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    微小隱孢子蟲黏蛋白CGD5_2060原核表達(dá)及其黏附功能

    2018-05-11 08:18:27陽毅敏潘靈韜莊浩瀚孫洪超楊怡陳學(xué)秋杜愛芳
    關(guān)鍵詞:印跡孢子質(zhì)粒

    陽毅敏,潘靈韜,莊浩瀚,孫洪超,楊怡,陳學(xué)秋,杜愛芳

    (浙江大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院動(dòng)物預(yù)防醫(yī)學(xué)研究所,杭州310058)

    隱孢子蟲是一種可以引起嚴(yán)重腹瀉疾病的頂復(fù)門寄生蟲,在世界范圍內(nèi)分布廣泛[1]。隱孢子蟲病流行于許多資源匱乏的國家,并且可以在工業(yè)化國家娛樂用水中爆發(fā)[2]。該疾病自限于免疫健全的宿主,但可使免疫力低下的個(gè)體虛弱,甚至致命,尤其是在資源有限地區(qū)未經(jīng)治療的艾滋病患者[3]和營養(yǎng)不良的兒童[1]。隱孢子蟲是亞洲和非洲幼兒大多數(shù)中到重度腹瀉病的4種病原體之一,是造成這些兒童腹瀉和死亡的第2大病因[4]。盡管如此,目前仍缺乏有效的治療措施[5],因此迫切需要鑒定出能夠開發(fā)新型干預(yù)措施的分子靶點(diǎn)。

    參與介導(dǎo)隱孢子蟲和宿主細(xì)胞相互作用的蛋白質(zhì)是干預(yù)隱孢子蟲病的潛在靶標(biāo),但是已被表征的很少。隱孢子蟲在體外難以繁殖和進(jìn)行遺傳操作,阻礙了新分子靶標(biāo)的發(fā)現(xiàn)和驗(yàn)證[6-7]。盡管如此,許多研究已經(jīng)證明,黏蛋白樣糖蛋白和凝集素在介導(dǎo)體外和體內(nèi)隱孢子蟲感染中發(fā)揮了重要的作用[8-9]。隱孢子蟲黏附和入侵過程的特征表明,這種寄生蟲可能遵循所發(fā)現(xiàn)的其他頂復(fù)門寄生蟲黏附和入侵的機(jī)制[10]。在與宿主細(xì)胞接觸后,特有的頂端復(fù)合體細(xì)胞器(棒狀體、致密顆粒和微線體)釋放參與宿主細(xì)胞識(shí)別和黏附的抗原,入侵并形成納蟲空泡[11]。與其他頂復(fù)門原蟲不同的是,黏蛋白樣糖蛋白可能參與了隱孢子蟲的這些過程。黏蛋白是由20%~55%絲氨酸、蘇氨酸和脯氨酸殘基組成的糖蛋白,由于絲氨酸和蘇氨酸殘基的這種廣泛的O端糖基化,蛋白分子質(zhì)量的40%~80%由O端相連的糖類組成[12]。本試驗(yàn)通過對(duì)黏蛋白cgd5_2060基因克隆表達(dá)后,進(jìn)行細(xì)胞黏附功能的初步研究,為進(jìn)一步揭示其參與微小隱孢子蟲(Cryptosporidium parvum)入侵宿主細(xì)胞的作用機(jī)制提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 主要材料與試劑

    6~8周雌性ICR小鼠購自浙江省醫(yī)學(xué)科學(xué)院。微小隱孢子蟲卵囊由河南農(nóng)業(yè)大學(xué)張龍現(xiàn)教授惠贈(zèng),由本實(shí)驗(yàn)室保存??寺≥d體pMD18-T購自寶生物工程(大連)有限公司,表達(dá)載體pET-32a、大腸埃希菌Escherichia coli TOP10、E.coli Rosetta、Caco2細(xì)胞等均由本實(shí)驗(yàn)室保存。鎳瓊脂糖凝膠FF購自北京韋氏博慧色譜科技有限公司;蛋白質(zhì)標(biāo)志物購自美國Thermo Fisher科技公司;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜購自美國Millipore公司;抗His標(biāo)簽鼠源單克隆抗體、HRP標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG抗體購自美國Sigma公司。

