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    采用細(xì)胞質(zhì)特異性定位的熒光探針觀察細(xì)胞多核化現(xiàn)象

    2017-11-07 02:30:12吳峰劉建彬胡澤斌
    關(guān)鍵詞:紫杉醇

    吳峰,劉建彬,胡澤斌

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    采用細(xì)胞質(zhì)特異性定位的熒光探針觀察細(xì)胞多核化現(xiàn)象

    吳峰,劉建彬,胡澤斌

    100142 北京,空軍航空醫(yī)學(xué)研究所(吳峰);100142 北京,空軍總醫(yī)院臨床檢驗(yàn)中心(劉建彬);100050 北京,中國(guó)食品藥品檢定研究院體外診斷試劑檢定所(胡澤斌)

    細(xì)胞多核化是指一個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中同時(shí)存在兩個(gè)或多個(gè)細(xì)胞核[1-5]。細(xì)胞多核化現(xiàn)象的產(chǎn)生通常是由于處于基因組復(fù)制中的細(xì)胞,其染色體運(yùn)動(dòng)發(fā)生異常,形成了不同大小的細(xì)胞核。這些大小不一的細(xì)胞核均被核膜包裹,對(duì)于比較小的細(xì)胞核,通常稱為微核或核片段。細(xì)胞多核化現(xiàn)象既存在于病理狀態(tài)的細(xì)胞,也可以存在于生理狀態(tài)的細(xì)胞中。研究發(fā)現(xiàn):細(xì)胞多核化現(xiàn)象與多種疾病相關(guān)。病理檢驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)多核化的巨型細(xì)胞的存在與慢性炎癥有關(guān)[6-7]。另外,細(xì)胞多核化提示細(xì)胞染色體的不穩(wěn)定,所以細(xì)胞多核化現(xiàn)象也頻繁出現(xiàn)在腫瘤細(xì)胞中[8-9]。

    目前細(xì)胞多核化現(xiàn)象的評(píng)估主要是采用細(xì)胞核染色的方法[1-2, 5]。對(duì)于固定好的細(xì)胞,細(xì)胞核染料,如吉姆薩、蘇木精,可以將細(xì)胞核染色,細(xì)胞質(zhì)基本沒(méi)有著色,從而可以觀察到細(xì)胞質(zhì)中是否存在多個(gè)細(xì)胞核的現(xiàn)象。但是,這種方法觀察到的細(xì)胞邊緣往往模糊不清,難以判斷幾個(gè)細(xì)胞核是位于同一個(gè)細(xì)胞還是相鄰細(xì)胞中。對(duì)于活細(xì)胞中多核化現(xiàn)象的觀察,則通常采用細(xì)胞核熒光染料,如 DAPI、Hoechst,將活細(xì)胞細(xì)胞核染色。通過(guò)細(xì)胞核熒光染色的圖片與明場(chǎng)中的細(xì)胞圖像進(jìn)行疊加,可以確定多個(gè)細(xì)胞核是否位于一個(gè)細(xì)胞內(nèi)。缺點(diǎn)同樣是明場(chǎng)中細(xì)胞的邊界不是很清楚,邊緣難以判斷[9]。

    細(xì)胞質(zhì)特異性定位的熒光探針(cytoplasm localized fluorescent probe,CLFP)是指一類能夠特異性聚積在活細(xì)胞細(xì)胞質(zhì)中的熒光染料[1, 10-15]。將活細(xì)胞與 CLFP 探針進(jìn)行孵育,在熒光顯微鏡下能夠清晰地觀察到細(xì)胞質(zhì)的熒光形態(tài)以及細(xì)胞質(zhì)的邊緣形態(tài)。近年來(lái),CLFP 探針已經(jīng)被逐步地應(yīng)用于各種細(xì)胞成像研究中。本研究中,我們根據(jù)文獻(xiàn)設(shè)計(jì)合成新的 CLFP 探針,并且建立了通過(guò)熒光影像方法區(qū)分細(xì)胞多核化現(xiàn)象。

    1 材料與方法

    1.1 主要儀器和試劑

    色譜用層析硅膠為青島海洋化工廠產(chǎn)品,其余化學(xué)試劑和溶劑購(gòu)自北京偶合科技有限公司和北京伊諾凱科技有限公司,均為市售分析純產(chǎn)品。核磁共振儀為 Bruker AVANCEIII 400,中壓純化色譜儀為 Biotage Isolera One,高分辨質(zhì)譜儀為 Thermo Exactive Orbitrap plus。細(xì)胞培養(yǎng)箱購(gòu)自昆山一恒儀器有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 CLFP 探針的化學(xué)合成 根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,我們采用常用的熒光母核 Boron-dipyrromethene(BODIPY)設(shè)計(jì)了一系列細(xì)胞質(zhì)特異性定位的熒光探針,其合成路線如圖 1 所示[1, 16-18]。

