楊宵玥,陳 玲,宋亞芬,蔣桃珍
(中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京 100081)
雞傳染性法氏囊病(IBD)是由傳染性法氏囊病病毒(IBDV)引起的急性、高度接觸性傳染病,主要感染3~6周齡雛雞[1]。法氏囊為IBDV的靶器官,法氏囊內(nèi)未成熟的B淋巴細(xì)胞為病毒增殖的靶細(xì)胞,病毒感染后可導(dǎo)致細(xì)胞和細(xì)胞核碎裂、細(xì)胞壞死、凋亡等,造成機(jī)體B淋巴細(xì)胞大量減少,破壞機(jī)體正常免疫應(yīng)答能力[2]。因此,易感雞群感染后除導(dǎo)致發(fā)病死亡外,還可引起免疫抑制,增加機(jī)體對(duì)其他病原的易感性,引起繼發(fā)感染[3]。
疫苗接種是養(yǎng)禽業(yè)預(yù)防IBD流行的最主要措施。目前應(yīng)用最為廣泛的疫苗主要是傳統(tǒng)弱毒活疫苗和滅活疫苗[4]。利用活疫苗進(jìn)行接種可誘導(dǎo)雞群在較短時(shí)間內(nèi)產(chǎn)生主動(dòng)免疫,但由于其易受母源抗體(MDA)的干擾,往往在不同雞群或同一雞群不同個(gè)體間產(chǎn)生不同的免疫效果,有時(shí)還可導(dǎo)致免疫失敗。因此,為了達(dá)到更好的免疫效果,臨床上往往會(huì)使用一些毒力偏強(qiáng)的商品化疫苗,但使用后會(huì)引起法氏囊組織損傷,導(dǎo)致免疫抑制,同時(shí)也帶來(lái)毒力返強(qiáng)和散毒等生物安全風(fēng)險(xiǎn)[5]。此外,由于大多數(shù)商品化的IBDV活疫苗都是基于經(jīng)典毒株研制的,對(duì)臨床流行的IBDV超強(qiáng)毒株或變異株感染的雞不能產(chǎn)生完全保護(hù)。與弱毒疫苗相比,滅活疫苗更加安全,但免疫效果低于活疫苗,并且需要反復(fù)多次加強(qiáng)免疫,導(dǎo)致免疫成本增加,因此,迫切需要研究與流行毒株完全匹配的新型疫苗。許多研究已經(jīng)表明,IBDV抗原性主要取決于A節(jié)段上VP2基因,其編碼的VP2蛋白是唯一能誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生中和抗體的蛋白[6]。因此,以病毒VP2基因?yàn)榘心繕?biāo),結(jié)合已有的分子生物學(xué)技術(shù)和DNA重組技術(shù)開(kāi)展新型疫苗研究已成為IBD疫苗研究的主要發(fā)展方向。
近年來(lái),由于對(duì)IBDV基因組A、B節(jié)段的研究不斷深入,其細(xì)胞嗜性、毒力、復(fù)制等重要性狀的分子基礎(chǔ)已獲得較為明確的結(jié)論[7-9]。VP2高變區(qū)內(nèi)222A、256I、279D、284A、294I和299S等氨基酸位點(diǎn)與IBDV毒力有關(guān)。利用反向遺傳技術(shù),對(duì)毒株進(jìn)行基因突變或缺失,可以獲得能與田間流行毒株抗原相匹配、又不會(huì)對(duì)法氏囊導(dǎo)致病理?yè)p傷的IBDV弱毒疫苗。高立等[10]將流行毒株HLJ0504的VP2基因253和284位氨基酸進(jìn)行突變后,將其替換Gt弱毒株VP2相應(yīng)片段,利用RNA聚合酶II拯救出嵌合病毒rGtVP2株,用rGtVP2免疫SPF雞后,其產(chǎn)生的抗體滴度明顯高于親本株Gt株。祁小樂(lè)等[11]通過(guò)對(duì)vvIBDV VP2基因的主要毒力位點(diǎn)進(jìn)行三點(diǎn)突變,使得病毒毒力致弱,不僅致死率降為零,而且感染雞的法氏囊沒(méi)有出現(xiàn)明顯萎縮和損傷,與強(qiáng)毒株相比,拯救毒可適應(yīng)CEF,對(duì)雞無(wú)致病性,且能夠獲得良好的免疫效果。秦立廷等[12]以中等毒力毒株為骨架構(gòu)建的VP5基因缺失病毒,對(duì)雞的致病力顯著降低,免疫后能刺激機(jī)體產(chǎn)生較高滴度的抗體和較好的免疫保護(hù)。因此,通過(guò)基因突變或替換,可以在較短時(shí)間內(nèi)將田間流行毒株致弱成可以商品化使用的疫苗株,確保疫苗免疫保護(hù)性抗原與田間流行毒株一致,提高疫苗臨床應(yīng)用后的免疫保護(hù)效果。盡管該類(lèi)疫苗似乎有更好的臨床應(yīng)用前景,但至目前為止,還沒(méi)有商品化的疫苗上市。
