胡 劼,俞博凱,呂 飛,丁玉庭,3,劉書來(lái),3,*
(1.浙江工業(yè)大學(xué)海洋學(xué)院,浙江 杭州 310014;2.國(guó)家遠(yuǎn)洋水產(chǎn)品加工技術(shù)研發(fā)分中心(杭州),浙江 杭州 310014;3.浙江工業(yè)大學(xué)海洋研究院,浙江 杭州 310032)
南極磷蝦巨大的生物量已受到人們廣泛關(guān)注,目前對(duì)于南極磷蝦的商業(yè)開發(fā)局限于動(dòng)物飼料等的加工,經(jīng)濟(jì)效益低下[1]。研究發(fā)現(xiàn),南極磷蝦磷脂的主要成分是磷脂酰膽堿(phosphatidyl cholines,PC),還有少量磷脂酰乙醇胺(phosphatidyl ethanolamine,PE)和磷脂酰肌醇(phosphatidylinositol,PI)等[2]。磷蝦油中約60%~70%的ω-3長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸,主要是二十碳五烯酸(eicosapentaenoic acid,EPA)和二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid,DHA),并且與磷脂結(jié)合存在(位于Sn-2位居多)[3],是目前自然界中發(fā)現(xiàn)的唯一一種以磷脂形態(tài)結(jié)合的多不飽和脂肪酸,而魚油中的DHA、EPA主要以甘油酯形式存在,因而比魚油具有更為重要的生理功能[4]。海洋源ω-3多不飽和脂肪酸(polyunsaturated fatty acid,PUFA),已被證明在預(yù)防心血管疾病中發(fā)揮有益作用[5-6]。除此之外,ω-3 PUFA還被證實(shí)可降低收縮壓、緩解血小板聚集、消炎以及預(yù)防心律失常[5]。ω-3 PUFA通常以甘油三酯(triglyceride,TG)的形式通過魚油或者補(bǔ)充劑攝入,而磷蝦油中ω-3 PUFA以磷脂的形式存在,能被更有效地吸收并摻入細(xì)胞膜中[7],還可減少血漿脂質(zhì)[8]、提高EPA和DHA的生物利用度及抗炎和抗氧化活性[9-10]。
溶血磷脂的乳化穩(wěn)定性、抗氧化性、潤(rùn)濕性及親水親油平衡值(hydrophile-lipophile balance number,HLB)都優(yōu)于磷脂,其乳化體系有抗酸、抗鹽以及抗高溫等優(yōu)點(diǎn)[11]。同時(shí),溶血磷脂的分子滲透能力、殺菌能力、溶血能力與藥物親和能力也引起生理藥理學(xué)家的極大興趣。目前磷脂酶解的原料主要為大豆和蛋黃等[12-13],國(guó)內(nèi)外關(guān)于南極磷蝦磷脂酶解改性制備溶血磷脂的報(bào)道較少,因此將其作為原料制備富含EPA和DHA的溶血磷脂,具有更重要的生理功能[14]。國(guó)內(nèi)外溶血磷脂制備工藝通常采用非水相體系[15-16]或含緩沖液的水相體系[17]。非水相體系的酶改性工藝中有機(jī)溶劑的使用造成產(chǎn)品中溶劑殘留,另外溶劑的易揮發(fā)性還導(dǎo)致溶劑消耗大,不符合綠色加工發(fā)展趨勢(shì);而含緩沖液的水相體系會(huì)影響產(chǎn)品的質(zhì)量及后續(xù)處理難度。磷脂酶A1(phospholipase A1,PLA1)可用于水解磷脂酰膽堿制備溶血磷脂酰膽堿,且特異性地水解磷脂酰膽堿的Sn-1位,以制備Sn-2位富含EPA和DHA的溶血磷脂酰膽堿,但Sn-2-溶血磷脂酰膽堿(Sn-2-lysophosphatidylcholine,Sn-2-LPC)也會(huì)發(fā)生部分?;灰粕蒘n-1-溶血磷脂酰膽堿(Sn-1-lysophosphatidylcholine,Sn-1-LPC)[18-19]。在水相體系中PLA1催化南極磷蝦磷脂制備富含EPA和DHA的溶血磷脂,國(guó)內(nèi)鮮見文獻(xiàn)報(bào)道。