    1.2 基因擴(kuò)增和克隆

    根據(jù)微小隱孢子蟲cgd5_2060的基因序列(GenBank:XM_626146.1),用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物,并在上下游引物的5'端分別引入Bam HⅠ和SalⅠ的酶切位點(diǎn),序列如下。F1:5′-CG ggatccATGAAGTTCATAAGATTTGGTTT-3′;R1:5′-GCgtcgacTTATTCAGAATCTTCATCCTGG-3′。設(shè)計(jì)完成后由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。用TRIzol試劑(購自美國Invitrogen公司)提取微小隱孢子蟲卵囊總RNA后,按照PrimeScript?RT試劑盒(購自日本TaKaRa公司)說明書反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,用合成的引物進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增。PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃預(yù)變性3 min;94℃變性15 s,58℃退火15 s,72℃延伸2 min,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后,按照凝膠回收試劑盒(購自美國Axygen公司)說明書進(jìn)行回收,回收產(chǎn)物與pMD18-T載體連接并轉(zhuǎn)化至大腸埃希菌TOP10中,菌液經(jīng)PCR鑒定后,陽性樣品由鉑尚生物技術(shù)(上海)有限公司進(jìn)行測(cè)序分析。

    1.3 基因的序列比對(duì)及生物信息學(xué)分析

    用MegAlign軟件將測(cè)序反饋的結(jié)果與在GenBank中已登錄的隱孢子蟲cgd5_2060基因序列進(jìn)行比對(duì)分析。使用SignalP4.1軟件預(yù)測(cè)CGD5_2060蛋白是否具有信號(hào)肽,是否為分泌型蛋白。使用PROSITE數(shù)據(jù)庫對(duì)CGD5_2060蛋白的功能性基序進(jìn)行預(yù)測(cè),并用軟件DOG 1.0[13]繪制其結(jié)構(gòu)示意圖。

    1.4 原核表達(dá)重組質(zhì)粒的構(gòu)建

    對(duì)蛋白CGD5_2060進(jìn)行序列分析的結(jié)果表明,其前19個(gè)氨基酸為信號(hào)肽區(qū)域,為分泌型蛋白。信號(hào)肽對(duì)其在進(jìn)行原核表達(dá)時(shí)會(huì)有一定的影響,據(jù)此設(shè)計(jì)去信號(hào)肽引物,并在上下游引物的5'端分別引入Bam HⅠ和SalⅠ的酶切位點(diǎn),序列如下。F2:5′-CGggatccaatggggaaaacAGTATTTCTTT-3′;R2:5′-GCgtcgacTTATTCAGAATCTTCATCCT-3′。設(shè)計(jì)完成后由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。用上述引物通過PCR擴(kuò)增測(cè)序正確的質(zhì)粒,電泳后回收PCR產(chǎn)物并連接至pMD18-T載體上,隨后轉(zhuǎn)化到大腸埃希菌TOP10內(nèi),挑取單菌落進(jìn)行PCR鑒定和測(cè)序分析。用限制性內(nèi)切酶Bam HⅠ和SalⅠ對(duì)測(cè)序正確的質(zhì)粒pMD18TS-cgd5_2060和表達(dá)載體pET-32a進(jìn)行雙酶切,電泳后分別回收雙酶切產(chǎn)物,用T4 DNA連接酶連接2種產(chǎn)物后轉(zhuǎn)化入E.coli Rosetta中,挑取單菌落進(jìn)行PCR鑒定,提取陽性菌的質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定,測(cè)序正確后進(jìn)行保種,將菌命名為pET32a-cgd5_2060-Rosetta。同時(shí),將pET32a空載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至E.coli Rosetta中,挑取單菌落,命名為pET32a-Rosetta。

