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    茶多酚聯(lián)合順鉑對肺癌細胞A549增殖和凋亡的影響

    2018-10-11 07:04:12王若石蔡鈞
    關(guān)鍵詞:增殖率空白對照肺癌

    王若石,蔡鈞

    (華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院附屬武漢中心醫(yī)院 急診創(chuàng)傷外科,湖北 武漢 430030)

    肺癌是發(fā)病率最高的惡性腫瘤之一,目前居我國惡性腫瘤發(fā)病率的第一位[1],肺癌的治療主要包括手術(shù)、放療、化療及分子靶向治療。非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer, NSCLC)常用的化療藥是順鉑(Cisplatin, DDP),一種細胞周期非特異性細胞毒藥物,主要通過干擾腫瘤細胞的DNA復(fù)制達到抗腫瘤效果,并且與給藥濃度呈正相關(guān),但同時毒性作用也會增加[2-3]。此外,順鉑治療肺癌產(chǎn)生耐藥的研究時有報道[4],因此有必要尋找降低毒副作用、提高治療效果的聯(lián)合用藥方案。

    茶多酚(tea ployphenols, TP),其是一類多羥基酚類化合物,普遍存在于茶葉中,目前學(xué)術(shù)界對它的研究較多,文獻報道其有化療增敏、抑制腫瘤細胞生長、減輕化療藥的毒副作用的功效[5-6]。但茶多酚在肺癌中的報道較少,因此本研究在體外采用TP與DDP聯(lián)合作用于肺癌細胞,以闡明其對肺癌細胞增殖和凋亡能力的作用和影響,探討其對DDP抗腫瘤療效的增敏作用,并初步探討其作用機制,以期為臨床提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑與儀器

    人肺癌細胞系A(chǔ)549購自北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院實驗醫(yī)學(xué)中心,RPMI-1640培養(yǎng)基及胰酶均購自美國Invitrogen公司,MTT試劑盒、二甲亞砜(DMSO)購自美國Invitrogen公司,AnnexinV/PI雙染試劑盒購自南京博泰生物科技有限公司,p-AKT、p-ERK1/2、AKT、ERK1/2抗體購自美國Cell signaling technology公司,HRP標記羊抗兔IgG、HRP標記的羊抗鼠IgG均購于上海碧云天生物技術(shù)研究所,離心機購自日本久保田公司,超凈工作臺購自江蘇蘇凈集團,生化床購自蘇州威爾實驗用品公司,電泳儀、電轉(zhuǎn)儀購自北京市六一儀器廠。

    1.2 方法

    1.2.1 實驗分組 結(jié)合臨床及預(yù)實驗結(jié)果,TP和DDP給藥濃度分別選擇10和5 μg/ml,實驗分為TP組、DDP組、TP聯(lián)合DDP組(TP+DDP組)及空白對照組,空白對照組僅加入等量溶媒。

    1.2.2 細胞培養(yǎng) 將人肺癌細胞系A(chǔ)549細胞,于37℃、5%二氧化碳CO2的條件下,加入RPMI 1640培養(yǎng)基(含10%胎牛血清)中,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞長至融合后,胰酶消化細胞,并待細胞長至對數(shù)期時加入藥物行相關(guān)實驗。

    1.2.3 MTT實驗 細胞增殖率的檢測采用MTT法,選取對數(shù)生長期的細胞,接種于96孔板,按每孔5×103個的數(shù)量接種,每孔100μl。培養(yǎng)條件為:37℃、5%CO2,細胞培養(yǎng)生長至70%,按分組要求給予不同處理藥物,每組設(shè)5個復(fù)孔。藥物作用24 h后,每孔加入5 g/L MTT 20μl,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄去培養(yǎng)液,每孔按150μl的量加入DMSO,在室溫條件下,震蕩10 min,在570 nm處用酶標儀檢測4組細胞的吸光度值(OD值)。細胞增殖率=處理組OD值/對照組OD值×100%。每組實驗重復(fù)3次。

    1.2.4 細胞凋亡檢測 細胞凋亡率的檢測采用流式細胞術(shù),將TP組、DDP組、TP+DDP組及空白對照組4組細胞以每孔5×105個接種于12孔板,在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,收集細胞,4℃離心5 min(1500 r/min),棄上清。用500μl PBS溶液重懸細胞并計數(shù),取1×106個細胞數(shù),加入5μl AnnexinV-FITC并混勻,加入5μl PI并混勻,在2~8℃避光孵育15 min,冰浴避光保存,1 h內(nèi)使用流式細胞儀進行檢測,每組實驗重復(fù)3次。

