柴松波, 王振濤, 張淑娟, 劉舜禹
(河南省中醫(yī)院/河南中醫(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院心病科,鄭州 450002)
擴(kuò)張型心肌病(dilated cardiomyopathy, DCM)為臨床常見心臟疾病,患者常出現(xiàn)心室收縮功能障礙、心室重構(gòu),若沒有得到及時(shí)治療,則會(huì)病情加重,發(fā)展為心力衰竭[1]。近期研究顯示心肌細(xì)胞凋亡是導(dǎo)致DCM發(fā)生時(shí)心室收縮功能不足、左心室功能惡化的主要原因,因此抑制心肌細(xì)胞凋亡可緩解心肌損傷以及心室重構(gòu)[2]。丹參酮ⅡA為丹參中具有代表性的生物活性成分,丹參酮ⅡA 磺酸鈉(sodium tanshinone ⅡA sulfonate, STS)為其主要提取物,大量研究顯示在心肌缺血再灌注損傷、心肌肥大、DCM中均具有良好的療效,然而其具體作用機(jī)制目前尚不明確[3]。本研究通過(guò)制備DCM大鼠,并給予STS治療,以觀察STS對(duì)DCM大鼠心肌細(xì)胞凋亡的改善作用,并初步探討可能作用機(jī)制,以期為STS應(yīng)用于心肌梗死臨床治療提供理論基礎(chǔ)。
選取7~8周齡SPF級(jí)雄性 Wistar大鼠72只,體重60~70 g, 由河南省動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供[SYXK(豫)2017-0002],所有大鼠均在22℃~25℃,相對(duì)濕度50%的環(huán)境中統(tǒng)一飼養(yǎng)[SYXK(豫)2017-0016],大鼠自由飲水、攝食,保持通風(fēng)、光照良好,正常飼養(yǎng)一周后用于模型制備。本研究經(jīng)本院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)同意,且實(shí)驗(yàn)過(guò)程中的處理符合動(dòng)物倫理學(xué)標(biāo)準(zhǔn),倫理審批號(hào):IACUC-20170208015。
STS注射劑購(gòu)于上海第一生化藥業(yè)有限公司,批號(hào):20170218;卡維地洛(carvedilol,CAR)購(gòu)于齊魯制藥有限公司,批號(hào):20170326;呋喃唑酮片購(gòu)于長(zhǎng)春新安藥業(yè)有限公司批號(hào):20170121;多普勒超聲檢測(cè)儀購(gòu)于西門子公司;HE染色試劑盒購(gòu)于上海生工生物工程有限公司;Tunel檢測(cè)試劑盒購(gòu)于杭州碧云天生物科技有限公司;蛋白檢測(cè)試劑盒、BCA測(cè)定試劑盒購(gòu)于北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;兔抗鼠p-PI3K、p-Akt、caspase3、B淋巴細(xì)胞瘤-2蛋白(B-cell lymphoma-2,Bcl-2)、(Bcl-2 associated X protein,Bax)單抗購(gòu)自英國(guó)Abcam公司,HRP標(biāo)記IgG二抗、βactin均購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;電子顯微鏡購(gòu)于日本奧林巴斯公司;垂直電泳儀與凝膠成像儀購(gòu)于美國(guó)Bio-Rad公司;SP檢測(cè)試劑盒購(gòu)于北京康為世紀(jì)公司。
1.3.1 模型制備
參照文獻(xiàn)[4]制備DCM大鼠,選取60只大鼠,灌胃呋喃唑酮水溶液(按1 kg水加700 mg呋喃唑酮配置),每日更換一次。造模時(shí)間為8周。并用超聲診斷儀完成心臟超聲心動(dòng)圖監(jiān)測(cè),超聲心動(dòng)圖顯示左心室壁彌漫性運(yùn)動(dòng)減弱,射血分?jǐn)?shù)較對(duì)照組大鼠射血分?jǐn)?shù)均值減少20%為造模成功的標(biāo)志。另設(shè)一正常對(duì)照組大鼠12只,自主飲水連續(xù)8周。
1.3.2 動(dòng)物分組與給藥
模型制備后,采用隨機(jī)數(shù)字表法將大鼠分為5組,模型組(DCM組)、STS中、高、低劑量組、CAR組,每組12只大鼠,STS各組大鼠:模型結(jié)束后腹腔注射17.5、35.0、70.0 mg/kg STS;卡維地洛組(陽(yáng)性對(duì)照組):模型結(jié)束后腹腔注射10 mg/kg CAR;每日上午1次,連續(xù)給藥4周。對(duì)照組、DCM組大鼠腹腔注射等量生理鹽水,連續(xù)4周。
