醇提取的磷蝦磷脂中主要含有PC、PE、LPC等物質，且從顯色面積來看，PC為主要成分。

圖1 原料磷脂雙相薄層展開圖Fig. 1 Two-dimensional TLC profile of phospholipids

用HPLC-UV對南極磷蝦磷脂主要組分進行定量分析，由表1可知，實驗室自提的南極磷蝦磷脂中PC為主要成分，其含量為（90.90±1.55）%，PE和溶血磷脂酰膽堿（lysophosphatidylcholine，LPC）含量分別為（3.20±1.03）%和（2.60±0.96）%。孫德偉等[30]用亞臨界丁烷提取南極磷蝦脂質，其磷脂含量較高，但磷脂酰膽堿僅占71.20%，其PE和PI含量相對較高。這是由于脂質提取所用溶劑不同，PE在乙醇中溶解度小，而磷蝦中PI含量本就偏低，因此本研究以PC為實驗主要原料進行分析。

表1 南極磷蝦磷脂各組分的含量Table 1 Composition of Antarctic krill phospholipids%

2.2 反應時間對磷脂酶解的影響

圖2 反應時間對磷脂酶解的影響Fig. 2 Effect of reaction time on phospholipid hydrolysis

考察反應溫度30 ℃和加酶量20 U/g條件下不同反應時間對磷脂酶解過程的影響，如圖2所示，隨著反應時間的延長，酶和底物接觸次數增多，磷脂逐步被水解產生溶血磷脂和游離脂肪酸，其酸價隨之不斷升高，30 min后反應趨于平衡狀態(tài)，酸價增加不明顯。PC經PLA1酶解后主要生成Sn-2-LPC，且隨時間的延長，PC含量不斷減少而Sn-2-LPC含量不斷增加，30 min后兩者含量趨于平衡，同時Sn-1-LPC含量隨反應時間延長呈先升高后逐漸降低的趨勢，這是由于酶解過程中部分Sn-2-LPC發(fā)生酰基位移生成Sn-1-LPC，而Sn-1-LPC又進一步被PLA1酶解生成GPC[18-19]。

2.3 加酶量對磷脂酶解的影響

一般情況下，酶添加量較低時酶活力隨其添加量的增加而增多，底物與酶活性中心接觸的機率也隨之增加，酶反應速率加快，但隨酶添加量增至一定值時，酶反應速率變化不大，甚至還會出現(xiàn)抑制反應的現(xiàn)象[31]。由圖3可知，由于初始時加酶量較少，酶不能充分催化底物，當加酶量增加時，酶與底物的接觸面積增大，酸價增加較快，而當加酶量達到20 U/g時達到飽和狀態(tài)，反應處于平衡，繼續(xù)增大加酶量，水解程度無明顯提高。

圖3 加酶量對磷脂酶解的影響Fig. 3 Effect of enzyme dosage on phospholipid hydrolysis

2.4 反應溫度對?；灰频挠绊?/h3>

圖4 反應溫度對?；灰频挠绊慒ig. 4 Effect of reaction temperature on acyl migration

圖5 PLA1水解PC示意圖Fig. 5 Schematic of the hydrolysis process of PC by PLA1

圖4 給出了不同反應溫度下酶解反應過程中下Sn-1-PC和Sn-2-PC含量的變化。結合圖2中反應時間對酶解影響的結果可知，在不同反應溫度下，酶解過程中均發(fā)生酰基位移現(xiàn)象，PLA1水解PC示意圖如圖5所示。張康逸等[32]通過定量13C NMR證明了PLA1具有水解磷脂Sn-1位?；舅岬膶Ｒ恍?，證實了Sn-2-溶血磷脂酰膽堿（Sn-2-lysophosphatidylcholine，Sn-2-LPC）的Sn-2位?；鶗ㄟ^酰基轉移到Sn-1位生成Sn-1-溶血磷脂酰膽堿（Sn-1-lysophosphatidylcholine, Sn-1-LPC）現(xiàn)象的存在，且研究了溫度對?；灰频挠绊懀瑥膶嶒灲Y果可知隨溫度升高?；灰瞥潭戎鸩缴撸ǚ磻獣r間6 h）。從圖4可知不同溫度下反應30 min后Sn-1-LPC含量幾乎沒有差異，且GPC含量也沒有升高，說明在較短的酶解時間（30 min）內，溫度對?；灰频挠绊懖皇呛艽?。

2.5 南極磷蝦磷脂酶解前后脂肪酸組成分析

表2 南極磷蝦磷脂酶解前后脂肪酸組成分析Table 2 Fatty acid composition of phospholipids before and after enzymatic hydrolysis%

從表2可以看出，酶解后磷脂的脂肪酸組成中EPA和DHA含量幾乎沒有變化，而游離脂肪酸（free fatty acid，F(xiàn)FA）中EPA和DHA含量有所上升，且酶解后磷脂的不飽和脂肪酸含量有所降低，飽和脂肪酸含量有所上升。說明在酶解過程中，有部分EPA和DHA被水解下來，但由于磷脂中EPA和DHA含量幾乎沒有變化，很有可能是結合在Sn-1位的EPA和DHA被酶解下來，也有可能是少量PE上的EPA和DHA被酶解下來，且其他不飽和脂肪酸也被酶解下來，所以導致酶解后磷脂中飽和脂肪酸含量升高。結合圖2時間對酶解影響的結果，可以得出酶解后得到的Sn-2位溶血磷脂中EPA和DHA含量較高[25-27]。

2.6 酶解前后磷脂乳化穩(wěn)定性

圖6 酶解前后磷脂的乳化穩(wěn)定性Fig. 6 Emulsion stability of phospholipids before and after enzymatic hydrolysis

從圖6可以看到，酶解后磷脂的乳化穩(wěn)定性得到提高，且隨著時間的延長，穩(wěn)定性優(yōu)勢越明顯。這主要是由于磷脂被PLA1水解后生成了親水性更強的溶血磷脂。這是由于酶改性南極磷蝦磷脂保留了普通磷脂的雙親兩性結構，并且由于非極性基團的減少而增強了親水性能[33]，由此溶血磷脂一定程度上改變了由于HLB值偏小而致普通磷脂應用范圍受限制的狀況，更加適合用作O/W型乳化劑[34]。

3 結 論

在水相體系中利用LPA1酶解南極磷蝦磷脂得到富含EPA和DHA的溶血磷脂。結果表明：加酶量對酸價的影響呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。隨著酶解時間的延長，Sn-2-LPC含量先增加后趨于平衡（30 min），Sn-1-LPC含量先升高后降低，這是由于部分Sn-2-LPC發(fā)生酰基位移生成Sn-1-LPC，而Sn-1-LPC又進一步被LPA1酶解生成GPC，且在較短酶解時間內，溫度對酰基位移的影響不大。最后通過GC-MS分析得出酶解產物Sn-2-LPC中EPA和DHA含量較高，且其乳化穩(wěn)定性也得到提高。