木霉屬真菌拮抗金釵石斛病原菌的研究

邢詠梅，李向東，李莉，郭順星

木霉屬真菌拮抗金釵石斛病原菌的研究

邢詠梅，李向東，李莉，郭順星

目的考察石斛屬藥用植物內(nèi)生真菌拮抗軟腐病的真菌。

方法將 179 株內(nèi)生真菌進(jìn)行金釵石斛軟腐病生物防治盆栽試驗(yàn)，以獲得拮抗病原菌終極腐霉的內(nèi)生真菌。將具有拮抗效果的真菌在 PDA 培養(yǎng)基中與終極腐霉進(jìn)行雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙試驗(yàn)并對(duì)其顯微形態(tài)進(jìn)行觀察，利用 3,5-二硝基水楊酸法檢測(cè)真菌的 β-1,3 和 β-1,4 葡聚糖酶活性。

結(jié)果T. koningiopsis 與 T. rogersonii 在盆栽試驗(yàn)和雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙試驗(yàn)中對(duì)終極腐霉具有抑制作用。T. koningiopsis 與 T. rogersonii 菌絲將終極腐霉菌絲包圍并將其破壞；兩者 β-1,3 和 β-1,4 葡聚糖酶活性在所測(cè)試的 5 種真菌中最高。

結(jié)論T. koningiopsis 與 T. rogersonii 可有效抑制終極腐霉；由兩者分泌的 β-1,3 和 β-1,4 葡聚糖酶可能在破壞終極腐霉細(xì)胞壁方面發(fā)揮作用。T. koningiopsis 和 T. rogersonii可作為潛在的生防菌發(fā)揮拮抗終極腐霉作用。

石斛； 腐霉菌屬； T. rogersonii； T. koningiopsis

終極腐霉是農(nóng)作物和經(jīng)濟(jì)作物的重要致病卵菌[1]，對(duì)不同植物造成立枯病、軟腐病和莖腐病等疾病。終極腐霉導(dǎo)致的軟腐病在石斛發(fā)病情況已有報(bào)道[2]；而終極腐霉感染鐵皮石斛可能與病原菌直接穿透宿主植物細(xì)胞壁并分泌細(xì)胞壁降解酶類密切相關(guān)，從而導(dǎo)致宿主細(xì)胞壁逐步被降解[3-4]。

金釵石斛，一種附生型蘭科藥用植物，為著名觀賞花卉。它含有石斛堿、石斛酚等生物活性成分[5]。金釵石斛與鐵皮石斛共同被列入中華人民共和國(guó)藥典。目前，由于過(guò)度采挖以及缺乏有效的保護(hù)，導(dǎo)致金釵石斛處于瀕危狀態(tài)。而大規(guī)模的人工栽培又因其潮濕的生長(zhǎng)環(huán)境，不可避免受到病原性卵菌（終極腐霉）的侵害。受到侵害后的植株葉片出現(xiàn)向葉柄彎曲，發(fā)病植株出現(xiàn)倒伏、死亡。

目前，化學(xué)殺菌劑對(duì)抗植物病原菌的應(yīng)用，一方面使環(huán)境受到污染，另一方面又對(duì)人類的健康造成威脅。因此，植物病原菌的生物防治越來(lái)越受到人們關(guān)注。內(nèi)生真菌廣泛存在于植物中，它們?cè)谫x予宿主植物抵御病原菌、昆蟲和食草動(dòng)物方面發(fā)揮了重要作用[6]。木霉屬真菌已被報(bào)道用于 Pythium spp. 以及 Fusarium spp. 的生物防治[7]。然而，木霉屬真菌拮抗植物病原菌的機(jī)制尚不清楚，可能與其分泌細(xì)胞外水解酶或抗生素樣物質(zhì)有關(guān)[8]。