1.3.3 超聲檢測(cè)左心室功能。
末次給藥結(jié)束后,麻醉大鼠,于二維超聲引導(dǎo)下測(cè)定左心長(zhǎng)軸切面左室收縮末期內(nèi)徑(left ventricular internal diameter at end-systole, LVIDs)和左心室舒張末期內(nèi)徑(left ventricular internal dimension at end-diastole, LVIDd)以及左心室射血分?jǐn)?shù)(Left ventricular ejection fraction,LVEF),連續(xù)測(cè)定4個(gè)完整心動(dòng)周期,重復(fù)測(cè)定3次,取平均值。
1.3.4 標(biāo)本采集
心功能檢測(cè)結(jié)束后,麻醉后處死大鼠,腹動(dòng)脈取血2 mL,3000 r/min離心5 min后保留上層血清;取出心臟,清洗后,摘除非心肌組織,取心室橫徑最大部分心肌組織,一部分于-80℃中保存,一部分置于4%多聚甲醛中固定。
1.3.5 血清TNF-ɑ、IL-6水平檢測(cè)
采用Elisa試劑盒檢測(cè)血清中TNF-ɑ、IL-6水平,具體參照試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行操作。
1.3.6 心肌組織染色
常規(guī)制備心肌組織石蠟切片,烘烤后,在二甲苯中脫蠟,梯度乙醇中脫水,PBS清洗后,采用蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin, HE)染色試劑盒進(jìn)行染色,將切片置于顯微鏡下,觀察心肌組織病理形態(tài)學(xué)變化,統(tǒng)計(jì)心肌纖維化情況,無(wú)心肌纖維化為0分,纖維化區(qū)域比例<25%為1分,纖維化區(qū)域比例25%~50%記為2分,51%~75%記為3分,>75%記為4分。
Masson染色:石蠟切片加入、脫蠟脫水后進(jìn)行鉻化處理,參照Masson染色試劑盒進(jìn)行染色,切片最后脫水、透明、封片后。采用Metic Med 6.0軟件計(jì)算心肌膠原纖維比例(%)=膠原面積/總面積 × 100%。
1.3.7 TUNEL法檢測(cè)心肌細(xì)胞凋亡情況
制備心肌組織冷凍切片,根據(jù)TUNEL染色試劑盒說(shuō)明書對(duì)組織進(jìn)行染色,于光學(xué)顯微鏡下觀察心肌細(xì)胞凋亡數(shù)情況,Image-Pro Plus軟件定量細(xì)胞陽(yáng)性數(shù)量,計(jì)算心肌細(xì)胞凋亡指數(shù)(apoptosis index,AI)=凋亡細(xì)胞陽(yáng)性數(shù)/細(xì)胞總數(shù) × 100%。
1.3.8 蛋白免疫印跡
取出保存心肌組織研磨,添加裂解緩沖液裂解組織,抽提總蛋白,SDS-PAGE電泳分離等量蛋白后進(jìn)行轉(zhuǎn)模反應(yīng)后,加入5% BSA封閉1 h;加入p-PI3K、p-Akt、caspase-3、Bax、Bcl-2、β-actin一抗(1∶500),4℃過(guò)夜孵育;添加二抗(1∶5000),室溫孵育1 h,發(fā)光顯影后用Tanon軟件采集圖像并對(duì)蛋白進(jìn)行量化分析。
1.3.9 免疫組化檢測(cè)p-PI3K、p-Akt、caspase-3、Bax、Bcl-2蛋白表達(dá)
心肌組織切片石蠟切片添加檸檬酸鈉抗原修復(fù),H2O2解除內(nèi)源過(guò)氧化酶活性,封閉后,于4℃加入p-PI3K、 p-Akt、caspase-3、 Bax、Bcl-2一抗孵育過(guò)夜,滴加HRP標(biāo)記IgG二抗后,添加蘇木精染液復(fù)染、氨水反藍(lán),置于梯度乙醇中脫水、二甲苯透明,用中性樹脂封片后置于顯微鏡下觀察蛋白表達(dá)情況。
與對(duì)照組相比,DCM組LVIDs、LVIDd升高,LVEF降低,差異具有顯著性(P<0.05);與DCM組相比,STS各組以及CAR組LVIDs、LVIDd降低,LVEF升高,差異具有顯著性(P<0.05)。(圖1、表1)
對(duì)照組心肌細(xì)胞結(jié)構(gòu)形態(tài)完整,心肌細(xì)胞以及膠原纖維排列緊密、規(guī)則。DCM組大鼠心肌細(xì)胞結(jié)構(gòu)破碎,出現(xiàn)壞死,細(xì)胞排列疏松、膠原纖維斷裂、排列不規(guī)則,同時(shí)伴有大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。STS各組以及CAR組大鼠破碎、壞死心肌細(xì)胞明顯減少,細(xì)胞以及膠原纖維形態(tài)結(jié)構(gòu)逐漸恢復(fù)正常。