    1.5 重組蛋白的表達(dá)和純化

    將菌液pET32a-cgd5_2060-Rosetta和pET32a-Rosetta按照1∶100接種于5 mL含氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37℃、190 r/min培養(yǎng)過夜,然后按照1∶50接種至新鮮的5 mL氨芐抗性LB液體培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)至λ(600 nm)=0.6(約2.5 h),加入終濃度為0.5 mmol/L的異丙基硫代半乳糖苷(isopropylβ-D-thiogalactoside,IPTG),在37 ℃下進(jìn)行誘導(dǎo),在不同時(shí)間點(diǎn)取樣,收集菌體后,進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰氨凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)分析。將蛋白表達(dá)成功的菌液過夜培養(yǎng)后按照1∶50接種至新鮮的300 mL含氨芐抗性的LB液體培養(yǎng)基中,37℃、190 r/min搖床培養(yǎng)至λ(600 nm)=0.6(約2.5 h),添加終濃度為0.1 mmol/L的IPTG,16℃低溫誘導(dǎo)12 h,菌液經(jīng)8 000 r/min離心5 min,按照鎳瓊脂糖凝膠FF說明書對(duì)表達(dá)的重組蛋白和載體蛋白進(jìn)行純化。

    1.6 多克隆抗體的制備

    采用SDS-PAGE方法對(duì)純化的重組蛋白CGD5_2060進(jìn)行鑒定,用考馬斯亮藍(lán)法(Bradford法)測(cè)定重組蛋白的濃度。將純化的重組蛋白CGD5_2060作為抗原免疫6~8周雌性ICR小鼠。首次免疫采用弗氏完全佐劑乳化(50μg/只),之后的免疫均用弗氏不完全佐劑乳化(25μg/只)。免疫前對(duì)每只小鼠采血作為陰性對(duì)照,采取皮下多點(diǎn)注射法免疫,首次免疫后14 d進(jìn)行第二次免疫,二免后10 d進(jìn)行第三次免疫,三免后7 d采小鼠尾靜脈血,用間接酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(enzyme-linked immuno-sorbent assay,ELISA)法檢測(cè)其血清抗體的效價(jià),達(dá)到目標(biāo)后即進(jìn)行眼眶后靜脈叢采血,收集血清。

    1.7 重組蛋白的蛋白質(zhì)印跡法鑒定

    通過蛋白質(zhì)印跡法對(duì)純化的重組蛋白CGD5_2060進(jìn)行分析,一抗為抗His標(biāo)簽鼠源單克隆抗體,稀釋倍數(shù)為1∶1 000,二抗為HRP-羊抗小鼠IgG,稀釋倍數(shù)為1∶5 000,用增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光法(enhanced chemiluminescence,ECL)進(jìn)行顯色。同時(shí),對(duì)制備的鼠抗CGD5_2060血清進(jìn)行蛋白質(zhì)印跡法鑒定,一抗為1.6節(jié)中收集的血清,稀釋倍數(shù)為1∶2 000。

    1.8 重組蛋白與Caco2細(xì)胞黏附特性的檢測(cè)

    1.8.1 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)

    參照文獻(xiàn)[14]中的細(xì)胞結(jié)合實(shí)驗(yàn)進(jìn)行蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)。即先將Caco2細(xì)胞經(jīng)胰酶消化后吹打分散成單個(gè)細(xì)胞,鋪至6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),密度達(dá)80%~90%后,加入預(yù)熱至37℃的含1 mmol/L CaCl2、0.5 mmol/L MgCl2和2%胎羊血清的1640,于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中封閉30 min。用含1 mmol/L CaCl2、0.5 mmol/L MgCl2的1640洗滌2次后,將1 mL稀釋至約200μg/mL的重組蛋白CGD5_2060和載體對(duì)照蛋白加入相應(yīng)的孔中,孵育2 h。孵育后用含1 mmol/L CaCl2、0.5 mmol/L MgCl2的1640洗去未結(jié)合的蛋白質(zhì)。收集細(xì)胞制成蛋白樣品,用抗His標(biāo)簽鼠源單克隆抗體作為一抗,堿性磷酸酶標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG作為二抗進(jìn)行蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè),觀察蛋白與細(xì)胞的黏附情況。

    1.8.2 間接ELISA檢測(cè)