    1.2.5 Western blot檢測 采用 Western blot檢測p-ERK1/2、p-AKT蛋白的相對表達,裂解4組細胞后,提取4組細胞總蛋白,測定4組蛋白濃度后,定量,上樣,以50μg/孔的標準上樣,常規(guī)濕法轉(zhuǎn)膜,條件:濃縮膠60 mA 50 min、分離膠120 mA 1 min,將凝膠內(nèi)蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜上,放入含50 g/L脫脂奶粉的溶液中封閉1 h,加入p-ERK1/2、p-AKT、GAPDH一抗,濃度為1︰200,在4℃條件下孵育過夜,TBST洗膜3次,每次10 min,加入相應(yīng)的HRP標記的羊抗兔IgG(1︰1000)或HRP標記的羊抗鼠IgG(1︰1000),室溫孵育2 h,TBST洗膜3次,用ECL化學(xué)發(fā)光液在凝膠成像儀中顯色,采用Image J軟件對蛋白條帶進行灰度分析,以p-AKT、p-ERK1/2分別與AKT、ERK1/2條帶灰度的比值表示目的蛋白的相對表達。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

    數(shù)據(jù)分析均采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,多組間的比較采用單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學(xué)意義時,兩兩比較采用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組A549細胞增殖率比較

    MTT示:TP組增殖率為(91.0±3.6)%,DDP組增殖率為(84.3±5.0)%,TP+DDP組增殖率為(70.3±4.2)%,空白對照組增殖率為100%,經(jīng)單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=84.47,P=0.000),TP組、DDP組及TP+DDP組增殖率均低于空白對照組;TP+DDP組細胞增殖率與DDP組比較,經(jīng)LSD-t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=2.398,P=0.002),TP+DDP組低于DDP組(見圖1)。培養(yǎng)第2天開始DDP對細胞A549有抑制作用,且隨著作用時間的延長,生長曲線下降逐漸明顯,TP+DDP組生長曲線下降較DDP組更為明顯,兩者差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)(見圖2)。

    圖1 TP、DDP及兩者聯(lián)用對細胞A549增殖的影響

    2.2 各組細胞凋亡率比較

    流式細胞術(shù)所示,空白對照組總凋亡率為(7.86±0.34)%,DDP組總凋亡率為(18.78±0.62)%,TP組總凋亡率為(5.85±0.41)%,TP+DDP組為(26.46±0.45)%,經(jīng)單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=102.93,P=0.000);DDP組和TP+DDP組總凋亡率與空白對照組比較,經(jīng)LSD-t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),TP+DDP組細胞凋亡率高于TP組(t=8.398,P=0.015),TP組與空白對照組凋亡率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(t=5.839,P=0.265)。見圖3。

    圖2 TP、DDP及兩者聯(lián)合作用下A549細胞的生長曲線

    2.3 p-AKT、p-ERK1/2蛋白表達變化

    空白對照組p-AKT蛋白相對表達為(1.0±0.03),TP 組為(1.0±0.04),DDP 組為(0.79±0.06),TP+DDP組為(0.68±0.02),經(jīng)單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=25.12,P=0.000);DDP組p-AKT蛋白相對表達與空白對照組比較,經(jīng)LSD-t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-5.422,P=0.005),DDP組低于空白對照組;TP+DDP組p-AKT蛋白相對表達與空白對照組比較,經(jīng)LSD-t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-15.372,P=0.000),TP+DDP組低于空白對照組。見圖4。

    空白對照組p-ERK1/2蛋白相對表達為(1.0±0.02),TP 組為(0.98±0.04),DDP 組為(0.82±0.05),TP+DDP 組為(0.65±0.05),經(jīng)單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=35.970,P=0.000);DDP組p-ERK1/2蛋白相對表達與空白對照組比較,經(jīng)LSD-t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-5.789,P=0.004),DDP組低于對照組;經(jīng)LSD-t檢驗,TP+DDP組p-ERK1/2蛋白相對表達與空白對照組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-11.257,P=0.000),TP+DDP組低于空白對照組。見圖4。

    圖4 TP、DDP及兩者聯(lián)用對A549細胞p-ERK1/2及p-AKT蛋白表達的影響

    3 討論

    順鉑是治療非小細胞肺癌的重要藥物,單藥有效率為16%~20%,通常與紫杉醇或長春瑞濱聯(lián)用作為標準一線化療方案[7-8]。但抗腫瘤的化療藥副作用大,引起諸多不良反應(yīng),諸如:脫發(fā)、骨髓抑制、肝腎毒性及胃腸道反應(yīng)等,而且長期使用容易導(dǎo)致耐藥性發(fā)生,進而引起腫瘤復(fù)發(fā)或轉(zhuǎn)移等[9],如何減輕化療藥物的毒性,并增強化療藥物療效成為了腫瘤研究人員關(guān)注的熱點。

