大葉石上蓮ISSR—PCR反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化

傅瓊+王英強

摘 要 為建立并優(yōu)化大葉石上蓮（Oreocharis benthamii）ISSR-PCR反應(yīng)體系，采用改良的CTAB法提取大葉石上蓮葉片DNA，利用正交試驗設(shè)計方法，從Mg2+、dNTP、引物、Taq DNA聚合酶以及模板DNA 5因素4水平，對大葉石上蓮 ISSR-PCR 反應(yīng)體系進行優(yōu)化，確立了適用于大葉石上蓮的擴增多態(tài)性高、穩(wěn)定性強、條帶清晰的ISSR最佳反應(yīng)體系：2.0 μL的10×PCR 緩沖液，2.0 mmol/L Mg2+，0.25 mmol/L dNTP，0.7 μmol/L 引物，2.0 U Taq DNA聚合酶，30 ng DNA模板（20 μL反應(yīng)體系）。在此基礎(chǔ)上，從100條引物中篩選出13條ISSR擴增引物，其中5條引物最為合適并已確定其最佳退火溫度。

關(guān)鍵詞 大葉石上蓮 ；ISSR ；正交設(shè)計 ；反應(yīng)體系 ；引物篩選

中圖分類號 S339.1 文獻標識碼 A Doi：10.12008/j.issn.1009-2196.2017.05.006

Optimization and Establishment of ISSR-PCR Reaction System for

Oreocharis benthamii

FU Qiong WANG Yingqiang

（Guangdong Key Laboratory of Biotechnology for Plant Development， College of Life Sciences，

South China Normal University， Guangzhou， Guangdong 510631）

Abstract An attempt was made to establish and optimize a stable ISSR-PCR reaction system for Oreocharis benthamii. The leaf DNA of O. benthamii was extracted by using the modified CTAB protocol. An orthogonal design was arranged to optimize ISSR-PCR amplification system with five factors （Mg2+， dNTP， primer， Taq DNA polymerase and DNA template） at four levels， based on which a satisfactory ISSR-PCR reaction system for O. benthamii with high polymorphism， desirable repeatability and clear band patterns was established. This system was a total volume of 20 μL ISSR-PCR system that contained 2.0 μL 10×PCR buffer， 2.0 mmol/L Mg2+， 0.25 mmol/L dNTP， 0.7 μmol/L primer， 2.0 U Taq DNA polymerase， and 30 ng DNA template. With this reaction system 13 ISSR primers were screened from 100 primers， of which five primers were found optimum and their annealing temperatures were proposed.

Keywords Oreocharis benthamii ； ISSR ； orthogonal design ； reaction system ； primers screening

大葉石上蓮（Oreocharis benthamii）是苦苣苔科馬鈴苣苔屬（Oreocharis）的一種多年生草本植物，為我國華南地區(qū)特有物種，一般生長在石灰?guī)r密林下陰濕處，生境相對特殊，其分布范圍以廣東、廣西的華南地區(qū)最為集中[1-2]?？嘬奶浦参餅槲覈戏娇ㄋ固厣车拇硇灾参镱惾?，其生境十分脆弱[3]。長期以來，大面積的天然林被砍伐，資源被過度開發(fā)利用，環(huán)境問題日益突出等使植物賴以生存的環(huán)境遭到嚴重破壞，而對生境要求極為苛刻的大葉石上蓮來說，生境一旦被破壞即難以恢復。目前苦苣苔科的大多數(shù)種類處于瀕危狀態(tài)，而生境明顯退化是該科植物瀕危的主要原因[4-5]。以往關(guān)于大葉石上蓮的研究主要集中在CYC花對稱基因表達[6]、繁育系統(tǒng)[7]、系統(tǒng)學[8-9]等方面。然而隨著分子生物學技術(shù)的發(fā)展，利用以PCR為基礎(chǔ)的分子標記，加快并深入對大葉石上蓮的遺傳多樣性、遺傳結(jié)構(gòu)等研究和保護工作是當務(wù)之急。