在以往的研究中，我們從鐵皮石斛、金釵石斛、齒瓣石斛以及球花石斛等石斛屬藥用植物中分離得到 179 株內(nèi)生真菌，并對(duì)這些內(nèi)生真菌是否具有拮抗終極腐霉的活性進(jìn)行篩選。發(fā)現(xiàn)在鐵皮石斛的盆栽試驗(yàn)中，T. rogersonii 和 T. koningiopsis 具有拮抗終極腐霉的活性[2, 9]。然而，內(nèi)生真菌對(duì)感染終極腐霉的金釵石斛是否具有拮抗作用目前報(bào)道較少。因此，本研究從 179 株內(nèi)生真菌中對(duì)感染了終極腐霉的金釵石斛進(jìn)行了病原菌生物防治的篩選。將在盆栽試驗(yàn)中對(duì)終極腐霉具有良好拮抗活性的真菌分別與終極腐霉進(jìn)行共同培養(yǎng)，并觀察兩者相互作用的形態(tài)學(xué)變化；同時(shí)利用 3,5-二硝基水楊酸（DNS）方法對(duì) 5 種真菌細(xì)胞外 β-1,3 葡聚糖酶以及 β-1,4 葡聚糖酶的活性進(jìn)行檢測(cè)，旨在為珍稀瀕危藥用植物金釵石斛資源的保護(hù)以及軟腐病的生物防治提供重要依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 植物及真菌材料 本研究所用終極腐霉是分離自云南省西雙版納地區(qū)石斛栽培基地中的感染軟腐病的金釵石斛栽培苗[2]，病原菌 GenBank注冊(cè)號(hào)為：KP676026[3]。金釵石斛組培苗為本實(shí)驗(yàn)室保存。179 種內(nèi)生真菌分別分離自石斛屬藥用植物根、莖、葉、花、種子等部位，保存于中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥用植物研究所真菌室。

1.1.2 主要儀器 Axio Imager A1 型光學(xué)顯微鏡購(gòu)自德國(guó)蔡司公司；SP-752 紫外可見光分光光度計(jì)購(gòu)自上海光譜儀器有限公司。

1.2 方法

1.2.1 終極腐霉與內(nèi)生真菌的培養(yǎng) 終極腐霉與179 株內(nèi)生真菌于 PDA 培養(yǎng)基中培養(yǎng) 7 d。內(nèi)生真菌從 PDA 培養(yǎng)基中轉(zhuǎn)接至麥麩鋸末固體培養(yǎng)基（鋸末與麥麩各 500 g，加 1 L 水混勻），將每100 g 混勻后的基質(zhì)裝入圓柱形的玻璃瓶中，122 ℃高壓滅菌 120 min。每種內(nèi)生真菌直徑為 8 mm 的生長(zhǎng)旺盛的三片菌片轉(zhuǎn)接入上述培養(yǎng)基中，黑暗條件下培養(yǎng) 3 周。

1.2.2 179 株內(nèi)生真菌在金釵石斛栽培試驗(yàn)中與終極腐霉的拮抗活性篩選 首先將栗樹皮切成直徑約為 1 cm 的小塊，浸入水中 6 h，然后裝入直徑 8 cm，高 14 cm 玻璃瓶中，每瓶裝 2/3 體積，約 180 g，并加入 100 ml 自來(lái)水，122 ℃ 高壓滅菌 180 min。選用口徑為 10 cm，高度為 8 cm 的塑料花盆，以栗樹皮作為栽培基質(zhì)，預(yù)先準(zhǔn)備好無(wú)菌培養(yǎng)的金釵石斛組培苗，將株高均勻一致的組培苗自光培養(yǎng)室取出，于自然光照與溫度下不解開封口膜煉苗 2 周，以提高小苗適應(yīng)性。煉苗后在自然條件下揭開封口膜，用鑷子自瓶中輕取出組培苗（注意不要損傷根部），流水沖凈附著在根部的培養(yǎng)基， 挑選葉片數(shù)在 5 ～ 7 片，株高 4 ～ 6 cm 的組培苗。