VP2蛋白是IBDV的主要保護(hù)性抗原,具有中和活性。由于其具有良好的免疫原性和穩(wěn)定性,是IBD亞單位疫苗研究的重點(diǎn)。構(gòu)建表達(dá)VP2亞單位蛋白的系統(tǒng)主要有大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)[13]、酵母系統(tǒng)[14]和桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)[15]。在原核表達(dá)系統(tǒng)中,可利用含特殊密碼子的宿主菌BL21 PLUS或去除VP2基因N端親水區(qū),提高表達(dá)蛋白量[16],因此采用大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)生產(chǎn)亞單位疫苗,相比全病毒滅活疫苗而言,生產(chǎn)成本低且無(wú)潛在的生物安全風(fēng)險(xiǎn)。目前國(guó)內(nèi)已有多個(gè)商品化疫苗上市,但國(guó)外還沒(méi)有商品化的VP2亞單位疫苗。由于VP2的抗原中和表位具有構(gòu)象依賴(lài)性,大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)無(wú)法對(duì)VP2蛋白進(jìn)行加工、修飾,利用該系統(tǒng)表達(dá)的VP2蛋白免疫雞群后誘導(dǎo)產(chǎn)生的中和抗體水平明顯低于全病毒滅活疫苗。由于真核表達(dá)系統(tǒng)可對(duì)表達(dá)的重組蛋白正確折疊,通過(guò)真核生物系統(tǒng)表達(dá)的VP2蛋白可能比原核系統(tǒng)的表達(dá)產(chǎn)物有更好的免疫原性,Liu等[17]利用桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng),將VP2蛋白與能夠增強(qiáng)免疫的雞IL-2進(jìn)行融合表達(dá),結(jié)果表明,融合蛋白比單獨(dú)使用VP2提供了更好的保護(hù),提高了亞單位疫苗的免疫原性,但目前為止,還沒(méi)有該類(lèi)商品化的VP2亞單位疫苗。此外,也有嘗試?yán)弥参锉磉_(dá)系統(tǒng)研制適用于口服的亞單位疫苗,如吳建祥等[18]用IBDV的VP2基因和擬南芥成功構(gòu)建轉(zhuǎn)基因植物表達(dá)系統(tǒng),為亞單位疫苗研究帶來(lái)新思路。
免疫學(xué)的研究表明,在對(duì)某種外來(lái)抗原的免疫應(yīng)答過(guò)程中,最初產(chǎn)生的特異性抗體與該抗原結(jié)合后,可形成一種免疫復(fù)合物。由于復(fù)合物中抗體分子的Fc片段與抗原遞呈細(xì)胞的Fc受體有很高的親和性,使得與抗體結(jié)合的抗原更易有效地與遞呈細(xì)胞結(jié)合。一旦抗原-抗體復(fù)合物被遞呈細(xì)胞吞噬和內(nèi)質(zhì)化,即可激活并刺激B淋巴細(xì)胞成為抗體分泌細(xì)胞,從而引起強(qiáng)烈的體液免疫反應(yīng)。已有研究表明,在體外構(gòu)成的免疫復(fù)合物對(duì)機(jī)體所刺激的體液免疫反應(yīng)是自然抗原的100倍。將IBDV疫苗株與高免血清特異性結(jié)合制備的IBDV免疫復(fù)合物(Icx)疫苗是依據(jù)這一原理研制成功的商品化疫苗[19],該復(fù)合物能延遲病毒在雞體內(nèi)的復(fù)制,當(dāng)母源抗體降低到一定水平時(shí),IBDV-Icx中的病毒開(kāi)始釋放復(fù)制并產(chǎn)生免疫保護(hù)力[20]。其主要優(yōu)勢(shì)在于不受母源抗體干擾,可用于胚內(nèi)免疫,且免疫效果優(yōu)于常規(guī)病毒活疫苗。章振華等[21]用雞傳染性法氏囊病免疫復(fù)合物疫苗和活疫苗分別免疫1日齡SPF雛雞,9 d后發(fā)現(xiàn),免疫復(fù)合物疫苗組雞法氏囊正常,弱毒活疫苗組雞法氏囊全部明顯萎縮,免疫21 d和28 d后,疫苗免疫組均100%保護(hù)。另有研究發(fā)現(xiàn),雞胚接種IBDV-Icx疫苗后,在脾臟內(nèi)發(fā)現(xiàn)更多的生發(fā)中心,大量的IBDV被局限在脾臟和粘液樣的樹(shù)突細(xì)胞內(nèi)[5],減少了病毒在體內(nèi)其他組織中的復(fù)制,降低了疫苗免疫后對(duì)外排毒量,從而也降低了疫苗毒釋放至環(huán)境中與野毒重組的可能,進(jìn)一步減少了活疫苗使用后可能存在的生物安全風(fēng)險(xiǎn)。