本研究以酸價(jià)衡量磷脂水解程度,通過高效液相色譜-紫外檢測(cè)(high performance liquid chromatographyultraviolet,HPLC-UV)儀和高效液相色譜-示差檢測(cè)(high performance liquid chromatography-refractive index detector,HPLC-RID)儀對(duì)酶解前后磷脂組分(PC、Sn-1-LPC、Sn-2-LPC)進(jìn)行分析,通過高效液相色譜-蒸發(fā)光散射(high performance liquid chromatographyevaporative light scattering detector,HPLC-ELSD)儀檢測(cè)甘油磷脂酰膽堿(glycerol phosphatidylcholine,GPC)含量以進(jìn)一步證實(shí)?;灰片F(xiàn)象,并利用氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatography-mass spectrometer,GCMS)法分析磷脂酶解前后脂肪酸組成(尤其是EPA和DHA含量的變化),以期為南極磷蝦磷脂的酶解改性技術(shù)提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
南極磷蝦磷脂:以磷蝦油(由遼漁集團(tuán)提供,采用乙醇提?。樵?,經(jīng)過多次丙酮沉降,磷脂含量90%左右,酸價(jià)10.7 mg/g;磷脂酶A1(Lectise Ultra,酶活力2 000 U/g) 丹麥諾維信公司;無(wú)水乙醇、乙醚、丙酮(均為分析純) 上海凌峰化學(xué)試劑有限公司;氫氧化鉀、鄰苯二甲酸氫鉀(分析純) 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;正己烷、草酸(H2C2O4·2H2O)、異丙醇、95%乙醇、乙酸(均為色譜純) 美國(guó)阿拉丁公司。
DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器 杭州博研儀器設(shè)備有限公司;RE-2000A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠;SHZ-D(III)循環(huán)水式真空泵 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;FA1004型電子天平 常州市幸運(yùn)電子設(shè)備有限公司;KQ-300DE型數(shù)控超聲波清洗器昆山市超聲儀器有限公司;DHG-9075電熱鼓風(fēng)干燥箱上海一恒科學(xué)儀器有限公司;TRACE 1300 GC-MS譜儀賽默飛世爾科技公司;1525液相色譜儀 美國(guó)Waters公司。
1.3.1 PLA1酶解南極磷蝦磷脂制備溶血磷脂
準(zhǔn)確稱取0.6 g南極磷蝦磷脂于100 mL錐形瓶中,加30 mL去離子水均質(zhì)分散,確保反應(yīng)體系為水相,再加一定比例PLA1溶液,預(yù)混勻后,在一定溫度、時(shí)間及攪拌速度下進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)完成后沸水滅酶3 min,留樣待測(cè)定。
1.3.2 雙相薄層色譜定性分析磷脂組成成分
參考AOCS Ja 7-86[20]的方法測(cè)定,稍作修改。點(diǎn)樣:取樣品50 mg溶解后定容于10 mL容量瓶中,使用10 μL微量進(jìn)樣器進(jìn)行點(diǎn)樣,樣點(diǎn)距兩邊約1 cm,樣斑直徑不超過3 mm。層析步驟:將點(diǎn)過樣的薄板揮干溶劑后放入盛有展開劑A(氯仿-甲醇-氨水,65∶30∶4,V/V)的層析槽中進(jìn)行展開。展至距板上沿1 cm左右時(shí)取出,在室溫下干燥30 min,揮干溶劑后再放入展開劑B(氯仿-甲醇-冰醋酸-水,170∶25∶25∶6,V/V)中展開,至頂邊1 cm左右時(shí)取出,再次晾干。顯色:將揮干溶劑的層析板放入碘缸中顯色。薄層層析板定性分析:將磷脂實(shí)驗(yàn)產(chǎn)品按照上述步驟展開,顯色。參照PC、PE、LPC標(biāo)樣圖譜和資料中的圖譜,對(duì)各磷脂組分進(jìn)行定性。
1.3.3 磷脂酸價(jià)的測(cè)定
參考AOCS Ja 6-55[21]的方法測(cè)定,稍作修改。取干凈250 mL錐形瓶,用天平稱取0.5~3.0 g磷脂樣品,加入乙醚-異丙醇混合液50~100 mL和3~4 滴百里香酚酞指示劑(2%),充分振蕩溶解試樣。再用標(biāo)準(zhǔn)氫氧化鉀(0.1 mol/L)溶液進(jìn)行手工滴定,當(dāng)試樣溶液變?yōu)樗{(lán)色時(shí),且15 s內(nèi)無(wú)明顯褪色時(shí),為滴定終點(diǎn)。記錄下此時(shí)消耗的氫氧化鉀的體積V。同時(shí)做一組空白實(shí)驗(yàn)作對(duì)照,記錄體積V0,按公式(1)計(jì)算酸價(jià):