    參照文獻(xiàn)[15]中的方法進(jìn)行間接ELISA檢測(cè)。即先將Caco2細(xì)胞經(jīng)胰酶消化后吹打分散成單個(gè)細(xì)胞,鋪至96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至單層后進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。用含1%戊二醛的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS),每孔50μL,室溫固定30 min。用含5%胎羊血清的PBS,每孔150μL,室溫封閉4 h。將用含1 mmol/L CaCl2、0.5 mmol/L MgCl2和0.1%胎羊血清的PBS稀釋成不同濃度的重組蛋白CGD5_2060,加入至細(xì)胞培養(yǎng)板中,每孔100μL,每個(gè)稀釋倍數(shù)3個(gè)重復(fù),載體對(duì)照蛋白作相同處理??笻is標(biāo)簽鼠源單克隆抗體作為一抗,堿性磷酸酶標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG作為二抗,進(jìn)行間接ELISA測(cè)定,檢測(cè)蛋白與細(xì)胞的黏附情況。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 目的基因的擴(kuò)增與克隆

    以微小隱孢子蟲cDNA為模板,使用設(shè)計(jì)的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,獲得的特異性片段長度為1 854 bp(圖略)。

    2.2 序列分析

    用MegAlign軟件將測(cè)序所得序列與在GenBank中登錄的隱孢子蟲cgd5_2060序列進(jìn)行比對(duì)分析。結(jié)果顯示,基因核苷酸序列同源性為99.9%,氨基酸序列同源性為100%。使用SignalP 4.1軟件分析的結(jié)果表明,CGD5_2060的1~19個(gè)氨基酸是其信號(hào)肽,說明該蛋白是分泌型蛋白。使用PROSITE數(shù)據(jù)庫分析發(fā)現(xiàn):CGD5_2060含有1個(gè)富含蘇氨酸的區(qū)域TTTTTTKSTTTTTTAVTT,位于第510~527個(gè)氨基酸處;此外,還有1個(gè)與細(xì)胞黏附有關(guān)的序列RGD,位于第69~71個(gè)氨基酸處,用DOG 1.0軟件繪制的蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)域示意圖如圖1所示。

    圖1 CGD5_2060蛋白結(jié)構(gòu)示意圖Fig.1 Structural schematic diagram of CGD5_2060 protein

    2.3 原核表達(dá)重組質(zhì)粒的構(gòu)建分析

    對(duì)重組克隆質(zhì)粒pMD18TS-cgd5_2060進(jìn)行Bam HⅠ和SalⅠ雙酶切,可見預(yù)期大小的載體條帶和目的基因條帶(圖2A)。將pMD18TS-cgd5_2060雙酶切回收產(chǎn)物與pET32a表達(dá)載體雙酶切回收產(chǎn)物連接轉(zhuǎn)化后,挑取單克隆菌落進(jìn)行PCR鑒定(圖2B),重組質(zhì)粒pET32a-cgd5_2060經(jīng)Bam HⅠ和SalⅠ雙酶切后,可見大小約為1 788 bp的目的條帶及5 900 bp左右的載體條帶(圖2C),與預(yù)期一致。測(cè)序后與GenBank公布的序列進(jìn)行比對(duì),氨基酸同源性為100%,表明cgd5_2060基因已成功插入pET32a中,重組原核表達(dá)質(zhì)粒構(gòu)建正確。

    2.4 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)、純化及蛋白質(zhì)印跡法分析

    2.4.1 重組質(zhì)粒pET32a-cgd5_2060的誘導(dǎo)表達(dá)

    將含有質(zhì)粒pET32a-cgd5_2060和pET32a的Rosetta大腸埃希菌經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達(dá)后,進(jìn)行SDSPAGE電泳分析。結(jié)果顯示,在約87和22 kDa處有表達(dá)目的蛋白的趨勢(shì),與理論推算的蛋白產(chǎn)物相對(duì)分子質(zhì)量相符(圖3)。隨著誘導(dǎo)時(shí)間的延長,蛋白表達(dá)量升高,且在6 h達(dá)到較高水平。