自從上個(gè)世紀(jì)90年代初研究發(fā)現(xiàn),編碼具有免疫原性蛋白的裸DNA進(jìn)入宿主細(xì)胞后可以誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生對(duì)特定病原體的免疫應(yīng)答,DNA疫苗就迅速成為研究熱點(diǎn),尤其是對(duì)于一些體外難以培養(yǎng)的病原體,研制DNA疫苗似乎比研究其他類(lèi)型疫苗更有發(fā)展前景。國(guó)外已有商品化的DNA疫苗,如美國(guó)已批準(zhǔn)了用于預(yù)防大馬哈魚(yú)傳染性造血組織壞死病的DNA疫苗,中國(guó)農(nóng)科院哈爾濱獸醫(yī)研究所已研制成功高致病性禽流感(H5亞型)DNA疫苗[22]。由于DNA疫苗不受母源抗體干擾,且穩(wěn)定性好,甚至保藏運(yùn)輸可以不需要冷鏈等潛在優(yōu)勢(shì)[23],目前已有許多關(guān)于雞傳染性法氏囊病DNA疫苗的研究報(bào)道。Satya等[24]利用真核表達(dá)載體pVAX1構(gòu)建了含VP2基因的pVAX-VP2質(zhì)粒,將該質(zhì)粒經(jīng)肌肉注射接種2周齡雛雞,利用RT-PCR方法檢測(cè)發(fā)現(xiàn)不同臟器內(nèi)均能檢測(cè)到質(zhì)粒DNA,且免疫雞可獲得高水平的抗VP2蛋白抗體,用 IBDV強(qiáng)毒株攻毒可獲得75%的免疫保護(hù)率。Hsieh等[23]將含有VP2、VP3和VP4基因的質(zhì)粒DNA分別在1日齡、1周齡和2周齡時(shí)經(jīng)肌肉3次接種母源抗體陽(yáng)性的肉雞,免疫3周后攻毒,結(jié)果發(fā)現(xiàn),接種劑量為7.5和10 mg的免疫組雞可獲得95%和100%保護(hù)率。但也有研究表明, DNA疫苗免疫后,再采用滅活苗進(jìn)行加強(qiáng)免疫才能獲得較好的免疫保護(hù)作用[25]。至今,用于預(yù)防IBD的DNA疫苗仍處于試驗(yàn)性階段,由于其不受母源抗體干擾、生產(chǎn)過(guò)程中不需要操作活病毒,使用后不存在散毒風(fēng)險(xiǎn)等,仍然是疫苗研究的熱點(diǎn)之一。
活病毒載體是將目的基因插入病毒載體基因組復(fù)制非必需區(qū),當(dāng)重組病毒感染宿主時(shí),外源基因隨病毒載體共同在宿主體內(nèi)復(fù)制、表達(dá)外源蛋白,激發(fā)宿主免疫應(yīng)答反應(yīng)[26]。病毒載體可同時(shí)插入多個(gè)外源基因,構(gòu)成多價(jià)疫苗,降低了制備和接種成本,而表達(dá)VP2蛋白的重組病毒活載體疫苗接種雞后不會(huì)導(dǎo)致法氏囊損傷,從而避免了活疫苗免疫后可能導(dǎo)致的免疫抑制風(fēng)險(xiǎn)[27]。活病毒載體疫苗的研究已近30年,多種病毒如禽痘病毒、禽腺病毒、新城疫病毒和火雞皰疹病毒等均可作為疫苗載體,國(guó)外已有多種商品化的表達(dá)IBDV-VP2蛋白的載體疫苗上市。
5.1 禽痘病毒載體 禽痘病毒具有某些特征,如在細(xì)胞漿內(nèi)復(fù)制、基因組大以及特征性的病毒酶和轉(zhuǎn)錄系統(tǒng),使其可以正確表達(dá)外源基因,因此成為早期載體疫苗研究的主要病毒載體之一。目前在美國(guó)以痘病毒為載體的禽流感、新城疫、雞傳染性喉氣管炎、支原體重組禽痘病毒活疫苗均已上市[28],多年臨床使用后也被證明是安全有效的[5],但至今未見(jiàn)有表達(dá)IBDV-VP2禽痘病毒活載體疫苗成功的報(bào)道。Bayliss等[29]將 IBDV 52/70株編碼VP2的基因插入禽痘病毒(FPV)構(gòu)建了重組病毒fpIBD1,以融合蛋白形式表達(dá)VP2,將構(gòu)建的載體病毒活疫苗分別在1日齡和14日齡時(shí)免疫SPF雞,28日齡時(shí)用52/70或CS89強(qiáng)毒接種,免疫雞僅可獲得臨床保護(hù),但法氏囊仍有損傷。Tsukamoto等[30]構(gòu)建了表達(dá)VP2基因的rFPV重組病毒,將該病毒免疫SPF雞后30 d用vvIBDV攻毒,雖然可以提供臨床保護(hù),但法氏囊仍出現(xiàn)嚴(yán)重的肉眼病變,其組織病理學(xué)評(píng)分結(jié)果與攻毒對(duì)照相似,該結(jié)果也表明表達(dá)VP2基因的重組禽痘病毒不能夠提供有效的免疫保護(hù)效果。因此,從2000年以后未見(jiàn)采用重組禽痘病毒作為載體研制IBD疫苗的報(bào)道。