    1.2.1.1 中間體 3 的合成 2,4-二甲基吡咯 1(200 mg,2.1 mmol)被 30 ml 無(wú)水二氯甲烷溶解后,加入 4-氯甲基苯甲酰氯 2(200 mg,1.05 mmol),在氬氣保護(hù)下室溫?cái)嚢?0 min,之后加熱至 50 ℃攪拌 2 h。冷卻后真空蒸餾出大部分溶劑,向母液中加入 30 ml 無(wú)水甲苯和 5 ml 無(wú)水二氯甲烷,室溫?cái)嚢?10 min 后,加入三乙胺(505 mg,5 mmol)和三氟化硼乙醚溶液(760 mg,5 mmol),之后加熱至 50 ℃攪拌 2 h。反應(yīng)結(jié)束后,真空蒸餾出大部分溶劑,加入乙酸乙酯 300 ml,再用飽和 NaCl 溶液洗至中性,有機(jī)相用無(wú)水 Na2SO4進(jìn)行干燥。之后通過(guò)中壓純化色譜儀分離出70 mg 中間體 3,收率 18%。

    1 2 3 4 5

    1.2.1.2 CLFP-1 的合成 將中間體 3(50 mg,0.13 mmol),Cs2CO3(87 mg,0.26 mmol)和 KI(45 mg,0.26 mmol)溶解于 30 ml 無(wú)水乙腈中,再加入正丁胺(95 mg,1.3 mmol),氬氣保護(hù)下室溫?cái)嚢?10 min,再升溫至 80 ℃攪拌 2 h。反應(yīng)結(jié)束后,真空蒸餾出大部分溶劑,加入乙酸乙酯 200 ml,再用飽和 NaCl 溶液洗至中性,有機(jī)相用無(wú)水 Na2SO4進(jìn)行干燥,之后通過(guò)中壓純化色譜儀分離出目標(biāo)化合物。最后將產(chǎn)物經(jīng)過(guò)氯化氫的二氯甲烷溶液制備成鹽酸鹽,得到 30 mg CLFP-1,收率 57%。

    1.2.1.3 CLFP-2 的合成 將中間體 3(50 mg,0.13 mmol),Cs2CO3(87 mg,0.26 mmol)和 KI(45 mg,0.26 mmol)溶解于 30 ml 無(wú)水乙腈中,再加入戊胺(113 mg,1.3 mmol),氬氣保護(hù)下室溫?cái)嚢?10 min,再升溫至 80 ℃攪拌 2 h。反應(yīng)結(jié)束后,真空蒸餾出大部分溶劑,加入乙酸乙酯 200 ml,再用飽和 NaCl 溶液洗至中性,有機(jī)相用無(wú)水 Na2SO4進(jìn)行干燥,之后通過(guò)中壓純化色譜儀分離出目標(biāo)化合物。最后將產(chǎn)物經(jīng)過(guò)氯化氫的二氯甲烷溶液制備成鹽酸鹽,得到 48 mg CLFP-2,收率 80%。

    1.2.2 CLFP 探針的細(xì)胞定位研究 將 HepG2 細(xì)胞接種于 24 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,當(dāng)細(xì)胞覆蓋了培養(yǎng)板的 50%。將上述合成的探針加入到培養(yǎng)基中至終濃度為 1.0 μmol/L。在 37 ℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育大約 20 min 后,用 PBS 緩沖液清洗沒(méi)有吸收的熒光探針。在熒光顯微鏡下,采用藍(lán)光激發(fā),觀察細(xì)胞中的綠色熒光。

    1.2.3 多核化細(xì)胞模型的構(gòu)建 將HepG2 細(xì)胞接種于 24 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,當(dāng)細(xì)胞覆蓋了培養(yǎng)板的 70%,在細(xì)胞培養(yǎng)基中加入 0.5 μmol/L 的紫杉醇,孵育過(guò)夜之后,即可以得到細(xì)胞多核化或細(xì)胞核片段化模型。