栽培時(shí)先用高壓滅菌的栗樹皮鋪滿塑料花盆的二分之一，實(shí)驗(yàn)組在基質(zhì)的中央加入 1 g 內(nèi)生真菌麥麩鋸末固體接種劑，把 4 株組培苗栽到接種劑上，填滿樹皮完成栽培工作。盆栽苗放入可控日光溫室中，溫度維持在（20 ± 2）℃，濕度維持在75% ～ 90% 之間。栽種后噴水 1 次，以利于內(nèi)生真菌的生長(zhǎng)，3 d 后在組培苗的周圍放入直徑 1 cm病原菌 PDA 菌片 2 片，栽種后噴水 1 次，澆水，以后每 3 天噴水 1 次。以組培苗栽種 3 d 后只接直徑 1 cm 病原菌 PDA 菌片 2 片作為陽(yáng)性對(duì)照，只接無(wú)菌麥麩鋸末固體培養(yǎng)基，正常生長(zhǎng)的組培苗作為陰性對(duì)照。試驗(yàn)重復(fù) 3 次，每種處理做 5 個(gè)重復(fù)，定期觀察金釵石斛的生長(zhǎng)情況。

1.2.3 β-1,3 葡聚糖酶活性測(cè)定 將具有拮抗作用的真菌及同屬不同種的其他真菌共 5 種在PDA 培養(yǎng)基中與終極腐霉進(jìn)行雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙試驗(yàn)，并檢測(cè)這 5 種真菌的 β-1,3 和 β-1,4 葡聚糖酶活性。將每種真菌的 3 片菌片（直徑為 8 mm）裝入 200 ml 馬鈴薯土豆液體培養(yǎng)基（葡萄糖20 g/L，土豆浸出液 200 g/L）的 500 ml 三角燒瓶中，25 ℃ 黑暗條件下，120 r/min 振蕩培養(yǎng) 7 d。培養(yǎng)物以濾紙過(guò)濾后，4 ℃、10 000 r/min 離心 10 min，得到的上清液即為無(wú)細(xì)胞培養(yǎng)濾液。隨后將得到的無(wú)細(xì)胞培養(yǎng)濾液以 0.45 μm 濾器過(guò)濾，所得濾液做酶活性測(cè)定。

將海帶多糖溶解于 50 mmol/L 磷酸緩沖液（pH 7.0）中，將 1 ml 0.2% 海帶多糖（w/v）加入至 50 mmol/L 醋酸鈉緩沖液（pH 7.0）中與 1 ml酶溶液在 50 ℃ 孵育 15 min[10]。將 250 μl 海帶多糖加入至 EP 管中，然后加入 250 μl 5 種真菌的培養(yǎng)濾液，反應(yīng) 15 min 后，溶液轉(zhuǎn)移到比色杯，加入 2 ml DNS 溶液，加入去離子水，將體積補(bǔ)充至 5 ml，混合溶液煮沸 3 min，在 520 nm 波長(zhǎng)測(cè)定吸光度。反應(yīng)初的吸光度值設(shè)為對(duì)照，試驗(yàn)重復(fù)3 次，每個(gè)處理設(shè) 10 個(gè)重復(fù)。酶活力單位定義為：在上述反應(yīng)條件下，每分鐘水解 β-1,3 葡聚糖釋放出 1 μmol 葡萄糖所需要的酶量，即為一個(gè)酶活力單位，以 U/ml 表示。

1.2.4 β-1,4葡聚糖酶活性測(cè)定 纖維素溶解于50 mmol/L 磷酸緩沖液（pH 7.0）中，檢測(cè)方法與β-1,3 葡聚糖酶活性測(cè)定方法大致相同。不同之處是反應(yīng)時(shí)間為 60 min。試驗(yàn)重復(fù) 3 次，每組設(shè)10 個(gè)重復(fù)。