5.2 禽腺病毒載體 腺病毒由于宿主廣泛,其雙鏈DNA可以有效表達(dá)插入的外源基因,且以其為載體構(gòu)建的疫苗可以誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生良好的細(xì)胞和體液免疫反應(yīng)[31-32],不同血清型的禽腺病毒均可作為載體用于構(gòu)建載體疫苗[31]。Sheepard等[33]首次將IBDV經(jīng)典毒株002-73的VP2基因插入到血清10型禽腺病毒(FAV-10)的非編碼區(qū),構(gòu)建了表達(dá)VP2基因的重組腺病毒,該病毒經(jīng)靜脈、腹腔、皮下和肌肉途徑接種SPF雞,免疫21 d后能誘導(dǎo)雞產(chǎn)生針對(duì)VP2的抗體,用中等毒力的經(jīng)典毒株IBDV V877攻擊4 d后,法氏囊組織勻漿用ELISA方法檢測(cè)不到病毒抗原。Francois等[34]用屬于禽腺病毒I型的雞胚致死孤兒病毒(CELO)作為載體,構(gòu)建了表達(dá)IBDV-VP2基因的重組病毒CELOa-VP2,通過(guò)口鼻途徑接種SPF雞后用vvIBDV攻擊,僅產(chǎn)生非常低的保護(hù)效果,而通過(guò)皮下和皮內(nèi)途徑一次接種后攻毒,可產(chǎn)生100%的臨床保護(hù)。盡管以禽腺病毒為載體構(gòu)建的表達(dá)IBDV-VP2基因的重組疫苗研究報(bào)道較少,但隨著分子生物技術(shù)的發(fā)展,禽腺病毒載體構(gòu)建技術(shù)會(huì)逐步簡(jiǎn)單化,面對(duì)我國(guó)養(yǎng)禽業(yè)中腺病毒感染越來(lái)越嚴(yán)重的流行現(xiàn)狀,研制IBD禽腺病毒載體活疫苗將會(huì)有較大的臨床應(yīng)用優(yōu)勢(shì)。
5.3 新城疫病毒載體 隨著反向遺傳技術(shù)的發(fā)展,許多RNA病毒已研制作為疫苗載體[35],新城疫病毒是其中應(yīng)用最為廣泛的一種RNA病毒載體。雖然新城疫病毒(NDV)可感染多種哺乳動(dòng)物和禽類(lèi),但由于其僅在細(xì)胞漿內(nèi)復(fù)制,在動(dòng)物體內(nèi)不形成持續(xù)感染,且?guī)缀醪话l(fā)生如基因插入、缺失或重組等基因變化現(xiàn)象,此外NDV能夠誘導(dǎo)機(jī)體在局部和全身產(chǎn)生很強(qiáng)的體液免疫和細(xì)胞免疫作用,同時(shí)又具有一定的佐劑活性,所以它作為疫苗載體是非常安全有效的。許多以NDV為載體的人類(lèi)疫苗和動(dòng)物疫苗已被研制,如人的流感(rNDV/B1-HA)、SARS(NDV-VF/S)、埃博拉(NDV/GP)和人副流感(NDV-LS/HN, NDV-BC/HN)等,這些疫苗的免疫效果已在實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中得到證實(shí)[36],也研制出用于牛羊、豬、狗和馬的病原體的載體疫苗,如牛皰疹病毒-1型(BHV-1)[37]、裂谷熱病毒(RVFV)[38]、犬瘟熱病毒 (CDV)[39]和狂犬病毒 (RV)[40]。
有多種以NDV為載體的禽用疫苗已研制成功,如禽流感、傳染性喉氣管炎、傳染性支氣管炎、雞傳染性法氏囊等[41]。其中禽流感NDV活載體疫苗已在中國(guó)和墨西哥獲得商品化應(yīng)用[42]。盡管以NDV為載體的活病毒載體疫苗研究較多,但關(guān)于NDV載體表達(dá)IBDV-VP2的活載體疫苗研究資料較少。2004年,Huang等[43]首次將IBDV GLS-5 株的VP2基因插入到 NDV Lasota株基因組的3'端,拯救出重組病毒rLaSota/VP2,將重組病毒免疫2日齡的SPF雞3周后用IBDV GLS-5和NDTexas GB株攻毒,結(jié)果表明rLaSota/VP2能對(duì)免疫雞產(chǎn)生90%以上的免疫保護(hù)。2014年,Jin等[44]構(gòu)建了表達(dá)IBDV-VP2的ND嵌合病毒rLaC30L-VP2,18日齡胚內(nèi)接種后可以對(duì)vvIBDV毒株提供83.3%的保護(hù)。2017年,Sohini等[45]用NDV F株構(gòu)建表達(dá)IBDV-VP2的重組病毒rNDV F/VP2,免疫效力試驗(yàn)結(jié)果表明可以對(duì)IBDV強(qiáng)毒株提供100%保護(hù),對(duì)NDV強(qiáng)毒株攻擊可以提供80%保護(hù)。雖然上述實(shí)驗(yàn)室研究結(jié)果均表明采用NDV疫苗毒株構(gòu)建的表達(dá)IBDV-VP2的重組病毒對(duì)IBDV強(qiáng)毒均可以提供良好保護(hù),但由于ND活疫苗的免疫受到母源抗體干擾影響較大,且ND載體病毒活疫苗的免疫效果均低于其N(xiāo)D疫苗親本毒株,因此ND-IBDV-VP2二聯(lián)活疫苗的商品化還有待進(jìn)一步研究和發(fā)展。