    1.2.4 CLFP 探針觀察多核化細(xì)胞模型的方法 將 CLFP 熒光探針加入含有多核化細(xì)胞的細(xì)胞培養(yǎng)基中至終濃度為 1 μmol/L,孵育 20 min。采用 PBS 緩沖液清洗培養(yǎng)基中沒(méi)有吸收的染料,熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞多核化現(xiàn)象。

    2 結(jié)果

    2.1 CLFP 熒光探針的化學(xué)結(jié)構(gòu)鑒定

    基于熒光母核 BODIPY,我們?cè)O(shè)計(jì)合成了兩個(gè) CLFP 熒光探針,分別為CLFP-1(圖 2)和CLFP-2(圖 3)并且對(duì)其進(jìn)行核磁共振(NMR)鑒定和高分辨質(zhì)譜(HRMS)分析。

    圖 2 熒光探針CLFP-1

    圖 3 熒光探針CLFP-2

    2.1.1 CLFP-1 的圖譜信息1H-NMR(400MHz,CDCl3):= 0.91(t,3H),1.21(m,2H),1.41(s,6H),1.71(m,2H),2.45(s,6H),3.05(t,2H),4.30(s,2H),6.05(s,2H),7.42(d,= 8.0Hz,2H)7.68(d,= 8.0Hz,2H)。

    13C-NMR(101MHz,CDCl3):= 12.40,13.12(2C),13.15(2C),19.44,27.63,50.34,60.08,120.99(2C),128.90(2C),130.78(2C),130.80,132.40(2C),136.23(2C),140.85,142.88,155.62(2C)。

    HRMS(ESI):m/z [M + H] 計(jì)算所得 C25H31N3BF2:410.25806;檢測(cè)得到:410.25736。

    2.1.2 CLFP-2 的圖譜信息1H-NMR(400 MHz,CDCl3):= 0.87(t,3H),1.29(br,10H),1.90(br,2H),2.55(br,6H),2.76(br,2H),4.29(br,2H),5.98(s,2H),7.39(d,= 8.0Hz,2H),7.82(d,= 8.0Hz,2H),10.10(br,NH-HCl,2H)。

    13C-NMR(101 MHz,CDCl3):= 13.82,14.48,14.62,21.95,25.53,28.80,45.44(2C),49.87(2C),121.50(2C),129.21(2C),130.95(2C),131.06,131.16,136.56(2C),140.20,142.66(2C),155.95(2C)。

    HRMS(ESI):m/z [M + H] 計(jì)算所得C25H33N3BF2:424.27301;檢測(cè)得到:424.27234。

    2.2 CLFP 熒光探針在 HepG2 細(xì)胞中的定位

    將兩個(gè) CLFP 熒光探針(CLFP-1,CLFP-2)與培養(yǎng)的 HepG2 細(xì)胞進(jìn)行共同孵育。熒光顯微鏡下觀察到兩個(gè)熒光探針均為細(xì)胞質(zhì)特異性定位的探針,圖像邊緣清晰,對(duì)比度高,熒光強(qiáng)度適中(圖 4)。我們?cè)?BODIPY 熒光母核上增加脂溶性的基團(tuán)所生成的 CLFP 探針更加有利于進(jìn)入活細(xì)胞,并且成功地定位于細(xì)胞質(zhì)中,而不進(jìn)入細(xì)胞核中。由于兩個(gè)探針在結(jié)構(gòu)上非常相似(僅側(cè)鏈有 1 個(gè) CH2的差別),所以在細(xì)胞影像圖像的清晰度和對(duì)比度上沒(méi)有明顯的差別。

    圖 4 熒光探針 CLFP-1(A)和CLFP-2(B)在 HepG2 細(xì)胞中的定位(兩個(gè)熒光探針均為細(xì)胞質(zhì)特異性定位熒光探針,且能夠提供清晰的熒光圖像)

    圖 5 CLFP-1(A)和 CLFP-2(B)熒光探針顯示紫杉醇處理的具有細(xì)胞多核化及細(xì)胞核片段化特征的 HepG2 細(xì)胞

    圖 6 Hoechst 染色紫杉醇處理的具有細(xì)胞多核化及細(xì)胞核片段化特征的 HepG2 細(xì)胞(A:Hoechst 染色;B:可見(jiàn)光區(qū)域;C:圖像疊加;圖中箭頭標(biāo)示了一個(gè)多核化的細(xì)胞,但是這個(gè)細(xì)胞與其相鄰細(xì)胞的邊緣在明場(chǎng)照片中不是很清楚,合理評(píng)價(jià)細(xì)胞多核化受到影響)

