王 抒, 李 軒, 喬田奎
復(fù)旦大學(xué)附屬金山醫(yī)院腫瘤科,上海 201508
雷替曲塞聯(lián)合X線照射對(duì)人喉癌細(xì)胞Hep-2的協(xié)同作用
王 抒, 李 軒, 喬田奎*
復(fù)旦大學(xué)附屬金山醫(yī)院腫瘤科,上海 201508
目的探討雷替曲塞與X射線對(duì)人喉癌細(xì)胞Hep-2的協(xié)同作用及其潛在機(jī)制。方法CCK-8法檢測(cè)不同濃度雷替曲塞對(duì)Hep-2細(xì)胞活力的影響。將Hep-2細(xì)胞隨機(jī)分為對(duì)照組、雷替曲塞組、照射組、雷替曲塞+照射組。單擊多靶模型繪制細(xì)胞存活曲線,檢測(cè)4組細(xì)胞存活情況及放射增敏比(sensitization enhancement ratio,SER);流式細(xì)胞儀檢測(cè)4組Hep-2細(xì)胞凋亡情況和周期改變。結(jié)果雷替曲塞能抑制Hep-2細(xì)胞活力,且呈劑量依賴性(P<0.05)。單擊多靶模型顯示,雷替曲塞平均致死劑量下SER為1.272。雷替曲塞能顯著增加細(xì)胞凋亡和G2/M期阻滯(P<0.05)。結(jié)論雷替曲塞能協(xié)同X線對(duì)人喉癌細(xì)胞Hep-2的抑制作用,其機(jī)制可能與誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡和增加細(xì)胞G2/M期阻滯有關(guān)。
雷替曲塞;X線;Hep-2細(xì)胞;凋亡;細(xì)胞周期
喉鱗狀細(xì)胞癌(laryngeal squamous cell carcinoma,LSCC)是耳鼻喉科最常見的惡性腫瘤之一。LSCC占頭頸部上皮細(xì)胞來源惡性腫瘤的第2位,具有高度侵襲性,患者5年總生存率(overall survival,OS)約為61%[1-2]。近年來,對(duì)于喉癌的治療,臨床醫(yī)師和患者越來越重視對(duì)喉部結(jié)構(gòu)和功能的保護(hù)。放射治療是治療喉癌的重要手段之一。對(duì)于早期喉癌患者,根治性放療的效果與手術(shù)療效相當(dāng)[3]。對(duì)于局部晚期喉癌患者,放療是手術(shù)后治療的重要手段[4]。對(duì)于無法行手術(shù)切除的喉癌患者或患者有強(qiáng)烈保喉意愿時(shí),可采用放化療聯(lián)合治療[5-6]。然而,由于喉癌細(xì)胞對(duì)射線的抵抗性,往往導(dǎo)致放療失敗,引起腫瘤復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移[7]。因此,尋找有效的放射增敏劑是多年來腫瘤領(lǐng)域的熱點(diǎn)。
雷替曲塞是與喹唑啉葉酸化學(xué)結(jié)構(gòu)相似的胸苷酸合酶(thymidylate synthase,TS)的特異性抑制劑,近年應(yīng)用于多種實(shí)體腫瘤。在體內(nèi),雷替曲塞可以代謝成一系列多聚谷氨酸化合物,這些代謝物具有更強(qiáng)的TS抑制作用[8]。由于雷替曲塞與5-氟尿嘧啶(5-fluorouracil,5-Fu)具有相似的作用機(jī)制,因此雷替曲塞的應(yīng)用范圍較廣,在結(jié)直腸癌[9]、胃癌[10]、食管癌[11]、頭頸部惡性腫瘤[12]和惡性間皮瘤[13]等的治療中均取得了肯定療效。但雷替曲塞聯(lián)合放療在喉癌治療中的作用目前尚不明確。本研究通過體外實(shí)驗(yàn),探討雷替曲塞協(xié)同X線照射對(duì)喉癌細(xì)胞的抑制作用,為其臨床聯(lián)合應(yīng)用提供理論依據(jù)。