5.4 火雞皰疹病毒/馬立克載體 馬立克病毒(MD)和火雞皰疹病毒(HVT) 均屬于α皰疹病毒科,目前已在MD/HVT病毒基因組中發(fā)現(xiàn)了多個(gè)病毒體外復(fù)制非必需基因,其中包括US1、US2、US6、US7、US10、UL23、UL40、UL43、UL44、UL45、UL46等,可供多種外源基因插入。MD/HVT接種雞會(huì)引起持續(xù)性的感染,同時(shí)刺激體液和細(xì)胞免疫,接種該載體的單一疫苗能引起長(zhǎng)期免疫[46]。由于其良好的安全性,且疫苗不受母源抗體干擾,使得以MD/HVT為載體研制禽用疫苗成為近年來(lái)的研究熱點(diǎn),目前國(guó)外已有多個(gè)商品化疫苗上市。Raphael Darteil等[47]首次報(bào)道構(gòu)建表達(dá)IBDV-VP2的HVT載體病毒,使用不同劑量(103~105PFU/羽)接種1日齡雞21 d后,用IBDV強(qiáng)毒株攻擊,105PFU/羽接種組可以提供100%保護(hù),隨后許多研究報(bào)道均表明表達(dá)VP2蛋白的HVT載體疫苗對(duì)IBDV可以提供良好的保護(hù)。Tsukamoto等[48]構(gòu)建了含不同啟動(dòng)子的rHVT-VP2重組病毒,即rHVT-cmvVP2和rHVT-pecVP2,對(duì)比結(jié)果發(fā)現(xiàn),攜帶Pec啟動(dòng)子的重組病毒VP2蛋白表達(dá)量是CMV啟動(dòng)子的4倍,對(duì)免疫雞產(chǎn)生100%保護(hù),而含CMV啟動(dòng)子的重組病毒,免疫效果較差,這表明HVT重組載體病毒的啟動(dòng)子對(duì)疫苗的免疫效果和抗原表達(dá)量有重要影響。Bulbot等[49]使用表達(dá)IBDV-VP2的HVT載體疫苗經(jīng)胚內(nèi)接種或1日齡皮下接種高母源抗體雞群,免疫雞法氏囊沒(méi)有任何損傷,且疫苗能夠提供對(duì)不同IBDV強(qiáng)毒株的保護(hù),該結(jié)果表明載體疫苗具有高度的安全性和有效性。Roh等[50]用商品化的VAXXITEK HVT-IBD疫苗對(duì)商品肉雞進(jìn)行的免疫接種試驗(yàn)表明,該載體疫苗可以對(duì)肉雞提供良好的免疫保護(hù),且對(duì)免疫雞法氏囊不引起任何損傷,不誘導(dǎo)免疫抑制。從目前相關(guān)表達(dá)IBDV-VP2載體疫苗的研究和臨床應(yīng)用效果看,表達(dá)VP2的HVT載體疫苗是免疫效果最好,且臨床應(yīng)用最廣泛的載體疫苗。
至目前為止,預(yù)防和控制IBD最經(jīng)濟(jì)最有效的措施仍然是采用疫苗進(jìn)行免疫接種。盡管有許多不同類(lèi)別的商品化疫苗上市,對(duì)IBD的控制和減少養(yǎng)禽業(yè)的經(jīng)濟(jì)損失也起到了至關(guān)重要地作用,但目前可用于IBD預(yù)防的商業(yè)疫苗仍然存在著一定的局限性,因此新型疫苗研究仍是方興未艾??梢哉雇S著免疫學(xué)技術(shù)和分子生物技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展,快速研制與流行毒株抗原結(jié)構(gòu)相匹配的疫苗成為可能。當(dāng)抗IBDV的母源抗體較高時(shí),胚內(nèi)接種的免疫復(fù)合物疫苗或重組皰疹病毒載體疫苗可用于規(guī)避母源抗體對(duì)疫苗的干擾問(wèn)題。然而,不建議同時(shí)使用兩種重組皰疹病毒疫苗,因?yàn)榘捳畈《靖腥炯?xì)胞之間的相互干擾會(huì)導(dǎo)致對(duì)一種或兩種目標(biāo)病原體的免疫效果降低,在將來(lái),也許IBD-DNA疫苗是解決這個(gè)問(wèn)題的途徑。如果能開(kāi)發(fā)新型佐劑和改進(jìn)疫苗接種途徑并使之方便于群體免疫,可提高亞單位、亞病毒顆粒和模擬表位疫苗在養(yǎng)禽業(yè)的實(shí)際應(yīng)用前景??傊糜陬A(yù)防IBD的新型疫苗必須安全有效,生產(chǎn)成本低廉,且對(duì)大規(guī)模化養(yǎng)禽業(yè)而言使用經(jīng)濟(jì),只有這類(lèi)疫苗才能成功獲得市場(chǎng)。