ISSR（簡單序列重復區(qū)間多態(tài)性，Inter Simple Sequence Repeat）分子標記是Zietkeiwitcz[10]等在1994年對微衛(wèi)星技術(shù)發(fā)展起來的一種分子標記，可用來檢測兩段SSR之間一段短DNA序列的多態(tài)性。相對于AFLP[11]、RAPD[12]、SSR[10]等分子標記，該技術(shù)雖然為顯性標記，不能區(qū)分純合體和雜合體，但是其多態(tài)性高、操作簡便、成本低。目前該技術(shù)已被廣泛應(yīng)用于遺傳多樣性檢測[13-14]、種質(zhì)資源鑒定[15-16]、遺傳圖譜構(gòu)建[17]等方面研究。本文根據(jù)正交試驗設(shè)計方法，從5因素（Mg2+、dNTP、引物、Taq DNA聚合酶以及模板DNA）4水平對大葉石上蓮ISSR-PCR反應(yīng)體系進行優(yōu)化，以期獲得大葉石上蓮的最佳ISSR擴增反應(yīng)，為下一步大葉石上蓮種質(zhì)資源的遺傳多樣性研究提供可靠的技術(shù)支持。

1 材料與方法

1.1 材料

實驗所需材料采自廣東、廣西等地的大葉石上蓮。每個樣品選取植株中幼嫩葉片（1～2片），清洗并迅速放入茶葉袋，加硅膠快速干燥，封口保存并放入-70℃超低溫冰箱備用。采集標本放置華南師范大學生命科學學院標本館。

用于ISSR-PCR反應(yīng)的PCR Buffer、Taq DNA聚合酶、dNTP、Mg2+均購自 TaKaRa公司。標準分子量（Marker）DL15 000和DL100購于廣東東盛生物科技有限公司。所用引物采用加拿大哥倫比亞大學設(shè)計公布的引物序列，由上海生工生物工程公司合成。經(jīng)初步篩選，引物UBC841[（GA）8Y*C；*Y代表G/C]作為此次正交試驗的引物。GoldViewTM核酸染料購自北京賽百盛基因技術(shù)有限公司。PCR反應(yīng)在美國BIO-RAD公司溫度梯度PCR循環(huán)儀上進行。葉片研磨過程在冷凍混合球磨儀MM400（德國Retsch公司）中進行。

1.2 方法

1.2.1 總DNA的提取

根據(jù)鄒喻蘋[18]的CTAB法，并加以改進，提取大葉石上蓮基因組DNA，利用紫外可見分光光度計（ALLSHENG： Nano-100）檢測 DNA的純度和濃度。用0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA質(zhì)量，并將其濃度稀釋至25 ng/μL，置于-20℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

改良CTAB法：（1）研磨后加預(yù)處理液（2% β-巰基乙醇；6% PVP；洗液（0.2 mol/L Tris-HCl pH 8.0，50 mmol/L EDTA，pH=8.0，0.25 mol/L NaCl）震蕩混勻，放置-20℃ 10 min，12 000 r/min，4℃。（2）取出研磨珠；（3）CTAB提取液（2%的CTAB，pH 8.0的100 mmol/L Tris-HCl，20 mmol/L EDTA，1.4 mol/L NaCl，2% β-巰基乙醇）。

1.2.2 PCR擴增

基于已有的研究[19]，本文確定的擴增程序為：94℃預(yù)變性5 min，94℃變性30 s，46～60℃退火45 s，72℃延伸90 s，共40個循環(huán)，后72℃延伸10 min，4℃低溫保存。1.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產(chǎn)物。

1.2.3 正交試驗設(shè)計

根據(jù)邵果園[19]大巖桐反應(yīng)體系，本文設(shè)計L16（45）正交試驗因素及水平，其中5個因素和4個試驗水平見表1，具體試驗組合見表2。ISSR試驗總體積采用20 μL反應(yīng)體系，每個反應(yīng)管內(nèi)加有1 × PCR Buffer，并用無菌水補至20 μL。將19個處理[另3管為陰性對照（不加模板）]各試驗2次。引物UBC 841的退火溫度根據(jù)其Tm值最初確定為56.3℃。參照何正文[20]等的方法，依據(jù)擴增條帶的敏感性、特異性及穩(wěn)定性即條帶的強弱及雜帶的多少做1～16分計分，分數(shù)越高則表明敏感性、特異性和穩(wěn)定性越好，2次重復分別統(tǒng)計。