1.2.5 雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙試驗(yàn) 根據(jù)盆栽試驗(yàn)中所篩選出來(lái)的對(duì)終極腐霉具有明顯拮抗作用的真菌進(jìn)行雙培養(yǎng)平皿對(duì)峙試驗(yàn)。按照文獻(xiàn)[11]方法進(jìn)行。具有拮抗活性的真菌與終極腐霉分別培養(yǎng)，3 d后分別將每一種真菌與病原菌接種入同一平皿中培養(yǎng)。將活化后的病原菌和內(nèi)生真菌 PDA 菌片（直徑 4 mm）相對(duì)放置于直徑為 9 cm 的 PDA平板上，距離 5 cm，邊距 2 cm，每個(gè)處理組做3 個(gè)重復(fù)[12]。數(shù)據(jù)均采集自對(duì)峙培養(yǎng) 72 h，具有拮抗活性的內(nèi)生真菌而不出現(xiàn)明顯的抑制帶類群，即內(nèi)生真菌對(duì)病原菌有覆蓋消化或重寄生類群。采用蔡司光學(xué)顯微鏡觀察結(jié)合抑制帶的方法確定病原菌被抑制程度。

2 結(jié)果

2.1 內(nèi)生真菌在金釵石斛栽培試驗(yàn)中與終極腐霉的拮抗活性篩選

培養(yǎng) 3 w 后，未加任何內(nèi)生真菌及終極腐霉的陰性對(duì)照組，金釵石斛生長(zhǎng)旺盛（圖 1A）；陽(yáng)性對(duì)照組中的金釵石斛生長(zhǎng) 7 d 即出現(xiàn)枯萎癥狀，瀕臨死亡（圖 1D），生長(zhǎng) 14 d 金釵石斛苗已完全死亡；試驗(yàn)組中除了 T. koningiopsis 和 T. rogersonii以外，大多數(shù)從石斛屬藥用植物分離得到的內(nèi)生真菌在盆栽試驗(yàn)中對(duì)終極腐霉無(wú)明顯拮抗活性；加入T. koningiopsis 和 T. rogersonii 兩種木霉屬真菌的金釵石斛生長(zhǎng)旺盛，與陰性對(duì)照組生長(zhǎng)狀況類似，兩種木霉屬真菌對(duì)終極腐霉具有明顯的拮抗作用（圖 1B，1C）。

圖 1 內(nèi)生真菌對(duì)金釵石斛盆栽試驗(yàn)中終極腐霉的拮抗作用（A：不加內(nèi)生真菌和終極腐霉的陰性對(duì)照組；B：實(shí)驗(yàn)組加入T. koningiopsis 后對(duì)終極腐霉具有明顯拮抗作用；C：實(shí)驗(yàn)組加入 T. rogersonii 后對(duì)終極腐霉具有明顯拮抗作用；D：只加入終極腐霉不加入內(nèi)生真菌的陽(yáng)性對(duì)照組）Figure 1 Antagonistic effects of the endophytic fungi on P. ultimum in pot experiment of D. nobile Lindl. Seedlings (A: D. nobile Lindl. seedlings in the control group grew normally without endophytic fungi or P. ultimum; B: T. koningiopsis showed even greater antagonistic activity than T. erinacecem on P. ultimum and the plant grew even better; C: T. rogersonii could also prevent damage from P. ultimum and D. nobile Lindl. seedlings grew exuberantly; D: The growth condition of D. nobile Lindl. seedlings a week after P. ultimum was inoculated)

2.2 β-1,3 葡聚糖酶和 β-1,4 葡聚糖酶活性

在所測(cè)試的 5 種木霉屬真菌中，以T. koningiopsis 酶活性最高，其中 β-1,3 葡聚糖酶活性為（7.87 ± 0.06）U/ml，β-1,4 葡聚糖酶活性為（10.35 ± 0.04）U/ml；其次是 T. rogersonii 酶活性較高；而 T. viride、T. gamsii 和 T. intricatum 的兩種葡聚糖酶活性較低，以 T. intricatum 為對(duì)照，T. koningiopsis 和 T. rogersonii 的酶活性與之相比，具有顯著性差異（P ＜ 0.05）（表 1）。