    2.4.2 蛋白純化

    蛋白經(jīng)大量誘導(dǎo)表達(dá)后,于8 000 r/min、4℃下離心5 min,向菌體沉淀中加入50 mmol/L PBS(Na2HPO4·12H2O 1.45 g,NaCl 2.93 g,NaH2PO4·2H2O 0.148 g,加雙蒸水至100 mL,調(diào)節(jié)pH至7.4)充分溶解,經(jīng)超聲波裂解、離心后,按照鎳瓊脂糖凝膠柱說明書進(jìn)行蛋白純化,并對(duì)純化后的處理樣品進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析。結(jié)果(圖4)顯示,2種蛋白均可由含250 mmol/L咪唑的PBS洗脫,效果很好。純化后的蛋白經(jīng)透析、超濾濃縮后,測(cè)定其重組蛋白CGD5_2060和載體對(duì)照蛋白的質(zhì)量濃度分別為1.5和2.1 mg/mL。

    圖2 重組質(zhì)粒的鑒定Fig.2 Identification of recombinant plasmid

    圖4 蛋白的純化Fig.4 Purification of proteins

    2.4.3 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)結(jié)果

    以抗His標(biāo)簽鼠源單克隆抗體為一抗進(jìn)行蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)。結(jié)果(圖5)顯示,重組蛋白CGD5_2060和載體對(duì)照蛋白均可與His標(biāo)簽鼠源單克隆抗體特異性結(jié)合,且大小與預(yù)期相符,說明得到的蛋白正確。

    2.5 抗體效價(jià)的間接ELISA檢測(cè)及蛋白質(zhì)印跡法分析

    以重組蛋白CGD5_2060作為抗原免疫6~8周雌性ICR小鼠3次后,收集血清,進(jìn)行倍比稀釋,從1∶2 000至1∶2 048 000,并設(shè)置陰性對(duì)照和空白對(duì)照。間接ELISA檢測(cè)結(jié)果顯示,最后所得的血清抗體效價(jià)為1∶512 000~1∶1 024 000。將所得的血清與重組蛋白進(jìn)行蛋白質(zhì)印跡法分析,結(jié)果(圖6)顯示,制備的多克隆抗體可以與重組蛋白特異性結(jié)合。

    圖5 純化后蛋白的蛋白質(zhì)印跡法分析Fig.5 Western blotting analysisof purified proteins

    圖6 小鼠多抗與重組蛋白的蛋白質(zhì)印跡法分析Fig.6 Western blotting analysis of mouse polyclonal antibody against purified proteins

    2.6 重組蛋白與Caco2細(xì)胞黏附的檢測(cè)結(jié)果

    對(duì)照蛋白和重組蛋白CGD5_2060與Caco2細(xì)胞孵育后,蛋白質(zhì)印跡法分析結(jié)果(圖7)顯示:最后一次洗滌兩者相對(duì)應(yīng)的位置均沒有出現(xiàn)條帶,說明最后一次洗滌已經(jīng)將所有未結(jié)合的蛋白全部洗凈;而在最后收集的細(xì)胞裂解液中,重組蛋白CGD5_2060在其相應(yīng)位置出現(xiàn)條帶,且對(duì)照蛋白相應(yīng)位置沒有條帶,說明CGD5_2060重組蛋白能黏附Caco2細(xì)胞。將不同濃度稀釋的2種蛋白與Caco2細(xì)胞孵育后進(jìn)行間接ELISA檢測(cè),結(jié)果(圖8)顯示,對(duì)照蛋白對(duì)Caco2細(xì)胞沒有黏附作用,而重組蛋白可以與Caco2細(xì)胞黏附,其結(jié)合量在一定范圍內(nèi)隨著蛋白濃度的增加而增加,隨后基本趨于穩(wěn)定。

    圖7 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)重組蛋白與Caco2細(xì)胞黏附特性的結(jié)果Fig.7 Western blot ting analysis of the recombinant protein CGD5_2060 adhering to Caco2 cells

    圖8 間接ELISA檢測(cè)重組蛋白與Caco2細(xì)胞黏附特性的結(jié)果Fig.8 Indirect ELISA analysis of the recombinant protein CGD5_2060 adhering to Caco2 cells