式中:XAV為酸價(jià)/(mg/g);V為試樣測(cè)定所消耗的標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的體積/mL;V0為相應(yīng)的空白實(shí)驗(yàn)所消耗的標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的體積/mL;c為標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的濃度/(mol/L);56.1為氫氧化鉀的摩爾質(zhì)量/(g/mol);m為油脂樣品的稱樣量/g。
1.3.4 磷脂水解度的計(jì)算
磷脂水解度按公式(2)、(3)計(jì)算:
式中:X為磷脂Sn-1位脂肪酸水解度/%;A為水解產(chǎn)物酸價(jià)/(mg/g);B為原料酸價(jià)/(mg/g);C為磷脂Sn-1位完全水解產(chǎn)生的理論酸價(jià)/(mg/g); 為磷脂平均相對(duì)分子質(zhì)量。
1.3.5 磷脂各組成成分的HPLC-UV分析[22]
色譜柱:Sunfire Prep Silica(250 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫30 ℃;流速1 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)206 nm;流動(dòng)相為正己烷-異丙醇-0.05%乙酸(6∶8∶1.38,V/V),過0.22 μm有機(jī)膜,超聲脫氣處理30 min;進(jìn)樣量10 μL。樣品的定性分析采用標(biāo)樣保留時(shí)間比對(duì),定量分析采用標(biāo)樣外標(biāo)法。
1.3.6 磷脂酶解后GPC含量的HPLC-ELSD分析[18]
色譜柱:Sunfire Prep Silica(250 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫30 ℃;漂移管溫度80 ℃;流速1 mL/min;梯度洗脫:流動(dòng)相A為甲醇-水(8∶1,V/V),流動(dòng)相B為甲醇。流動(dòng)相A的梯度洗脫,開始10 min,以40%梯度增加到60%并保持5 min,最后3 min由60%降低到40%;進(jìn)樣量10 μL,樣品的定性分析采用標(biāo)樣保留時(shí)間比對(duì),定量分析采用標(biāo)樣外標(biāo)法。
1.3.7 Sn-1-LPC和Sn-2-LPC含量的HPLC-RID分析
參考GB/T 22506—2008《酶改性磷脂中1-和2-溶血磷脂酰膽堿的測(cè)定》[23]中方法。色譜柱:Waters spherisorb NH2(250 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫25 ℃;進(jìn)樣量10 μL。等度洗脫,流動(dòng)相為95%乙醇-草酸溶液(92:8,V/V),過0.22 μm有機(jī)膜,超聲脫氣處理30 min,流速1 mL/min。示差檢測(cè)器檢測(cè)峰面積,以峰面積為縱坐標(biāo)(Y),標(biāo)樣質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X,mg/mL)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制。
樣品處理:稱取50~100 mg酶改性磷脂樣品,用95%乙醇溶解稀釋至25 mL,用高速離心機(jī)離心(8 000 r/min,10 min),取上清液用0.45 μm纖維膜過濾,現(xiàn)配現(xiàn)用。
1.3.8 磷脂脂肪酸組成測(cè)定[24-27]
采用薄層制備板分離磷脂和游離脂肪酸。帶狀點(diǎn)樣后,以正己烷-乙醚-冰乙酸(80∶19∶1,V/V)為展開劑進(jìn)行展層,顯色,刮板收集磷脂層和游離脂肪酸層,用無(wú)水乙醇萃取硅膠中的磷脂和游離脂肪酸,氮吹揮干溶劑,得到樣品。
樣品甲酯化:在樣品中加入1 mL 0.5 mol/L NaOH-甲醇溶液,搖勻后于80 ℃水浴振蕩5 min,冷卻至室溫后,再加入1 mL 14% BF3-甲醇溶液和0.3 mL 0.1%對(duì)苯二酚溶液,在80 ℃水浴中振蕩2 min,冷卻至室溫后加0.2 mL鹽溶液,振蕩10 s后加入1 mL正己烷,振蕩搖勻后靜置。待分層后取含脂肪酸甲酯的上層溶液,加入一定量無(wú)水硫酸鈉脫除水分,使用0.22 μm孔徑有機(jī)相濾膜過濾后進(jìn)行GC-MS分析。