參考文獻(xiàn):
[1] David E. Diseases of poultry(13th Edition) [M]. A John Wiley & Sons, Inc, Publication, 2013: 219-230.
[2] Ingrao F, Rauw F, Lambrecht B,etal. Infectious bursal disease: a complex host-pathogen interaction[J]. Developmental and Comparative Immunology, 2013, 41(3): 429-438.
[3] Mahgoub H A. An overview of infectious bursal disease[J]. Archives of virology, 2012, 157: 2047-2057.
[4] Witter R L, Hunt H D. Poultry vaccines of the future[J]. Poultry science, 1994, 73(7) : 1087-1093.
[5] Muller H, Mundt E, Eterradossi N,etal. Current status of vaccines against infectious bursal disease[J]. Avian Pathology, 2012, 41(2): 133-139.
[6] Pantin-Jackwood D J. Advances in vaccine research against economically important viral diseases of food animals: infectious bursal disease virus[J]. Veterinary microbiology, 2017, 206: 121-125.
[7] Brandt M, Yao K, Liu M,etal. Molecular determinants of virulence, cell tropism, and pathogenic phenotype of infectious bursal disease virus[J]. Journal of virology, 2001, 75(24) : 11974-11982.
[8] Boot H J, Agnes H M, Peeter B P. Generation of full length cDNA of the two genomic dsDNA segments of infectious bursal disease virus[J]. Journal of Virological Methods, 2000, 84: 49-58.
[9] Boot H J, Ter Huurne A A, Hoekman A J,etal. Exchange of the C-terminal part of VP3 from very virulent infectious bursal disease virus results in an attenuated virus with a unique antigenic structure[J]. Journal of virology, 2002, 76(20): 10346-10355.
[10] Gao L, Qi X L, Li K,etal. Development of a tailored vaccine against challenge with very virulent infectious bursal disease virus of chickens using reverse genetics[J]. Vaccine, 2011, (29) : 5550-5557.
[11] Qi X L, Zhang L, Chen Y,etal. Mutations of residues 249 and 256 in VP2 are involved in the replication and viraulence of infectious bursal disease virus[J/OL]. PLoS One, 2013, 8: e70982.
[12] 高 立, 祁小樂(lè), 秦立廷, 等. 雞傳染性法氏囊病病毒超強(qiáng)毒株 HLJ-0504 VP5基因缺失株感染性克隆的構(gòu)建及鑒定[J]. 中國(guó)動(dòng)物傳染病學(xué)報(bào), 2010, 18(2) : 1-7.