表 1 5 種木霉屬真菌細(xì)胞外酶活性Table 1 Extracellular enzymatic activities of five Trichoderma species

2.3 雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙實(shí)驗(yàn)

T. koningiopsis 和 T. rogersonii 兩種具有拮抗活性的真菌的菌絲及分生孢子形態(tài)分別見圖 2A和圖 2B，終極腐霉的菌絲形態(tài)見圖 2E。終極腐霉（圖 2C 和圖 2D 白色箭頭，圖 2F 箭頭）與兩種拮抗菌共同培養(yǎng) 48 h 后，T. koningiopsis 和T. rogersonii 菌絲卷曲交錯(cuò)，類似網(wǎng)狀（圖 2C 星號(hào)），然后將終極腐霉環(huán)繞包圍，終極腐霉菌絲被部分破壞（圖 2C 和圖 2D 白色箭頭）。

3 討論

目前報(bào)道較多的植物病害生防內(nèi)生真菌是木霉屬真菌（Trichoderma spp.），木霉屬真菌是一類分布廣、繁殖快、具有較高生防價(jià)值的真菌，它對(duì)多種病原物都有抑制作用，是一類理想的防治土傳病害的生防真菌[13]。在本研究中，T. koningiopsis 和T. rogersonii 不僅在金釵石斛盆栽試驗(yàn)中對(duì)終極腐霉具有較強(qiáng)的拮抗活性，在雙培養(yǎng)平皿對(duì)峙試驗(yàn)中，這兩種真菌同樣對(duì)終極腐霉表現(xiàn)出了抑制活性。已報(bào)道木霉屬真菌對(duì)病原菌 Sclerotium rolfsii、Rhizoctonia solani、Fusarium oxysporum、F. culmorum 和 Phythium aphanidermatium 所致疾病具有拮抗作用[14]。

T. koningiopsis 和 T. rogersonii 在雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙實(shí)驗(yàn)時(shí)表現(xiàn)出良好的拮抗終極腐霉的活性，其拮抗特點(diǎn)是沒(méi)有明顯的拮抗帶，但病原菌終極腐霉的生長(zhǎng)受到抑制或消亡，隨著雙重培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)，病原菌菌絲體逐漸被消化和吸收，光學(xué)顯微鏡觀察可見病原菌被拮抗菌包繞，出現(xiàn)大量空泡，顯示出被消化分解的現(xiàn)象（圖 2），最終病原菌菌絲體細(xì)胞壁被分解而消亡，顯微鏡下檢測(cè)不到病原菌菌絲。T. koningiopsis 和 T. rogersonii 在所測(cè)試的5 種木霉屬真菌中 β-1,3 葡聚糖酶和 β-1,4 葡聚糖酶活性遠(yuǎn)比其他 3 種木霉屬真菌高。木霉屬真菌產(chǎn)生的細(xì)胞外酶活性可能與其拮抗機(jī)制關(guān)系密切[10]。研究發(fā)現(xiàn)，木霉屬真菌對(duì)抗植物病原菌是通過(guò)分泌分解酶如幾丁質(zhì)酶和 β-1,3 葡聚糖酶而實(shí)現(xiàn)的[15]。因此 T. koningiopsis 和 T. rogersonii發(fā)揮拮抗活性很可能與其分泌 β-1,3 葡聚糖酶和β-1,4 葡聚糖酶有關(guān)。在我們以往的研究中發(fā)現(xiàn)，T. koningiopsis 是分離自 D. devonianum 中的內(nèi)生真菌，同時(shí)對(duì)金黃色葡萄球菌和枯草芽胞桿菌具有明顯的抑制活性[12]。本研究的試驗(yàn)結(jié)果將會(huì)對(duì)金釵石斛生物防治提供新的理論依據(jù)。