    2.3 CLFP 熒光探針呈現(xiàn)細(xì)胞多核化及細(xì)胞核片段化

    CLFP-1,CLFP-2 均為較好的細(xì)胞質(zhì)特異性定位熒光染料,能夠特異性地定位于活細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中。接下來(lái),我們采用 0.5 μmol/L 紫杉醇過(guò)夜處理了 HepG2 細(xì)胞,細(xì)胞的染色質(zhì)在遷移的過(guò)程中受到了紫杉醇的抑制,抑制了 HepG2 細(xì)胞核的正常分裂,從而制備了經(jīng)典的細(xì)胞多核化及細(xì)胞片段化的模型。經(jīng)過(guò)熒光染料 CLFP 的染色,由于細(xì)胞核部分不發(fā)生熒光染色,顯示為黑色的孔洞(圖 5),所以,我們可以清楚地看到細(xì)胞質(zhì)中細(xì)胞核數(shù)目。

    同樣,我們采用傳統(tǒng)的細(xì)胞核染料 Hoechst 對(duì)經(jīng)0.5 μmol/L 紫杉醇處理的多核化 HepG2 細(xì)胞進(jìn)行染色。我們同時(shí)進(jìn)行可見(jiàn)光的圖像拍攝以及細(xì)胞核圖像的拍攝,將兩者進(jìn)行疊加,可以觀察到細(xì)胞多核化的現(xiàn)象(圖 6)。但是,傳統(tǒng)的方法,由于各個(gè)小細(xì)胞核片段具有熒光強(qiáng)度,在進(jìn)行圖像記錄時(shí),會(huì)互相影響小細(xì)胞核的邊緣。另外,明場(chǎng)圖像無(wú)法清晰地區(qū)分細(xì)胞核的邊緣,對(duì)于細(xì)胞核片段的計(jì)數(shù)存在一定的缺陷。

    3 討論

    異常的細(xì)胞分裂或融合會(huì)產(chǎn)生多核細(xì)胞,以及任何阻斷細(xì)胞分裂進(jìn)程的相關(guān)因素都可誘導(dǎo)細(xì)胞多核化,細(xì)胞多核化現(xiàn)象廣泛地存在于生物醫(yī)學(xué)研究中。然而,對(duì)于這一現(xiàn)象呈現(xiàn)與評(píng)估目前不是非常的方便,傳統(tǒng)的評(píng)估方法是通過(guò)進(jìn)行細(xì)胞核染色來(lái)確定細(xì)胞核是否存在于一個(gè)細(xì)胞中。不僅操作不方便,而且由于多核化細(xì)胞通常表現(xiàn)出細(xì)胞肥大的現(xiàn)象,且細(xì)胞邊緣不易界定。這些都局限了傳統(tǒng)細(xì)胞核染色來(lái)觀察細(xì)胞多核化。發(fā)展新的實(shí)驗(yàn)技術(shù)來(lái)有效地評(píng)估細(xì)胞多核化非常有意義。

    另外一方面,熒光探針已經(jīng)可以特異性地染色活細(xì)胞中特定細(xì)胞器。CLFP 是一種特異性染色細(xì)胞質(zhì)的熒光探針。CLFP 在各種細(xì)胞中的分布情況以及其光物理學(xué)的特性也已經(jīng)有所報(bào)道了。運(yùn)用 CLFP 進(jìn)行細(xì)胞質(zhì)染色,從而襯托細(xì)胞核的形狀,用來(lái)研究細(xì)胞的多核化。這一方法的特點(diǎn)如下:

    ⑴ CLFP 方法操作簡(jiǎn)單,只需要進(jìn)行探針與觀察細(xì)胞共同孵育 20 min 左右,在熒光顯微鏡下即可觀察。

    ⑵ CLFP 方法能夠清晰顯示各個(gè)細(xì)胞核的形狀,尤其可以顯現(xiàn)出細(xì)胞的輪廓。這就使得對(duì)于評(píng)估多個(gè)細(xì)胞核是否位于一個(gè)細(xì)胞內(nèi)非常簡(jiǎn)便。

    因此,CLFP 方法評(píng)估細(xì)胞多核化現(xiàn)象簡(jiǎn)便易行,圖像分辨清晰,是生物醫(yī)學(xué)研究細(xì)胞多核化現(xiàn)象的一個(gè)有價(jià)值的實(shí)驗(yàn)技術(shù)方法。

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    10.3969/j.issn.1673-713X.2017.05.013

    國(guó)家自然科學(xué)基金(81472396)

    胡澤斌,Email:huzbcmba@163.com

    2017-06-06

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