    TP作為一種無毒性作用的天然植物提取物,有研究報道,其有一定的抗腫瘤作用,少量的茶多酚作用于前列腺癌、乳腺癌及肺癌細胞可誘導(dǎo)其發(fā)生凋亡[10-12]。本研究發(fā)現(xiàn),低劑量TP作用于A549細胞未能引起細胞凋亡,然而與DDP聯(lián)用卻可以增加A549細胞的凋亡率。細胞凋亡是細胞在受到生理和病理性刺激后出現(xiàn)的一種自發(fā)性死亡過程,在細胞凋亡過程中,半胱氨酸蛋白酶(Caspase)家族發(fā)揮著重要的作用,凋亡信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程被啟動后,半胱氨酸蛋白酶8(Caspase-8)可由酶原變成具有活性的蛋白,并誘導(dǎo)凋亡級聯(lián)反應(yīng)發(fā)生,半胱氨酸蛋白酶3(Caspase-3)是細胞凋亡性死亡的最終執(zhí)行者,它最終被活化為裂解型Caspase-3,能夠直接裂解多個重要的結(jié)構(gòu)與功能蛋白[13-14]。

    細胞凋亡過程可分為3個階段,即起始階段、效應(yīng)階段和凋亡執(zhí)行階段,機體內(nèi)存在多種因素影響著細胞凋亡的過程。

    絲裂素活化蛋白激酶家族(mitogen-activated protein kinases, MAPKs)在信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中的作用越來越受到關(guān)注,它可以調(diào)節(jié)細胞各種生理過程,包括炎癥、應(yīng)激、生長發(fā)育、分化與死亡[15]。MAPK信號通路包括細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK1/2)、Jun氨基末端激酶(JNK)、p38蛋白和細胞外信號調(diào)節(jié)激酶5(ERK5)途徑,其中ERK通路在細胞增殖、分化和凋亡過程中發(fā)揮著重要作用,它可在上游因子MEK的作用下發(fā)生磷酸化而激活[16-17]。

    ERK通路與PI3K/AKT通路存在密切的聯(lián)系,ZHANG等[18]證明ERK通路與AKT通路有交互作用,他們發(fā)現(xiàn)抑制Hela細胞ERK的活化,可引起mTOR的激活,而PI3K/AKT信號通路的激活可阻斷該過程所致mTOR的活化。PI3K信號通路可調(diào)控著諸如細胞凋亡、分裂、分化等多種生物學(xué)過程。絲氨酸/蘇氨酸AKT,又稱蛋白激酶B,為其直接靶作用蛋白,可誘導(dǎo)細胞增殖和凋亡的發(fā)生。在PI3K的作用下,AKT發(fā)生磷酸化而被激活,從而作用于多種底物來調(diào)節(jié)細胞的生存、增殖和代謝[19]。

    本研究發(fā)現(xiàn)在肺癌細胞A549中,TP與DDP聯(lián)合后可顯著增強DDP的抗腫瘤效應(yīng),MTT法檢測結(jié)果顯示DDP組的細胞活力為(84.3±5.0)%,而TP+DDP組的細胞活力僅為(70.3±4.2)%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義,TP組的細胞增殖僅有輕度抑制,因此TP與DDP聯(lián)合可明顯提高DDP對細胞A549增殖的抑制作用。流式細胞術(shù)測定凋亡發(fā)現(xiàn),TP對細胞凋亡作用不明顯,無顯著影響。DDP組與空白對照組比較,細胞凋亡率升高,而TP+DDP組細胞凋亡率高于TP組,說明TP可促進DDP對肺癌細胞A549的毒性作用。Western blot檢測AKT和ERK1/2的磷酸化水平發(fā)現(xiàn),DDP組與TP+DDP組細胞中p-AKT和p-ERK1/2蛋白表達均降低,并且TP+DDP組細胞中p-ERK1/2和p-AKT蛋白表達低于DDP組,而TP組對p-ERK1/2和p-AKT蛋白表達均無明顯影響。

    綜合以上結(jié)果,說明DDP可抑制A549細胞增殖,并且可引起細胞凋亡,但低劑量TP對A549細胞的增殖僅有輕微抑制作用,并且對細胞凋亡無明顯影響,而TP與DDP聯(lián)合應(yīng)用卻可使細胞增殖率大幅降低,并使細胞凋亡率明顯升高,同時TP與DDP聯(lián)用對ERK1/2和AKT蛋白磷酸化的抑制作用也明顯增加,說明TP可增強DDP的抗腫瘤作用,其機制可能與抑制AKT和ERK1/2蛋白磷酸化有關(guān)。

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