圖 2 雙重培養(yǎng)平皿對(duì)峙實(shí)驗(yàn)觀察終極腐霉和兩種木霉屬真菌形態(tài)特征[A：T. rogersonii 培養(yǎng) 48 h 菌絲及分生孢子；B：T. koningiopsis 培養(yǎng) 48 h 菌絲及分生孢子；C：T. rogersonii（黑色箭頭所示），終極腐霉菌絲（白色箭頭所示）；D：T. koningiopsis（黑色箭頭所示），終極腐霉菌絲（白色箭頭所示）；E：終極腐霉培養(yǎng) 24 h；F：T. rogersonii (T.k) 或 T. koningiopsis (T.r) 與終極腐霉（箭頭所示）共同培養(yǎng) 48 h；比例尺：10 μm]Figure 2 Confrontation between P. ultimum and the two Trichoderma sp. strains [A: The hyphae and spore of T. rogersonii growing for 48 h; B: The hyphae and spore of T. koningiopsis growing for 48 h; C: T. rogersonii (black arrow) and P. ultimum mycelium (white arrow); D: T. koningiopsis (black arrow) and P. ultimum mycelium (white arrow); E: P. ultimum mycelium growing for 24 h; F: Interactions between T. rogersonii (T.k) or T. koningiopsis (T.r) and P.ultimum (arrows) for 48 h; Scale bar: 10 μm]

[1] Lévesque CA, Brouwer H, Cano L, et al. Genome sequence of the necrotrophic plant pathogen Pythium ultimum reveals original pathogenicity mechanisms and effector repertoire. Genome Bio, 2010, 11(7):R73.

[2] Li XD, Wang YQ, Wang H, et al. The isolation and identification of pathogen of Dendrobium nobile and Dendrobium candidum damping-off disease. Chin Pharm J, 2011, 46(4):249-252. (in Chinese)李向東, 王云強(qiáng), 王卉, 等. 金釵石斛和鐵皮石斛軟腐病原菌的分離和鑒定. 中國(guó)藥學(xué)雜志, 2011, 46(4):249-252.

[3] Xing YM, Li XD, Liu MM, et al. Morphological and enzymatical characterization of the infection process of Pythium ultimum in Dendrobium officinale (Orchidaceae). Crypto Mycol, 2015, 36(3): 275-286.

[4] Xing YM, Li XD, Guo SX. Morphological studies of Dendrobium nobile infected by the pathogen of the damping-off disease. Chin Med Biotechnol, 2014, 9(3):202-207. (in Chinese)邢詠梅, 李向東, 郭順星. 軟腐病病原菌對(duì)金釵石斛致病性的形態(tài)學(xué)研究. 中國(guó)醫(yī)藥生物技術(shù), 2014, 9(3):202-207.

[5] Bhattacharyya P, Kumaria S, Tandon P. Applicability of ISSR and DAMD markers for phyto-molecular characterization and association with some important biochemical traits of Dendrobium nobile, an endangered medicinal orchid. Phytochemistry, 2015, 117:306-316.

[6] Chen J, Zhang LC, Xing YM, et al. Diversity and taxonomy of endophytic Xylariaceous fungi from medicinal plants of Dendrobium (Orchidaceae). PLoS One, 2013, 8(3):e58268.

[7] Howell CR. Mechanisms employed by Trichoderma Species in the biological control of plant diseases. Plant Dis, 2003, 87(1):4-10.

[8] Almassi F, Ghisalberti EL, Narbey M, et al. New Antibiotics from strains of Trichoderma harzianum. J Natrl Prodt, 1991, 54(2):396-402.

[9] Li XD, Wang YQ, Wang H, et al. Biocontrol of Dendrobium candidum damping-off disease with endophytic fungi. Chin Pharm J, 2013, 48(19):1669-1673. (in Chinese)李向東, 王云強(qiáng), 王卉, 等. 鐵皮石斛軟腐病的生物防治. 中國(guó)藥學(xué)雜志, 2013, 48(19):1669-1673.

[10] Wang JL, Nie GX, Li SZ, et al. Optimal wavelength for determining the content of reducing sugar by DNS method. J Henan Agric Sci, 2010(4):115-118. (in Chinese)王俊麗, 聶國(guó)興, 李素貞, 等. DNS法測(cè)定還原糖含量時(shí)最適波長(zhǎng)的確定. 河南農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010(4):115-118.