1.1 細(xì)胞與試劑 人喉癌細(xì)胞系購自中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心(Chinese Type Culture Collection,CTCC)。雷替曲塞由南京正大天晴制藥有限公司提供。細(xì)胞培養(yǎng)基MEM和胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自美國(guó)Gibco公司。Annexin Ⅴ凋亡檢測(cè)試劑盒、細(xì)胞周期試劑盒均購自美國(guó)BD公司。CCK-8試劑盒購自日本TaKaRa公司。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) Hep-2細(xì)胞用含10% FBS、100 U/mL青霉素、100 μg/mL鏈霉素的MEM培養(yǎng)基中,置于37℃、5% CO2、95%濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。常規(guī)消化傳代,選取處于指數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.3 細(xì)胞照射 應(yīng)用美國(guó)Varian直線加速器,劑量率為2 Gy/min。X線能量為6 MV,源皮距100 cm。細(xì)胞克隆集落形成實(shí)驗(yàn)照射劑量依次為2、4、6、8、10 Gy,其余實(shí)驗(yàn)照射劑量均為10 Gy。
1.4 細(xì)胞增殖活力的測(cè)定 在96孔板中接種指數(shù)生長(zhǎng)期的Hep-2細(xì)胞,每孔細(xì)胞數(shù)為6×103。加入終濃度分別為0.1、0.25、0.5、1.0、2.0 μg/mL的雷替曲塞,均分別培養(yǎng)24、48 h,每孔加入10 μL CCK-8試劑,避光反應(yīng)3 h,振勻后用酶標(biāo)儀于450 nm處檢測(cè)光密度(optical density,D)值。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次。細(xì)胞活力(%)=(處理孔D-空白對(duì)照D) /(對(duì)照孔D-空白對(duì)照D)×100%。
1.5 細(xì)胞分組 將Hep-2細(xì)胞隨機(jī)分為對(duì)照組、雷替曲塞組(RTX 組)、照射組(IR組)和雷替曲塞加照射組(RTX+IR組)。根據(jù)細(xì)胞活力的檢測(cè)結(jié)果,RTX組和RTX+IR組照射前加入不影響細(xì)胞活力濃度的雷替曲塞。
1.6 細(xì)胞克隆集落形成實(shí)驗(yàn) IR組、RTX+IR組分別給予0、2、4、6、8、10 Gy的X線照射后,立即將細(xì)胞用胰蛋白酶消化,并以500~3 000個(gè)/皿[14]接種到60 mm2培養(yǎng)皿中。孵育14 d后,將菌落用甲醇固定,結(jié)晶紫染色。使用顯微鏡計(jì)數(shù)染色的集落數(shù)(每個(gè)集落不少于50個(gè)細(xì)胞)。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次??寺⌒纬陕?plating efficiency,PE)=(克隆數(shù)/接種細(xì)胞數(shù)) ×100%,細(xì)胞生存分?jǐn)?shù)(survival fraction,SF)=(處理組PE/對(duì)照組PE)×100%。用單擊多靶模型擬合細(xì)胞存活曲線計(jì)算各組平均致死劑量(mean death dose,D0)、準(zhǔn)閾劑量(quasi-threshold dose,Dq)及增敏比(sensitization enhancement ratio,SER)。
1.7 細(xì)胞凋亡檢測(cè) 六孔板指數(shù)生長(zhǎng)的Hep-2細(xì)胞分組處理同上,照射后的細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)24、48 h,用胰酶消化并收集各組細(xì)胞(包括上清液中的細(xì)胞),冷PBS清洗2遍,加100 μL緩沖液重懸,再加入Annexin Ⅴ和碘化丙啶(PI)溶液各5 μL,混勻,室溫避光孵育15 min后加入300 μL緩沖液,用流式細(xì)胞儀(BD FACSCalibur)進(jìn)行檢測(cè)。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次。