    3 討論

    盡管隱孢子蟲具有重要的公共衛(wèi)生學(xué)意義,但是很少有探究這種病原體與宿主的相互作用,并且僅很少的寄生蟲抗原被表征。然而,已經(jīng)被充分研究涉及宿主細(xì)胞侵入過程的抗原,均顯示或被預(yù)測(cè)具有黏蛋白型O-糖基化。隱孢子蟲基因組含有31個(gè)編碼推測(cè)為黏蛋白抗原的開放性閱讀框,這進(jìn)一步突出了這類抗原在隱孢子蟲與宿主相互作用中的重要性。迄今為止,被確定在隱孢子蟲黏附和入侵過程中不可或缺的4種抗原都是糖蛋白,包 括 CSL[16]、GP900[17]、GP40/15[18]和 P23[19]。GP900和GP40/15都是黏蛋白樣糖蛋白,而P23預(yù)測(cè)含有黏蛋白型O-糖基化位點(diǎn)。

    本研究從微小隱孢子蟲cDNA中克隆獲得了1個(gè)黏蛋白基因cgd5_2060,并對(duì)其蛋白功能相關(guān)基序進(jìn)行了預(yù)測(cè)。結(jié)果表明,該蛋白的1~19個(gè)氨基酸可能為信號(hào)肽,屬于分泌型蛋白。在PROSITE數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行比對(duì)分析發(fā)現(xiàn):CGD5_2060蛋白含有1個(gè)富含蘇氨酸的區(qū)域TTTTTTKSTTTTTTAVTT,位于510~527個(gè)氨基酸處,屬于黏蛋白樣結(jié)構(gòu)域;此外,還有1個(gè)與細(xì)胞黏附有關(guān)的氨基酸序列,由3個(gè)氨基酸組成,分別為精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD),位于69~71個(gè)氨基酸處。對(duì)CGD5_2060蛋白功能相關(guān)基序的預(yù)測(cè)結(jié)果表明,cgd5_2060基因可能與微小隱孢子蟲黏附宿主細(xì)胞相關(guān)。

    本研究成功構(gòu)建了原核表達(dá)載體pET32acgd5_2060,并在大腸埃希菌Rosetta中成功表達(dá)了該重組蛋白,位于菌體超裂后的上清液中。通過鎳柱親和層析法獲得了較高質(zhì)量的重組蛋白CGD5_2060,免疫ICR小鼠獲得了高效價(jià)的多克隆抗體,為進(jìn)一步研究CGD5_2060蛋白在蟲體不同階段中的定位,以及該多抗對(duì)蟲體黏附、入侵和增殖的影響提供了材料。

    微小隱孢子蟲依賴黏蛋白抗原黏附和入侵宿主細(xì)胞,而Caco2細(xì)胞系是隱孢子蟲研究中常用的細(xì)胞系。本研究將純化的重組蛋白與Caco2細(xì)胞共孵育,通過蛋白質(zhì)印跡法和間接ELISA法檢測(cè)了其與宿主細(xì)胞的黏附能力。蛋白質(zhì)印跡法分析結(jié)果表明,CGD5_2060重組蛋白可以黏附Caco2細(xì)胞。間接ELISA檢測(cè)表明,不同濃度稀釋的重組蛋白與Caco2細(xì)胞孵育后,其結(jié)合量在一定范圍內(nèi)隨著蛋白濃度的增加而增加,隨后基本趨于穩(wěn)定。

    本研究初步驗(yàn)證了cgd5_2060是隱孢子蟲感染時(shí)重要的黏蛋白基因。后續(xù)利用抗體體外阻斷實(shí)驗(yàn)和建立微小隱孢子蟲cgd5_2060基因敲除株,對(duì)于研究該基因在蟲體黏附、入侵過程中發(fā)揮的作用及其介導(dǎo)黏附的機(jī)制,理解隱孢子蟲的生物學(xué)特性及開發(fā)疫苗具有重要意義。

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    托架沿Z向運(yùn)動(dòng),通過激光跟蹤儀測(cè)量定位器1~4的z向移動(dòng)副上的任一定點(diǎn)的空間位置變化,可求解矩陣T中第8、14、17、20列對(duì)應(yīng)的結(jié)構(gòu)誤差;托架繞S1S4旋轉(zhuǎn),測(cè)量定位器2的x向移動(dòng)副上任一定點(diǎn)的空間位置變化,可以計(jì)算矩陣T中第9列對(duì)應(yīng)的結(jié)構(gòu)誤差。

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