[11] Mishra VK. In vitro antagonism of Trichoderma species against Pythium aphanidermatum. J Phytol, 2010, 2(9):28-35.

[12] Xing YM, Chen J, Cui JL, et al. Antimicrobial activity and biodiversity of endophytic fungi in Dendrobium devonianum and Dendrobium thyrsiflorum from Vietman. Curr Microbiol, 2011, 62(4): 1218-1224.

[13] Fravel DR. Commercialization and implementation of biocontrol. Annu Rev Phytopathol, 2005, 43:337-359.

[14] Gajera H, Domadiya R, Patel S, et al. Molecular mechanism of Trichoderma as bio-control agents against phytopathogen system - a review. Curr Res Microbiol Biotechnol, 2013, 1(4):133-142.

[15] Zaldívar M, Velásquez JC, Contreras I, et al. Trichoderma aureoviride 7-121, a mutant with enhanced production of lytic enzymes: its potential use in waste cellulose degradation and/or biocontrol. Electron J Biotechnol, 2001, 4(3):160-168.

Studies on antagonism of Trichoderma sp. against pathogenic fungus of Dendrobium nobile Lindl.

XING Yong-mei, LI Xiang-dong, LI Li, GUO Shun-xing

ObjectiveTo investigate the effects of the growth inhibition between P. ultimum and the potential biocontrol agents which have been isolated from Dendrobium species of medicinal plant.MethodsAntagonistic effects of 179 endophytic fungi on P. ultimum in D. nobile Lindl. Seedlings in pot experiment were performed. In addition, the acitivities of β-1,3 glucanase and β-1,4 glucanase of 5 Trichoderma fungi in cell free filtrate were detected. The dual culture confrontation experiment between the antagonistic fungi and P. ultimum were also studied and the characteristics of the pathogen and the fungi with biocontrol activities were observed under light microscope.ResultsT. koningiopsis and T. rogersonii showed inhibitory effects on P. ultimum after cocultured with D. nobile Lindl. seedlings in pot experiment. The highest activity of β-1,3 glucanase and β-1,4 glucanase was produced by T. koningiopsis, which was followed by T. rogersonii. P. ultimum was damaged due to hyperparasitism by the two Trichoderma fungal strains.ConclusionAfter cocultured with D. nobile Lindl., T. koningiopsis and T. rogersonii could effectively antagonize P. ultimum in pot experiment. The enzymes of β-1,3 glucanase and β-1,4 glucanase produced by Trichoderma species might be involved in destruction of P. ultimum cell wall during antagonism. T. rogersonii and T. koningiopsis could be used as potential biocontrol agents.

DENDROBIUM LOODIGESII; Pythium; T. rogersonii; T. koningiopsis

GUO Shun-xing, Email: sxguo1986@163.com

10.3969/cmba.j.issn.1673-713X.2017.01.007

Chin Med Biotechnol, 2017, 12(1):35-39

山西省煤基重點(diǎn)科技攻關(guān)項(xiàng)目（FT2014-03）；河北省科技計(jì)劃項(xiàng)目（16232503D）

100193 北京，中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院藥用植物研究所中草藥物質(zhì)基礎(chǔ)與資源利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室（邢詠梅、李向東、郭順星）；042400 山西省臨汾市古縣農(nóng)業(yè)委員會(huì)（李莉）

郭順星，Email：sxguo1986@163.com

2016-12-01

www.cmbp.net.cn 中國(guó)醫(yī)藥生物技術(shù), 2017, 12(1):35-39

Author Affiliations:Key Laboratory of Bioactive Substances and Resource Utilization of Chinese Herbal Medicine, Ministry of Education, Institute of Medicinal Plant Development, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100193, China (XING Yong-mei, LI Xiang-dong, GUO Shun-xing); Agriculture Committee of Guxian Country, Linfen, Shanxi 042400, China (LI Li)

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