1.8 細(xì)胞周期檢測(cè) Hep-2細(xì)胞分組處理同上,照射后的細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)24、48 h,用胰酶消化,收集各組細(xì)胞。將收集好的細(xì)胞用70%冷乙醇在-20℃下固定過夜,避光將細(xì)胞加入含有50 μL/mL的RNase酶和50 μL/mL PI染色液,室溫避光孵育30 min后,流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期各時(shí)相所占比例。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次。
2.1 雷替曲塞對(duì)Hep-2細(xì)胞增殖活力的影響 用不同濃度雷替曲塞(0.1、0.25、0.5、1.0、2.0 μg/mL)處理Hep-2細(xì)胞后,細(xì)胞活力被抑制,并呈劑量依賴性(P<0.05);隨著時(shí)間延長(zhǎng)細(xì)胞活力進(jìn)一步下降(P<0.05,圖1)。
2.2 雷替曲塞對(duì)Hep-2細(xì)胞克隆形成的影響 雷替曲塞(0.1 μg/mL)聯(lián)合X線(2、4、6、8、10 Gy)照射后, 細(xì)胞存活分?jǐn)?shù)明顯低于相應(yīng)劑量的接受單純照射的細(xì)胞存活分?jǐn)?shù)(P<0.05,圖2);RTX+IR組存活曲線肩區(qū)較IR組變窄(圖2),SERD0為1.272(表1)。
圖1 雷替曲塞對(duì)Hep-2細(xì)胞活力的影響
圖2 雷替曲塞對(duì)Hep-2細(xì)胞克隆形成的影響
表1 雷替曲塞聯(lián)合X線照射與單純X線照射組各放射參數(shù)值的比較
*外推值,細(xì)胞內(nèi)關(guān)鍵靶的數(shù)目或1個(gè)靶所需擊中的次數(shù)
2.3 細(xì)胞凋亡 處理24 h后,對(duì)照組、RTX 組、IR組、RTX+IR組細(xì)胞凋亡率逐漸升高(P<0.05);處理48 h后,對(duì)照組、RTX 組、IR組、RTX+IR組細(xì)胞凋亡率逐漸升高(P<0.05)。其中,RTX+IR組細(xì)胞凋亡率較對(duì)照組、IR組升高(P<0.01,圖3)。
2.4 細(xì)胞周期 處理24 h后,對(duì)照組、RTX組、IR組、RTX+IR組的細(xì)胞周期差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);處理48 h后,對(duì)照組、RTX組、IR組、RTX+IR組的細(xì)胞周期差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。其中,RTX+IR組與對(duì)照組、IR組相比,G2/M期細(xì)胞比例明顯增加(P<0.001,圖4)。
圖3 不同組別細(xì)胞處理24、48 h后凋亡率比較
圖4 不同組別細(xì)胞各細(xì)胞周期比例的比較
雷替曲塞為新型水溶性TS特異性選擇性抑制劑。其作用機(jī)制為:通過還原型葉酸載體(reduced folate carrier,RFC)轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞內(nèi),被葉酰多聚谷氨酸合成酶(folylpolyglutamate synthetase,F(xiàn)PGS)代謝為多聚谷氨?;衔锖?,選擇性抑制TS,進(jìn)而干擾DNA合成,導(dǎo)致DNA斷裂和細(xì)胞死亡,從而產(chǎn)生抗腫瘤作用[8]。