GC條件:HP-INNOWax毛細(xì)管柱(60 m×0.32 mm,0.25 μm);載氣為高純氦氣;采用恒流模式;流速為2 mL/min,不分流;進(jìn)樣量1 μL;進(jìn)樣口溫度240 ℃;檢測(cè)器溫度250 ℃;柱溫以初始溫度90 ℃保持5 min,先以15 ℃/min升至200 ℃,再以1 ℃/min升至240 ℃并保持10 min,整個(gè)分析過程為62.3 min。MS條件:GC-MS接口溫度250 ℃;電子電離源;電離能量70 eV;離子源溫度250 ℃;掃描周期,0.2 次/s;質(zhì)量掃描范圍m/z 35~450 u。
1.3.9 酶解前后磷脂乳化穩(wěn)定性測(cè)定[28-29]
配制一定量1%酶解后磷脂水溶液,然后按一定油水比加入大豆油,經(jīng)高速剪切機(jī)(10 000 r/min)分散2 min,得乳狀液。將乳化液轉(zhuǎn)移到100 mL具塞量筒中,間隔一定時(shí)間觀察分層情況,并與磷脂原料作比較。以乳化層比例大小衡量乳化能力和乳化穩(wěn)定性,乳化層比例越大,乳化能力和乳化穩(wěn)定性越好,按公式(4)計(jì)算:
數(shù)據(jù)結(jié)果采用Origin 8.6進(jìn)行處理。所有實(shí)驗(yàn)平行測(cè)定3 次以上,結(jié)果以±s表示。
用雙相薄層色譜法對(duì)原料磷脂中的主要組分進(jìn)行定性分析,結(jié)果如圖1所示。采用乙醇提取的磷蝦磷脂中主要含有PC、PE、LPC等物質(zhì),且從顯色面積來(lái)看,PC為主要成分。
圖1 原料磷脂雙相薄層展開圖Fig. 1 Two-dimensional TLC profile of phospholipids
用HPLC-UV對(duì)南極磷蝦磷脂主要組分進(jìn)行定量分析,由表1可知,實(shí)驗(yàn)室自提的南極磷蝦磷脂中PC為主要成分,其含量為(90.90±1.55)%,PE和溶血磷脂酰膽堿(lysophosphatidylcholine,LPC)含量分別為(3.20±1.03)%和(2.60±0.96)%。孫德偉等[30]用亞臨界丁烷提取南極磷蝦脂質(zhì),其磷脂含量較高,但磷脂酰膽堿僅占71.20%,其PE和PI含量相對(duì)較高。這是由于脂質(zhì)提取所用溶劑不同,PE在乙醇中溶解度小,而磷蝦中PI含量本就偏低,因此本研究以PC為實(shí)驗(yàn)主要原料進(jìn)行分析。
表1 南極磷蝦磷脂各組分的含量Table 1 Composition of Antarctic krill phospholipids%
圖2 反應(yīng)時(shí)間對(duì)磷脂酶解的影響Fig. 2 Effect of reaction time on phospholipid hydrolysis
考察反應(yīng)溫度30 ℃和加酶量20 U/g條件下不同反應(yīng)時(shí)間對(duì)磷脂酶解過程的影響,如圖2所示,隨著反應(yīng)時(shí)間的延長(zhǎng),酶和底物接觸次數(shù)增多,磷脂逐步被水解產(chǎn)生溶血磷脂和游離脂肪酸,其酸價(jià)隨之不斷升高,30 min后反應(yīng)趨于平衡狀態(tài),酸價(jià)增加不明顯。PC經(jīng)PLA1酶解后主要生成Sn-2-LPC,且隨時(shí)間的延長(zhǎng),PC含量不斷減少而Sn-2-LPC含量不斷增加,30 min后兩者含量趨于平衡,同時(shí)Sn-1-LPC含量隨反應(yīng)時(shí)間延長(zhǎng)呈先升高后逐漸降低的趨勢(shì),這是由于酶解過程中部分Sn-2-LPC發(fā)生?;灰粕蒘n-1-LPC,而Sn-1-LPC又進(jìn)一步被PLA1酶解生成GPC[18-19]。
一般情況下,酶添加量較低時(shí)酶活力隨其添加量的增加而增多,底物與酶活性中心接觸的機(jī)率也隨之增加,酶反應(yīng)速率加快,但隨酶添加量增至一定值時(shí),酶反應(yīng)速率變化不大,甚至還會(huì)出現(xiàn)抑制反應(yīng)的現(xiàn)象[31]。由圖3可知,由于初始時(shí)加酶量較少,酶不能充分催化底物,當(dāng)加酶量增加時(shí),酶與底物的接觸面積增大,酸價(jià)增加較快,而當(dāng)加酶量達(dá)到20 U/g時(shí)達(dá)到飽和狀態(tài),反應(yīng)處于平衡,繼續(xù)增大加酶量,水解程度無(wú)明顯提高。