1.2.4 引物篩選及最佳退火溫度的確定

從5個地理距離相距較遠的居群中分別選取2個DNA模板，利用優(yōu)化的反應(yīng)體系從100條ISSR引物中進行擴增篩選。再根據(jù)PCR儀器自動形成的12個退火溫度梯度（46、46.4、47.2、48.3、49.9、52、54.3、56.3、57.8、58.9、59.7、60℃），從而最終確定每條引物的最佳退火溫度。

1.2.5 體系穩(wěn)定性檢測

根據(jù)1.2.4篩選得到的條帶清晰、穩(wěn)定性強、多態(tài)性高的引物，隨機選擇其中的引物和不同居群的樣品進行ISSR-PCR擴增，檢測優(yōu)化體系在不同居群的穩(wěn)定性。

2 結(jié)果與分析

2.1 DNA濃度與純度檢測

采用改進的CTAB法提取的大葉石上蓮DNA OD值A(chǔ)260 nm/A230 nm介于1.80～2.05，表明所提取的DNA純度較好（表3）。并且從瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果也能夠看出，改良CTAB法所提取的DNA條帶更加明亮，并具有單一的、較完整的高分子量條帶，且加樣孔沒有殘留的雜質(zhì)（圖1）。無論是在DNA純度還是濃度上，改進的CTAB法比傳統(tǒng)的CTAB法效果更佳，可用于后續(xù)ISSR-PCR反應(yīng)。

2.2 PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化結(jié)果

大葉石上蓮ISSR-PCR正交試驗的電泳結(jié)果（圖2）表明，處理3、4、5、11、12、13、14、15擴增條帶較多。其中以處理4、11、12的條帶更為清晰，主帶更加明顯。因此，這3個處理在大葉石上蓮ISSR-PCR擴增反應(yīng)中效果較好。

參照何正文[20]的方法，對擴增結(jié)果依次計分：7、7；7、4；14、14；16、16；12、10；6、11；5、5；7、7；2、5；2、2；14、14；14、14；10、10；12、12；11、11；2、5。根據(jù)分數(shù)求出每個因素在同一水平下的試驗值之和的平均值（ki），并求出同一因素不同水平間平均值的極差（R）（表4）。極差R越大，代表影響因素對反應(yīng)體系的影響情況越顯著。由表4可知，Taq酶濃度對大葉石上蓮ISSR-PCR反應(yīng)的影響最大，其次為Mg2+和dNTP，DNA 模板和引物的作用較小。5個因素的最佳水平并未在處理組合中出現(xiàn)，但分值最高的4號處理與其較接近，并且4號處理的3個較大影響因素的濃度，與最佳水平相近，考慮到節(jié)約DNA模板，最終確定大葉石上蓮的最佳反應(yīng)體系為4號處理，即在20 μL反應(yīng)體系中包括2.0 μL的10×PCR緩沖液，2.0 mmol/L Mg2+，0.25 mmol/L dNTP，0.7 μmol/L引物，2.0 U Taq DNA聚合酶，DNA模板30 ng。

2.3 引物篩選及退火溫度的確定

根據(jù)最佳反應(yīng)體系，從100條ISSR引物中共篩選出13條引物。其中5條引物具有更強的重復性、穩(wěn)定性和條帶清晰性，并對其進行梯度溫度退火實驗，確定最佳退火溫度（表5）。對引物UBC 879的退火溫度進行梯度篩選，結(jié)果（圖3）表明，退火溫度低于49.9℃時，亮度低，且主帶有彌散；隨著49.9℃退火溫度的升高，引物與模板結(jié)合差，擴增條帶少且模糊，主條帶不明顯。當退火溫度為49.9℃時，條帶清晰，主條帶明顯、亮度高且穩(wěn)定性強。所以，引物UBC 879的最佳退火溫度為50℃。