與對(duì)照組相比,DCM組心肌組織病理學(xué)評(píng)分、心肌膠原纖維比例均升高,差異具有顯著性(P<0.05);與DCM組相比,STS各組以及CAR組病理學(xué)評(píng)分、心肌膠原纖維比例均降低,差異具有顯著性(P<0.05)。(圖2、表2)
與對(duì)照組相比,DCM組TNF-ɑ、IL-6水平均升高,差異具有顯著性(P<0.05);與DCM組相比,STS各組以及CAR組TNF-ɑ、IL-6水平均降低,差異具有顯著性(P<0.05);TNF-ɑ、IL-6水平均呈劑量依賴性(P<0.05)。(表3)
圖1 超聲檢測(cè)大鼠心臟的左心室功能Figure 1 Echocardiographic detection of the left ventricular function in the rats
組別Groups LVIDs(mm)LVIDd(mm)LVEF(%) 對(duì)照組Control group1.86±0.174.46±0.6485.33±7.87DCM組DCM group2.54±0.25?6.94±0.87?69.95±4.31?STS-L組STS-L group2.31±0.28#6.27±0.59#75.15±3.96#STS-M組STS-M group2.27±0.33#6.14±0.41#76.33±6.28#STS-H組STS-H group2.19±0.25#5.87±0.55#77.94±4.67#CAR組CAR group2.08±0.14#5.71±0.68#79.75±5.84#
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與DCM組比較,#P<0.05。
Note. Compared with the control group,*P<0.05. Compared with the DCM group,#P<0.05.
圖2 大鼠心肌組織的病理改變。HE、Masson染色Figure 2 Histological changes in the myocardium of the rats. Hematoxylin and eosin, and Masson trichrome staining
組別Groups 病理學(xué)評(píng)分Pathological scores心肌膠原纖維比例Myocardial collagen fiber ratio 對(duì)照組Control group0.16±0.036.52±0.31DCM組DCM group3.67±0.56?56.42±7.39?STS-L組STS-L group3.25±0.33#45.73±5.41#STS-M組STS-M group2.88±0.29#&34.21±6.32#&STS-H組STS-H group2.09±0.28#&△30.72±4.37#&CAR組CAR group1.96±0.35#24.66±3.51#
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與DCM組比較,#P<0.05;與STS-L組比較,&P<0.05;與STS-M組比較,△P<0.05。
Note. Compared with the control group,*P<0.05. Compared with the DCM group,#P<0.05. Compared with the STS-L group,&P<0.05. Compared with the STS-M group,△P<0.05.
表3 各組血清TNF-ɑ、IL-6水平比較Table 3 Serum TNF-ɑ and IL-6 levels in each group
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與DCM組比較,#P<0.05;與STS-L組比較,&P<0.05;與STS-M組比較,△P<0.05。
Note. Compared with the control group,*P<0.05. Compared with the DCM group,#P<0.05. Compared with the STS-L group,&P<0.05. Compared with the STS-M group,△P<0.05.
