王倩 傅力
天津醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)與病理生理學(xué)系(天津 300070)
TBC1D1/4在有氧運動促進骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運中的作用
王倩 傅力
天津醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)與病理生理學(xué)系(天津 300070)
TBC1D1(Tre-2/BUB2/cdc1 domain family 1)和TBC1D4(又名Akt Substrate of 160 kDa,AS160)均為骨骼肌細胞內(nèi)的GTP酶激活蛋白(Rab-GTPase activating proteins,Rab-GAP),參與骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白4(GLUT4)在細胞內(nèi)的轉(zhuǎn)位過程,調(diào)節(jié)骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運。最新研究表明,TBC1D1和TBC1D4在有氧運動促進骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運過程中發(fā)揮重要作用,骨骼肌細胞胰島素信號通路活性下降引起GLUT4轉(zhuǎn)位異常、導(dǎo)致骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運能力下降。有氧運動能夠顯著改善機體能量代謝水平,已被廣泛應(yīng)用于臨床肥胖、胰島素抵抗、2型糖尿病等代謝性疾病的治療。本文綜述TBC1D1和TBC1D4在有氧運動促進骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運中的作用,以期為運動防治代謝性疾病的機制研究提供理論依據(jù)。
TBC1D1;TBC1D4;有氧運動;骨骼??;葡萄糖轉(zhuǎn)運
TBC1D1和TBC1D4同屬TBC1D Rab-GTP酶激活蛋白家族,其氨基酸序列的基本結(jié)構(gòu)都包含一個Rab-GAP區(qū)、兩個磷酸酪氨酸結(jié)合區(qū)(phosphotyrosine-binding,PTB)和一個鈣調(diào)節(jié)素結(jié)合域(Calmodin binding domain,CBD),TBC1D1和TBC1D4的Rab-GAP區(qū)氨基酸序列的同源性達79%[1,2]。到目前為止,通過PAS抗體(phospho Akt substrate antibody)能夠和TBC1D1和TBC1D4上的絲氨酸/蘇氨酸殘基發(fā)生反應(yīng)這一特性,發(fā)現(xiàn)TBC1D4共有8個磷酸化位點(絲氨酸318、絲氨酸341、絲氨酸570、絲氨酸588、蘇氨酸642、絲氨酸666、絲氨酸704、絲氨酸751)[3,4],其中包括5個典型的AKT磷酸化位點;而TBC1D1有5個磷酸化位點(絲氨酸235、絲氨酸237、蘇氨酸596、絲氨酸660、絲氨酸700),包括2個典型的AKT磷酸化位點,均毗鄰兩個PTB區(qū)的上游[5]。
TBC1D1和TBC1D4均是進化過程中高度保守的蛋白,小鼠和人類之間的同源性達90%。但是,TBC1D1和TBC1D4具有種屬特異性表達的特點,表現(xiàn)為TBC1D1表達于所有物種,而TBC1D4只在脊椎動物中表達。在同一物種的不同組織中其表達也不盡相同,小鼠酵解型肌纖維中多見TBC1D1,而脂肪組織幾乎不表達TBC1D1;TBC1D4主要表達于小鼠心臟、脂肪組織和氧化型肌纖維[6-8]。除此之外,不同類型骨骼肌纖維中TBC1D1和TBC1D4的表達量差異很大,小鼠脛骨前肌中TBC1D1的表達量分別是趾長伸肌和比目魚肌的3倍和10倍;小鼠趾長伸肌和脛骨前肌中TBC1D4的表達量均為比目魚肌的1/10[8]。然而,TBC1D1和TBC1D4在大鼠不同肌肉組織類型中的表達量并無差異,在人類腓腸肌、脛骨前肌和比目魚肌中的表達量也沒有顯著差異[8]。
眾所周知,有氧運動可顯著提高骨骼肌細胞葡萄糖代謝水平。有氧運動通過激活一磷酸腺苷活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK),引起TBC1D1和TBC1D4發(fā)生磷酸化,促進GLUT4囊泡轉(zhuǎn)位至細胞膜,加速骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運[9]。除此之外,餐后血糖升高時,胰島β細胞分泌釋放胰島素入血,胰島素經(jīng)血液循環(huán)作用于骨骼肌細胞,與細胞膜表面受體結(jié)合引起胰島素受體底物(IRS)磷酸化,后者進一步磷酸化PI3K,并通過PI3K/AKT途徑磷酸化TBC1D1和TBC1D4,促進骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運[10]。本文主要綜述TBC1D1和TBC1D4通過有氧運動激活A(yù)MPK促進骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運。