2.4 最優(yōu)體系的檢驗

利用最佳的反應(yīng)體系對大葉石上蓮2個居群（共42個個體）進行ISSR-PCR擴增，結(jié)果顯示該擴增反應(yīng)體系穩(wěn)定性強、條帶清楚、多態(tài)性高，因而此反應(yīng)體系可適用于大葉石上蓮的遺傳多樣性分析（圖4、5）。

3 結(jié)論與討論

DNA提取是進行分子生物學研究的重要步驟，而高質(zhì)量、高濃度的DNA不僅有利于下游實驗進行，而且可以減少DNA的浪費[21-22]。有研究表明，當A260/A280小于1.8時，DNA中可能有蛋白質(zhì)污染，當A260/A280大于2.0時，DNA中可能有RNA污染[23]，而當A260/A230低于2.0時，DNA中可能有碳水化合物、鹽、酚類等污染[24]。從大葉石上蓮提取的DNA純度（A260/A280、A260/A230）和濃度來看（表3，圖1），傳統(tǒng)CTAB法提取效果均低于改良CTAB法。這可能是大葉石上蓮葉片本身含有較高的多糖、多酚等物質(zhì)，而利用傳統(tǒng)CTAB法提取大葉石上蓮DNA，其多糖、多酚不能去除干凈，這些殘留的物質(zhì)與DNA 共沉淀，形成粘稠的膠狀物，難以溶解以及產(chǎn)生褐變[21]。但利用改進的CTAB法提取大葉石上蓮DNA，在細胞膜破碎前的研磨過程中加入少量的PVP，并在預(yù)處理液和CTAB中加入適量的β-巰基乙醇，這種做法可有效地抑制多酚的氧化反應(yīng)，防止褐化，同時能夠有效的去除多糖，并且還具有較高的DNA濃度。在加入CTAB之前將研磨鋼珠取出，可有效避免因機械碰撞而導致DNA斷裂的后果。

ISSR-PCR擴增反應(yīng)容易受多重因素的影響，例如：Taq DNA聚合酶、Mg2+、dNTP、引物退火溫度等[25-26]。許多研究表明，影響ISSR-PCR反應(yīng)的最大因素是Taq DNA聚合酶[27]和Mg2+[28]，本研究結(jié)果與其具有一致性。在PCR反應(yīng)過程中，如果Taq酶用量過高，將會導致擴增條帶彌散，積累大量的非特異性條帶，并且也提高了實驗成本[27]。適合的Mg2+濃度也非常重要，低的Mg2+濃度會降低Taq酶的活性，從而使反應(yīng)產(chǎn)物減少。并且Mg2+還能與反應(yīng)中其他因素結(jié)合，影響PCR的效應(yīng)及特異性[28]。然而在本研究中，dNTP也表現(xiàn)出較大的影響性，由于dNTP是PCR的原料，其濃度太高產(chǎn)生錯誤摻入，濃度太低產(chǎn)率太低[18]。本研究中模板DNA的用量對PCR擴增的影響較小，可能是因為本研究所選擇的濃度范圍恰好在可影響區(qū)間內(nèi)，但是其純度對擴增效果具有較大的作用。當模板DNA純度較高時，DNA用量少且能擴增出較好的結(jié)果，而純度較低時，DNA樣品中的多糖、多酚及蛋白質(zhì)等都會干擾擴增反應(yīng)。除了以上因素，引物的退火溫度對擴增反應(yīng)的影響也相當重要，不同的引物在同一物種內(nèi)具有不同的最佳退火溫度，而同一引物在不同的物種中也具有不同的最佳退火溫度。

綜上所述，一個適宜的ISSR-PCR擴增反應(yīng)體系受到多重方面的影響。本研究結(jié)果表明，通過正交設(shè)計試驗方法優(yōu)化得出的大葉石上蓮ISSR-PCR擴增反應(yīng)體系具有較高的穩(wěn)定性，可用于今后大葉石上蓮種質(zhì)資源遺傳多樣性研究。

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