圖3 加酶量對(duì)磷脂酶解的影響Fig. 3 Effect of enzyme dosage on phospholipid hydrolysis
圖4 反應(yīng)溫度對(duì)?;灰频挠绊慒ig. 4 Effect of reaction temperature on acyl migration
圖5 PLA1水解PC示意圖Fig. 5 Schematic of the hydrolysis process of PC by PLA1
圖4 給出了不同反應(yīng)溫度下酶解反應(yīng)過程中下Sn-1-PC和Sn-2-PC含量的變化。結(jié)合圖2中反應(yīng)時(shí)間對(duì)酶解影響的結(jié)果可知,在不同反應(yīng)溫度下,酶解過程中均發(fā)生?;灰片F(xiàn)象,PLA1水解PC示意圖如圖5所示。張康逸等[32]通過定量13C NMR證明了PLA1具有水解磷脂Sn-1位?;舅岬膶R恍?,證實(shí)了Sn-2-溶血磷脂酰膽堿(Sn-2-lysophosphatidylcholine,Sn-2-LPC)的Sn-2位?;鶗?huì)通過?;D(zhuǎn)移到Sn-1位生成Sn-1-溶血磷脂酰膽堿(Sn-1-lysophosphatidylcholine, Sn-1-LPC)現(xiàn)象的存在,且研究了溫度對(duì)?;灰频挠绊懀瑥膶?shí)驗(yàn)結(jié)果可知隨溫度升高?;灰瞥潭戎鸩缴撸ǚ磻?yīng)時(shí)間6 h)。從圖4可知不同溫度下反應(yīng)30 min后Sn-1-LPC含量幾乎沒有差異,且GPC含量也沒有升高,說(shuō)明在較短的酶解時(shí)間(30 min)內(nèi),溫度對(duì)?;灰频挠绊懖皇呛艽?。
表2 南極磷蝦磷脂酶解前后脂肪酸組成分析Table 2 Fatty acid composition of phospholipids before and after enzymatic hydrolysis%
從表2可以看出,酶解后磷脂的脂肪酸組成中EPA和DHA含量幾乎沒有變化,而游離脂肪酸(free fatty acid,F(xiàn)FA)中EPA和DHA含量有所上升,且酶解后磷脂的不飽和脂肪酸含量有所降低,飽和脂肪酸含量有所上升。說(shuō)明在酶解過程中,有部分EPA和DHA被水解下來(lái),但由于磷脂中EPA和DHA含量幾乎沒有變化,很有可能是結(jié)合在Sn-1位的EPA和DHA被酶解下來(lái),也有可能是少量PE上的EPA和DHA被酶解下來(lái),且其他不飽和脂肪酸也被酶解下來(lái),所以導(dǎo)致酶解后磷脂中飽和脂肪酸含量升高。結(jié)合圖2時(shí)間對(duì)酶解影響的結(jié)果,可以得出酶解后得到的Sn-2位溶血磷脂中EPA和DHA含量較高[25-27]。
圖6 酶解前后磷脂的乳化穩(wěn)定性Fig. 6 Emulsion stability of phospholipids before and after enzymatic hydrolysis
從圖6可以看到,酶解后磷脂的乳化穩(wěn)定性得到提高,且隨著時(shí)間的延長(zhǎng),穩(wěn)定性優(yōu)勢(shì)越明顯。這主要是由于磷脂被PLA1水解后生成了親水性更強(qiáng)的溶血磷脂。這是由于酶改性南極磷蝦磷脂保留了普通磷脂的雙親兩性結(jié)構(gòu),并且由于非極性基團(tuán)的減少而增強(qiáng)了親水性能[33],由此溶血磷脂一定程度上改變了由于HLB值偏小而致普通磷脂應(yīng)用范圍受限制的狀況,更加適合用作O/W型乳化劑[34]。
在水相體系中利用LPA1酶解南極磷蝦磷脂得到富含EPA和DHA的溶血磷脂。結(jié)果表明:加酶量對(duì)酸價(jià)的影響呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng),Sn-2-LPC含量先增加后趨于平衡(30 min),Sn-1-LPC含量先升高后降低,這是由于部分Sn-2-LPC發(fā)生?;灰粕蒘n-1-LPC,而Sn-1-LPC又進(jìn)一步被LPA1酶解生成GPC,且在較短酶解時(shí)間內(nèi),溫度對(duì)?;灰频挠绊懖淮?。最后通過GC-MS分析得出酶解產(chǎn)物Sn-2-LPC中EPA和DHA含量較高,且其乳化穩(wěn)定性也得到提高。