雷替曲塞問世早期主要用以治療結(jié)直腸癌,目前研究顯示其對(duì)多種實(shí)體腫瘤均具有抗腫瘤活性[9-13]。雷替曲塞聯(lián)合奧沙利鉑在晚期結(jié)直腸癌中較5-Fu更具優(yōu)勢(shì)[15];雷替曲塞聯(lián)合奈達(dá)鉑使晚期復(fù)發(fā)或轉(zhuǎn)移性咽喉癌患者總生存時(shí)間延長(zhǎng)[12];雷替曲塞聯(lián)合卡鉑對(duì)轉(zhuǎn)移或復(fù)發(fā)性頭頸鱗癌患者有效率約53%[16]。雷替曲塞不僅用于腫瘤化療,還可聯(lián)合靶向或放射治療。James等[17]進(jìn)行的Ⅰ期臨床研究顯示,對(duì)于不可切除或復(fù)發(fā)性直腸癌,雷替曲塞聯(lián)合放療有顯著療效。在鼻咽癌[18]及食管鱗癌[19]中,雷替曲塞聯(lián)合放療不良反應(yīng)較輕,治療效果確切。本研究通過體外實(shí)驗(yàn)揭示了雷替曲塞能協(xié)同X線照射對(duì)人喉鱗癌細(xì)胞Hep-2的抑制作用。本研究中,CCK-8法檢測(cè)結(jié)果表明,隨著藥物濃度和作用時(shí)間的增加,細(xì)胞增殖活力不斷下降。與對(duì)照組相比,雷替曲塞為0.1 μg/mL時(shí)才對(duì)細(xì)胞增殖活力差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。故本實(shí)驗(yàn)SER研究中采用此濃度。
細(xì)胞克隆形成實(shí)驗(yàn)是公認(rèn)的驗(yàn)證腫瘤細(xì)胞放射敏感性的“金標(biāo)準(zhǔn)”[20]。本研究結(jié)果提示,雷替曲塞聯(lián)合放療能顯著減少Hep-2細(xì)胞的克隆形成數(shù)目。單純放療及聯(lián)合治療時(shí)的D0值分別為1.962、1.542 Gy,聯(lián)合治療的SER為1.272,提示在放療之前使用雷替曲塞可提高Hep-2細(xì)胞株對(duì)放療的敏感性。
細(xì)胞凋亡是放射殺死腫瘤細(xì)胞的一個(gè)重要途徑。腫瘤細(xì)胞放射敏感性與細(xì)胞凋亡密切相關(guān),凋亡率的增加提示細(xì)胞有更大的放射敏感性[21]。本研究顯示,低濃度的雷替曲塞對(duì)喉癌細(xì)胞凋亡率沒有明顯影響,但RTX+IR組較IR組凋亡率升高。
腫瘤細(xì)胞放射敏感性在細(xì)胞周期的不同時(shí)相有很大差別,G2/M期細(xì)胞放射敏感性較G1或S期高;影響細(xì)胞周期檢測(cè)點(diǎn)或周期蛋白表達(dá)均會(huì)改變腫瘤細(xì)胞的放射敏感性[22]。因此,腫瘤細(xì)胞的G2/M期阻滯也是提高放射敏感性的重要途徑。本研究顯示,RTX+IR組較IR組S期細(xì)胞比例降低,并出現(xiàn)明顯的G2/M期停滯,提示雷替曲塞能提高喉癌細(xì)胞的放射敏感性。
放射抵抗是導(dǎo)致腫瘤放療失敗的關(guān)鍵因素之一,可能導(dǎo)致腫瘤轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)。本研究通過體外實(shí)驗(yàn)證明,雷替曲塞能協(xié)同X線對(duì)人喉鱗癌Hep-2細(xì)胞的抑制作用,其機(jī)制可能與誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡和增加G2/M期阻滯有關(guān),為雷替曲塞聯(lián)合放射治療在喉癌治療中的應(yīng)用提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。但本研究只涉及了體外研究,相關(guān)體內(nèi)試驗(yàn)及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路、基因調(diào)控機(jī)制有待進(jìn)一步探討。
[ 1 ] RUDOLPH E, DYCKHOFF G, BECHER H, et al.Effects of tumour stage,comorbidity and therapy on survival of laryngeal cancer patients: a systematic review and a meta-analysis[J]. Eur Arch Otorhinolaryngol, 2011, 268(2): 165-179.