與對(duì)照組相比,DCM組心肌細(xì)胞AI升高,差異具有顯著性(P<0.05);與DCM組相比,STS各組以及CAR組心肌細(xì)胞AI均降低,差異具有顯著性(P<0.05);隨著劑量的升高,心肌細(xì)胞凋亡率降低(P<0.05)。(圖3、表4)
圖3 TUNEL法觀察各組大鼠心肌細(xì)胞凋亡情況(×100)Figure 3 Apoptosis in cardiomyocytes in the rat heart tissues in each group. TUNEL staining.
組別Groups 細(xì)胞凋亡(%)Apoptosis index 對(duì)照組Control group11.56±1.32DCM組DCM group42.17±3.78?STS-L組STS-L group32.81±3.26#STS-M組STS-M group25.37±3.01#&STS-H組STS-H group19.56±2.27#&△CAR組CAR group18.74±2.34#
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與DCM組比較,#P<0.05;與STS-L組比較,&P<0.05;與STS-M組比較,△P<0.05。
Note. Compared with the control group,*P<0.05. Compared with the DCM group,#P<0.05. Compared with the STS-L group,&P<0.05. Compared with the STS-M group,△P<0.05.
與對(duì)照組相比,DCM組p-PI3K、p-Akt、Bcl-2蛋白表達(dá)降低,caspase-3、Bax蛋白表達(dá)升高,差異具有顯著性(P<0.05);與DCM組相比,STS各組以及CAR組p-PI3K、p-Akt、Bcl-2蛋白表達(dá)升高,caspase-3、Bax蛋白表達(dá)降低,差異具有顯著性(P<0.05);p-PI3K、p-Akt、Bcl-2、caspase-3、Bax蛋白表達(dá)呈劑量依賴性(P<0.05)。(圖4、表5)
與對(duì)照組相比,DCM組p-PI3K、p-Akt、Bcl-2蛋白陽(yáng)性表達(dá)率降低,caspase-3、Bax陽(yáng)性表達(dá)率表達(dá)升高,差異具有顯著性(P<0.05);與DCM組相比,STS各組以及CAR組p-PI3K、p-Akt、Bcl-2蛋白陽(yáng)性表達(dá)率升高,caspase-3、Bax蛋白陽(yáng)性表達(dá)率降低,差異具有顯著性(P<0.05);隨著STS劑量的升高,caspase-3、Bax蛋白陽(yáng)性表達(dá)率逐漸降低,p-PI3K、p-Akt、Bcl-2蛋白表達(dá)顯著升高。(圖5、表6)
注:A:對(duì)照組;B:DCM組;C:STS-L組;D:STS-M組;E:STS-H組;F:CAR組。圖4 Western blot檢測(cè)心肌組織中p-PI3K、p-Akt、Bcl-2、caspase-3、Bax蛋白表達(dá)Note. A, Control group. B, DCM group. C, STS-L group. D, STS-M group. E, STS-H group. F, CAR group.Figure 4 The expressions of p-PI3K, p-Akt, Bcl-2, Caspase-3 and Bax in the rat myocardial tissues of each group, detected by western blotting
表5 各組心肌p-PI3K、p-Akt、Bcl-2、caspase-3、Bax蛋白表達(dá)的比較Table 5 Comparison of protein expressions of p-PI3K, p-Akt, Bcl-2, Caspase-3 and Bax in the rat myocardia of different groups
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與DCM組比較,#P<0.05;與STS-L組比較,&P<0.05;與STS-M組比較,△P<0.05。
Note. Compared with the control group,*P<0.05. Compared with the DCM group,#P<0.05. Compared with the STS-L group,&P<0.05. Compared with the STS-M group,△P<0.05.
圖5 心肌組織中p-PI3K、p-Akt、Bcl-2、caspase-3、Bax蛋白的表達(dá)。免疫組化染色。Figure 5 Expression of p-PI3K, p-Akt, Bcl-2, caspase-3, and Bax proteins in the rat myocardial tissues. Immunohistochemical staining.