Gao L, Qi X L, Qin L T,etal. Cloning of very virulent infectious bursal disease virus HLJ0504 strain with VP5 gene deletion[J]. Chinese Journal of Animal Infectious Disease, 2010, 18(2) : 1-7.
[13] Rong J, Jiang T, Cheng T,etal. Large-scale manufacture and use of recombinant VP2 vaccine against infectious bursal disease in chickens[J]. Vaccine, 2007, 25: 7900-7908.
[14] Fahey K J, Chapman A J, Macreadie I G,etal. A recombinant subunit vaccine that protects progeny chickens from infectious bursal disease[J]. Avian Pathology, 1991, 20: 447-460.
[15] Vakharia V N, Snyder D B, He J,etal. Infectious bursal disease virus structural proteins expressed in a baculovirus recombinant confer protection in chickens[J]. Journal of General Virology, 1993, 74: 1201-1206.
[16] Chen T H, Hu C C, Liao J T,etal. Induction of protective immunity in chickens immunized with plant-made chimeric Bamboo mosaic virus particles expressing very virulent infectious bursal disease virus antigen[J]. Virus Research, 2012, 166: 109-115.
[17] Liu Y, Wei Y W, Wu X F,etal. Preparation of ChIL-2 and IBDV VP2 fusion protein by baculovirus expression system[J]. Cellular & Molecular Immunology, 2005, 2(3): 231-235.
[18] Wu H, Singh N K, Locy R D,etal. Immunization of chickens with VP2 protein of infectious bursal disease virus expressed in Arabidopsis thaliana[J]. Avian Diseases, 2004, 48: 663-668.
[19] Whitfill C E, Haddad E E, Ricks C A,etal. Determination of optimum formulation of a novel infectious bursal disease virus (IBDV) vaccine constructed by mixing bursal disease antibody with IBDV[J]. Avian Diseases, 1995, 39: 687-699.
[20] 宋立芹, 蔣桃珍, 陳光華, 等. 雞傳染性法氏囊病免疫復(fù)合物疫苗的安全性和免疫效力試驗(yàn)[J].中國(guó)獸藥雜志, 2004. 38(7) : 9-11.
Song L Q, Jiang T Z, Chen G H,etal. Safety and immune efficacy tests of the complex vaccine for infectious bursa disease[J]. Chinese Journal of Veterinary Drug, 2004, 38(7) : 9-11.
[21] 章振華, 李 林, 景小冬, 等. 雞傳染性法囊病免疫復(fù)合物疫苗對(duì)SPF雛雞的免疫效果[J]. 動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2015. 36(10) : 39-43.
Zhang Z H, Li L, Jing X D,etal. Study on the immunity effect of immune complex vacine for infectious bursal disease on one-day old low maternal antibody chicken[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2015, 42(9) : 2493-2498.
[22] Jackwood M J, Kapczynski D R, DeJesus E,etal. Efficacy of a recombinant turkey herpesvirus H5 vaccine against challenge with H5N1 clades 1.1.2 and 2.3.2.1 highly pathogenic avian influenza viruses in domestic ducks (Anas platyrhynchos domesticus)[J]. Avian Diseases, 2016, 60: 22-32.
[23] Hsieh M K, Wu C C, Lin T L. DNA-mediated vaccination conferring protection against infectious bursal disease in broiler chickens in the presence of maternal antibody[J]. Vaccine, 2010, 28: 3936-3943.
[24] Satya N P, Prabhu R P, Jayaprakasam M,etal. DNA vaccination with VP2 gene fragment confers protection against infectious bursal disease virus in chickens[J]. Veterinary microbiology, 2014, 171: 13-22.
[25] Liz H, Fred D, Pete K. DNA vaccines for poultry: the jump from theory to practice[J]. Expert Review of Vaccines, 2005,4(1): 51-62.
[26] Jackwood M W. Current and future recombinant viral vaccines for poultry[J]. Advances in Veterinary Medicine, 1999, 41: 517-522.
[27] Sheppard M. Viral vectors for veterinary vaccines[J]. Advances in Veterinary Medicine, 1999, 41: 145-161.
[28] Tripathy D N. The impact of vaccines and the future of genetically modified poxvirus vaccines for poultry[J]. Animal Health Research Reviews, 2004, 5(2): 263-266.
[29] Bayliss C D, Peters R W, Cook J K,etal. A recombinant fowlpox virus that expresses the VP2 antigen of infectious bursal disease virus induces protection against mortality caused by the virus[J]. Archives of Virology, 1991, 120(3-4): 193-205.
[30] Tsukamoto K, Takanori S, Shuji S,etal. Dual-viral vector approach induced strong and long-lasting protective immunity against very virulent infectious bursal disease virus[J]. Virology, 2000, 269: 257-267.