[ 2 ] HABBOUS S, HARLAND L T, LA DELFA A,et al. Comorbidity and prognosis in head and neck cancers: differences by subsite, stage, and human papillomavirus status[J]. Head Neck, 2014, 36(6): 802-810.
[ 3 ] GREULICH M T, PARKER N P, LEE P, et al. Voice outcomes following radiation versus laser microsurgery for T1glottic carcinoma: systematic review and meta-analysis[J]. Otolaryngol Head Neck Surg, 2015, 152(5): 811-819.
[ 4 ] FORASTIERE A A, WEBER R S, TROTTI A. Organ preservation for advanced larynx cancer: issues and outcomes [J]. J Clin Oncol, 2015, 33(29): 3262-3268.
[ 5 ] POPOVTZER A, BURNSTEIN H, STEMMER S,et al. Phase Ⅱ organ-preservation trial: Concurrent cisplatin and radiotherapy for advanced laryngeal cancer after response to docetaxel, cisplatin, and 5-fluorouracil-based induction chemotherapy[J]. Head Neck, 2017, 39(2): 227-233.
[ 6 ] BOEHM A, LINDNER F, WICHMANN G, et al. Impact of indication-shift of primary and adjuvant chemo radiation in advanced laryngeal and hypopharyngeal squamous cell carcinoma[J]. Eur Arch Otorhinolaryngol, 2015, 272(8): 2017-2025.
[ 7 ] ORTH M, LAUBER K, NIYAZI M, et al. Current concepts in clinical radiation oncology [J]. Radiat Environ Biophys, 2014, 53(1):1-29.
[ 8 ] HAGNER N, JOERGER M. Cancer chemotherapy: targeting folic acid synthesis[J]. Cancer Manag Res, 2010, 2: 293-301.
[ 9 ] CARAVATTA L, PICARDI V, TAMBARO R, et al. Neoadjuvant accelerated concomitant boost radiotherapy and multidrug chemotherapy in locally advanced rectal cancer: a dose-escalation study [J]. Am J Clin Oncol, 2012, 35(5): 424-431.
[10] SHEN J, WANG H, WEI J, et al. Thymidylate synthase mRNA levels in plasma and tumor as potential predictive biomarkers for raltitrexed sensitivity in gastric cancer[J]. Int J Cancer, 2012, 131(6): 938-945.
[11] MACKAY H J, MCINNES A, PAUL J, et al. A phase Ⅱstudy of epirubicin, cisplatin and raltitrexed combination chemotherapy (ECT) in patients with advanced oesophageal and gastric adenocarcinoma [J]. Ann Oncol, 2001, 12(10): 1407-1410.
[12] 遲洪亮.奈達(dá)鉑聯(lián)合雷替曲塞治療晚期喉咽癌17例分析[J].中國(guó)醫(yī)藥指南,2014,12(19):199-200.
[13] SURMONT V F, VAN MEERBEECK J P. Raltitrexed in mesothelioma[J]. Expert Rev Anticancer Ther, 2011,11(10): 1481-1490.
[14] SHORT S C, GIAMPIERI S, WORKU M, et al. Rad51 inhibition is an effective means of targeting DNA repair in glioma models and CD133+tumor-derived cells[J]. Neuro Oncol, 2011, 13(5): 487-499.
[15] 胡 俊, 韋永明, 王 銀, 等. 雷替曲塞在晚期結(jié)直腸癌治療中的應(yīng)用價(jià)值[J].吉林醫(yī)學(xué),2011,32(34):7281-7281.
[16] GALETTA D, GIOTTA F, ROSATI G, et al.Carboplatin in combination with raltitrexed in recurrent and metastatic head and neck squamous cell carcinoma: a multicentre phase Ⅱ study of the Gruppo Oncologico Dell’Italia Meridionale (G.O.I.M.)[J]. Anticancer Res, 2005, 25(6C): 4445-4449.