組別Groups p-PI3Kp-AktBcl-2Caspase-3Bax 對(duì)照組Control group60.34±6.4466.73±6.1848.17±6.7410.86±2.1310.57±1.82DCM組DCM group13.58±2.13?15.16±3.09?11.27±2.09?48.08±5.29?45.19±4.03?STS-L組STS-L group20.16±2.87#22.63±3.17#19.14±2.27#32.13±9.18#38.13±3.48#STS-M組STS-M group29.24±3.16#&34.52±5.37#&32.72±3.15#&28.17±4.34#29.18±2.24#&STS-H組STS-H group38.47±3.35#&△46.53±7.48#&△38.17±6.74#&△23.08±4.18#&△18.87±4.03#&△CAR組CAR group54.08±1.59#54.26±6.87#41.42±3.43#21.16±1.35#17.74±3.39#
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與DCM組比較,#P<0.05;與STS-L組比較,&P<0.05;與STS-M組比較,△P<0.05。
Note. Compared with the control group,*P<0.05. Compared with the DCM group,#P<0.05. Compared with the STS-L group,&P<0.05. Compared with the STS-M group,△P<0.05.
DCM主要表現(xiàn)為心室擴(kuò)張以及收縮功能減弱,調(diào)查顯示1985年美國(guó)某地區(qū)流行病學(xué)調(diào)查顯示DCM患病率為36.5/10萬(wàn),2002年中國(guó)分層整群抽樣調(diào)查顯示DCM患病率約為19/10萬(wàn),且近幾年發(fā)病率仍逐漸升高,嚴(yán)重影響患者生命健康[5]。DCM具體發(fā)病原因目前尚不明確,缺乏有效治療手段,因此探究其發(fā)病機(jī)制,尋找新型治療藥物是目前的重要任務(wù)。
本研究通過(guò)灌胃呋喃唑酮水溶液制備DCM大鼠,結(jié)果顯示與對(duì)照組比較,DCM組DCM組LVIDs、LVIDd升高,LVEF降低,血清TNF-ɑ、IL-6水平升高,HE染色發(fā)現(xiàn)心肌細(xì)胞形態(tài)破碎,排列疏松,出現(xiàn)大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn),表明DCM大鼠左心室擴(kuò)張,收縮功能降低,且心肌組織伴有炎癥損傷,符合以往DCM模型典型特征[6],提示DCM模型復(fù)制成功。
STS是從中草藥丹參莖中提取的二萜醌類化合物,通過(guò)磺化反應(yīng)制成的藥物,其中丹參酮ⅡA為主要藥理成分,藥理學(xué)研究顯示丹參酮ⅡA能夠降低血液黏稠度,消除過(guò)量氧自由基,使冠狀動(dòng)脈擴(kuò)張,提高心肌組織血流量,進(jìn)而提高心肌能量?jī)?chǔ)備,使心肌收縮力增強(qiáng)[7]。本研究顯示與DCM組比較,STS各組LVIDs、LVIDd降低,LVEF升高,血清TNF-ɑ、IL-6水平降低,HE染色發(fā)現(xiàn)心肌細(xì)胞壞死數(shù)減少,心肌細(xì)胞以及膠原纖維形態(tài)逐漸恢復(fù)正常,炎性細(xì)胞浸潤(rùn)明顯較少,隨著STS劑量的升高,大鼠心臟功能逐漸恢復(fù),心肌損傷程度逐漸降低,且STS高劑量組與CAR組效果相似。劉崇斌等[8]研究發(fā)現(xiàn),STS可改善DCM大鼠心功能,減輕左室重構(gòu),減少心肌纖維化進(jìn)而保護(hù)心肌組織,與本研究結(jié)果一致。以上研究結(jié)果提示STS可緩解大鼠心肌損傷,改善DCM大鼠左心室功能保護(hù)心肌組織。
心肌組織受損是由多因素共同參與、作用的結(jié)果,與細(xì)胞凋亡密切相關(guān)。一般情況細(xì)胞凋亡有利于維持機(jī)體健康狀態(tài)非常重要;當(dāng)細(xì)胞受到外界以及內(nèi)部刺激時(shí),細(xì)胞正常凋亡程序紊亂,引發(fā)細(xì)胞異常凋亡,引起組織細(xì)胞壞死等病理?yè)p傷[9-10]。本研究發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組比較,DCM組心肌細(xì)胞凋亡指數(shù)顯著升高;與DCM組比較,STS組大鼠心肌細(xì)胞凋亡指數(shù)顯著降低,提示STS能夠有效抑制DCM大鼠心肌細(xì)胞凋亡。