[31] Vemula S V, Mittal S K. Production of adenovirus vectors and their use as a delivery system for influenza vaccines[C]. Expert Opinion on Biological Therapy, 2010, 10(10): 1469-1487.
[32] Bangari D S, Mittal S K. Development of nonhuman adenoviruses as vaccine vectors[J]. Vaccine, 2006, 24(7) : 849-862.
[33] Sheppard M, Werner W, Tsatas E,etal. Fowladenovirus recombinant expressing VP2 of.infectious bursal disease virus induces protective immunity against bursal disease[J]. Archives of Virology,1998: 143.
[34] Achille F, Christophe C, Bernard D,etal. Avian adenovirus CELO recombinants expressing VP2 of infectious bursal disease virus induce protection against bursal disease in chickens[J]. Vaccine, 2004, 22(17-18): 2351-2360.
[35] Stobart C C, Moore M L. RNA virus reverse genetics and vaccine design[J]. Viruses, 2014, 6: 2531-2550.
[36] Kim S H, Samal S K. Newcastle disease virus as a vaccine vector for development of human and veterinary vaccines[J]. Viruses, 2016, 8: 183.
[37] Khattar S K, Collins P L, Samal S K. Immunization of cattle with recombinant Newcastle disease virus expressing bovine herpesvirus-1 (BHV-1) glycoprotein D induces mucosal and serum antibody responses and provides partial protection against BHV-1[J]. Vaccine, 2010, 28: 3159-3170.
[38] Kortekaas J, Dekker A, de Boer S M,etal. Intramuscular inoculation of calves with an experimental Newcastle disease virus-based vector vaccine elicits neutralizing antibodies against Rift Valley fever virus[J]. Vaccine, 2010, 28: 2271-2276.
[39] Ge J, Wang X, Tian M,etal. Recombinant Newcastle disease viral vector expressing hemagglutinin or fusion of canine distemper virus is safe and immunogenic in minks.Vaccine, 2015, 33: 2457-2462.
[40] Ge J, Wang X, Tao L,etal. Newcastle disease virus-vectored rabies vaccine is safe, highly immunogenic, and provides long-lasting protection in dogs and cats[V]. Journal of virology, 2011, 85: 8241-8252.
[41] Choi K S. Newcastle disease virus vectored vaccines as bivalent or antigen delivery vaccines[J]. Clinical and experimental vaccine research, 2017, 6(2): 72-82.
[42] Suarez D L, Pantin-Jackwood M J. Recombinant viral-vectored vaccines for the control of avian influenza in poultry[J/OL]. Veterinary microbiology, 2016, 24(11).
[43] Huang Z, Elankumaran S, Abdul S A. Recombinant Newcastle disease virus (NDV) expressing VP2 protein of infectious bursal disease virus (IBDV) protects against NDV and IBDV[J]. Journal of Virology, 2004, 78: 10054-10063.
[44] Jin Y G, Wang X J, Tian M J,etal. Novel in-ovo chimeric recombinant Newcastle disease vaccine protects against both Newcastle disease and infectious bursal disease[J]. Vaccine, 2014, 32(13): 1514-1521.
[45] Dey S, Chellappa M M, Pathak D C,etal. Newcastle disease virus vectored bivalent vaccine against virulent infectious bursal disease and Newcastle disease of chickens[J]. Vaccine(Basel), 2017, 5(4): 31.
[46] Susanne M B, Christina F, André R,etal. Herpesviral vectors and their application in oncolytic therapy, vaccination and gene transfer[J]. Virus Genes, 2017, 53(5): 741-748.
[47] Darteil R, Bublot M, Laplace E,etal. Herpesvirus of turkey recombinant viruses expressing infectious bursal disease virus (IBDV) VP2 immunogen induce protection against an IBDV virulent challenge in chickens[J]. Virology, 1995, 211(2): 481-490.
[48] Tsukamoto, K. Protection of chickens against very virulent infectious bursal disease virus and Marek's disease virus with a recombinant MDV expressing IBDV VP2[J]. Virology, 1999, 257: 352-362.
[49] Bublot M, Pritchard N, Le Gros F-X,etal. Use of a vectored vaccine against infectious bursal disease of chickens in the face of high-titred maternally derived antibody[J]. Journal of Comparative pathology, 2007, 137(Suppl1): 81-84.
[50] Roh J H, Kang M, Wei B,etal. Efficacy of HVT-IBD vector vaccine compared to attenuated live vaccine using in-ovo vaccination against a Korean very virulent IBDV in commercial broiler chickens[J]. Poulty Science, 2016, 95(5): 1020-1024.