[17] JAMES R D, BOTWOOD N, VERNON C C, et al.Raltitrexed plus radiotherapy for the treatment of unresectable/recurrent rectal cancer:a phase Ⅰ study[J]. Ann Oncol, 2003,14(4): 570-573.
[18] 丁 巍, 姜萬榮, 孫向東, 等. 雷替曲塞聯(lián)合奈達(dá)鉑同步螺旋斷層放療治療局部晚期鼻咽癌的臨床研究[J].臨床腫瘤學(xué)雜志,2016, 21(8):727-731.
[19] 夏鈾鈾, 王 磊, 宋大安,等. 放療聯(lián)合雷替曲塞奧沙利鉑同步治療中晚期食管癌的Ⅱ期臨床研究[J].中國(guó)腫瘤臨床, 2014, 41(11):716-719.
[20] KIM H, LEE O H, XIN H W, et al. TRF2 functions as a protein hub and regulates telomere maintenance by recognizing specific peptide motifs[J].Nat Struct Mol Biol,2009,16(4):372-379.
[21] YUAN S, QIAO T, CHEN W. CpG oligodeoxynucleotide 1826 enhances the Lewis lung cancer response to radiotherapy in murine tumor[J]. Cancer Biother Radiopharm, 2011, 26(26): 203-208.
[22] 王宏梅, 陳龍華, 鄭小康, 等.抑制ATM表達(dá)致鼻咽癌細(xì)胞CNE1輻射增敏的細(xì)胞周期阻滯研究[J].癌癥,2008,27(5): 466-470.
ThesynergisticeffectofraltitrexedcombinedwithX-rayradiationonhumanlaryngealcancerHep-2cells
WANG Shu, LI Xuan, QIAO Tian-kui*
Department of Oncology, Jinshan Hospital, Fudan University, Shanghai 201508, China
Objective: To investigate the synergistic effect of raltitrexed combined with radiotherapy on Hep-2 cells and its potential mechanism.MethodsCCK-8 assay was used to determine the cell viability after Hep-2 cells were treated with different concentrations of raltitrexed. Hep-2 cells were randomly divided into the control group, the raltitrexed group, the radiation group, and raltitrexed + radiation group. Cell survival curves were fitted with a single-hit multi-target model, cell viability and sensitization enhancement ratio(SNR) of the 4 groups were detected, and apoptosis and cycle changes of Hep-2 cells in 4 groups were detected by flow cytometry.ResultsCCK-8 assay proved that raltitrexed could suppress cell viability in a dose-dependent manner. The single-hit multi-target model showed that the SER of mean death dose (D0) was 1.272.Furthermore, the apoptosis rate and the number of Hep-2 cells at G2/M phase were significantly increased in the group treated with the combination of raltitrexed and X-ray as compared to the group treated with X-ray alone (P<0.05).ConclusionsThe inhibitory effect of raltitrexed combined with X-ray on human laryngeal cancer Hep-2 cells may be related to the induction of tumor cell apoptosis and the increase of G2/M phase arrest.
raltitrexed; X-ray; Hep-2 cells; apoptosis; cell cycle
2017-06-17接受日期2017-08-21
上海市金山區(qū)衛(wèi)生和計(jì)劃生育委員會(huì)青年項(xiàng)目(JSKJ-KTQN-2014-01).Supported by the Jinshan District Health and Family Planning Commission Project in Shanghai (JSKJ-KTQN-2014-01).
王 抒,碩士,主治醫(yī)師. E-mail:wshu830821@163.com
*通信作者(Corresponding author). Tel:021-57039590, E-mail:qiaotk@163.com
10.12025/j.issn.1008-6358.2017.20170522
R 739.65
A
[本文編輯] 姬靜芳