本研究顯示與對(duì)照組比較,DCM組心肌p-PI3K、p-Akt表達(dá)降低,表明活PI3K/Akt信號(hào)通路可能參與DM的發(fā)生。PI3K作為PI3K/Akt信號(hào)通路起始因子,在機(jī)體內(nèi)生長(zhǎng)因子、能量信號(hào)改變后激活I(lǐng)RS,隨后結(jié)合PI3K,產(chǎn)生PTP2以及PTP3,Akt在PTP2的刺激下產(chǎn)生二聚體并在PTP3、PDK的共同作用下使AKT與細(xì)胞膜相結(jié)合,進(jìn)一步使Akt發(fā)生磷酸化,隨后從細(xì)胞膜上釋放出來(lái)進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)內(nèi)傳遞信號(hào)[11-12]。過(guò)往研究顯示STS通過(guò)調(diào)控PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路抵抗抗內(nèi)皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷[13]。金云曄等[14]研究顯示STS通過(guò)調(diào)控PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路降低因缺血再灌注損傷導(dǎo)致的心肌細(xì)胞凋亡,保護(hù)心肌功能。李佳等[15]研究顯示,給予心肌缺血再灌注損傷大鼠PI3K特異性抑制劑后,大鼠心肌細(xì)胞凋亡率明顯升高。以上研究表明,在心肌缺血再灌注損傷大鼠中發(fā)現(xiàn)激活PI3K/Akt信號(hào)通路,能夠保護(hù)心室功能,降低心肌梗塞面,減少心肌壞死細(xì)胞[16]。本研究發(fā)現(xiàn)與DCM組比較,STS組大鼠心肌組織中p-PI3K、p-Akt表達(dá)升高,隨著STS劑量的升高p-PI3K、p-Akt表達(dá)升高,逐漸升高,STS高劑量組與CAR組表達(dá)水平相近,提示STS可能通過(guò)激活PI3K/Akt信號(hào)通路抑制DCM大鼠心肌細(xì)胞凋亡,進(jìn)而緩解心肌組織損傷,保護(hù)心肌功能。
細(xì)胞凋亡過(guò)程中涉及多種凋亡誘導(dǎo)、抑制因子,Bcl-2家族中包括多種與細(xì)胞凋亡密切相關(guān)的蛋白成員,包括Bcl-2抗凋亡因子以及促凋亡因子Bax[17]。細(xì)胞未受損時(shí),Bcl-2、Bcl-XL與Bax形成二聚體,受到損傷刺激后Bax蛋白大量表達(dá),二聚體含量升高聚集于線粒體膜導(dǎo)致線粒體膜通透性增加,AIF凋亡因子進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),激活caspase-3級(jí)聯(lián)反應(yīng)引發(fā)細(xì)胞凋亡[18-19]。本研究發(fā)現(xiàn),DCM組caspase-3、Bax表達(dá)顯著升高,Bcl-2表達(dá)顯著降低;STS干預(yù)后,caspase-3、Bax蛋白表達(dá)顯著降低,Bcl-2蛋白表達(dá)顯著升高,隨著STS劑量的升高,caspase-3、Bax蛋白表達(dá)逐漸降低,Bcl-2蛋白表達(dá)顯著升高,STS高劑量組與CAR組表達(dá)相近,提示STS可抑制caspase-3信號(hào)通路的激活抑制細(xì)胞凋亡,結(jié)合以上研究提示STS可能通過(guò)激活PI3K/Akt信號(hào)通路,進(jìn)而抑制caspase-3凋亡通路激活,減少心肌細(xì)胞凋亡,發(fā)揮心肌損傷保護(hù)作用。
綜上所述,STS可減輕DCM大鼠心肌損傷,減少心肌細(xì)胞凋亡,其機(jī)制可能與激活PI3K/Akt信號(hào)通路,抑制caspase-3凋亡通路激活有關(guān),但STS僅能部分緩解心肌組織損傷并非完全逆轉(zhuǎn),這可能與藥物劑量有關(guān),也有可能是其它因素造成,還有待后續(xù)深入研究,以期為DCM的治療提供充分的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。