有氧運動以及AMPK激活劑AICAR(5-Aminoimidazole-4-carboxamide1-β-D-ribofuranoside)均能顯著提高骨骼肌細胞TBC1D1磷酸化水平,增加細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運。機體進行有氧運動時,骨骼肌細胞AMPK活化后促進TBC1D1發(fā)生磷酸化,磷酸化的TBC1D1進而促進細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運。AMPK在所有哺乳動物細胞中作為能量感受蛋白存在,在進化過程中高度保守。在運動情況下,機體組織細胞能量代謝水平升高,ATP消耗增加,造成細胞內(nèi)高AMP/ATP狀態(tài),從而激活A(yù)MPK。AMPK的激活會促進能量產(chǎn)生過程,如葡萄糖轉(zhuǎn)運和脂肪酸氧化,抑制能量消耗過程,如蛋白質(zhì)和脂質(zhì)的合成。有氧運動下,在小鼠及人類骨骼肌細胞中都已證實AMPK是TBC1D1的上游激酶,且發(fā)揮激酶作用的是AMPKα2/β2/γ3三聚體[11]。此外,體外實驗也表明,人類骨骼肌細胞中TBC1D1是AMPK的主要作用底物[12]。
GLUT4是參與骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運的主要蛋白,安靜狀態(tài)下分布于骨骼肌細胞內(nèi),受運動或胰島素等刺激時轉(zhuǎn)位至細胞膜上并與細胞膜融合。融合后的GLUT4成為葡萄糖轉(zhuǎn)運載體,運載葡萄糖進入細胞內(nèi)。GLUT4以多組分囊泡的形式發(fā)揮運載葡萄糖作用,GLUT4囊泡除了含GLUT4之外,主要蛋白還包括胰島素調(diào)節(jié)性氨肽酶(Insulin-regulated amino peptidase, IRAP)、轉(zhuǎn)鐵蛋白受體、分泌載體膜蛋白、6-磷酸甘露糖受體糖蛋白、SNARE(Soluble N-ethylmaleimidesensitive fusion attachment protein receptors)和GTP結(jié)合蛋白。胞漿中的Rab蛋白通過與GTP結(jié)合的活化形式和與GDP結(jié)合的失活形式調(diào)控GLUT4囊泡的轉(zhuǎn)位。研究表明,人類基因組中存在60余種Rab蛋白,骨骼肌細胞中參與葡萄糖轉(zhuǎn)運的Rab蛋白包括Rab2, Rab8b,Rab10和Rab14[13,14]。基礎(chǔ)狀態(tài)下,骨骼肌細胞內(nèi)TBC1D1通過與IRAP這一GLUT4囊泡的主要蛋白質(zhì)相互作用定位于GLUT4囊泡上,成為GLUT4囊泡的一部分[15],此時TBC1D1不發(fā)生磷酸化,具有Rab-GAP活性,細胞內(nèi)Rab蛋白裝載GDP,GLUT4囊泡不能轉(zhuǎn)位至細胞膜,導(dǎo)致葡萄糖不能被運載進入細胞內(nèi);運動情況下,TBC1D1在AMPK的刺激下發(fā)生磷酸化,失去Rab-GAP活性,細胞內(nèi)Rab蛋白裝載GTP致GLUT4囊泡轉(zhuǎn)位至細胞膜,葡萄糖被運載進入細胞內(nèi)(詳見圖1)。實驗證實,TBC1D1與GLUT4囊泡的結(jié)合對骨骼肌細胞內(nèi)GLUT4囊泡的穩(wěn)定性發(fā)揮重要作用,TBC1D1的缺失或突變會導(dǎo)致大量GLUT4囊泡進入溶酶體降解[16]。
與野生型小鼠相比,在有氧運動刺激下,TBC1D1基因敲除(TBC1D1-/-)小鼠骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運能力顯著降低,而由胰島素刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運并未發(fā)生改變,同時TBC1D1-/-小鼠的運動能力顯著下降,提示TBC1D1在有氧運動引起的葡萄糖轉(zhuǎn)運過程中發(fā)揮重要作用。但是TBC1D1的缺失對小鼠的最大運動速度并無影響[16]。然而,TBC1D1-/-小鼠骨骼肌細胞線粒體氧化磷酸化蛋白水平、非酯化脂肪酸水平以及糖原水平與野生型小鼠相比均沒有顯著變化[16]。與野生型小鼠相比,TBC1D1-/-小鼠趾長伸肌中GLUT4的表達水平減少了50%,而TBC1D1-/-小鼠和野生型小鼠趾長伸肌中GLUT4 mRNA表達水平?jīng)]有顯著差異,表明TBC1D1可能對GLUT4轉(zhuǎn)錄后修飾過程有潛在影響[17]。TBC1D1-/-小鼠骨骼肌細胞中GLUT4表達水平的顯著降低只發(fā)生于TBC1D4表達較少的肌肉類型,如趾長伸肌和脛骨前肌中,說明在骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運中TBC1D4對TBC1D1的缺失具有補償效應(yīng)。值得注意的是,TBC1D4-/-小鼠骨骼肌細胞中GLUT4表達水平的降低發(fā)生在脛骨前肌和脂肪組織中[18]。與野生型小鼠相比,TBC1D1-/-小鼠經(jīng)有氧運動后,其骨骼肌細胞甘油三酯水平顯著下降,說明在有氧運動干預(yù)下,TBC1D1-/-小鼠骨骼肌細胞脂肪酸氧化水平增加[16]。實驗證實,人類骨骼肌細胞中,TBC1D1不同磷酸化位點對不同的刺激產(chǎn)生磷酸化效應(yīng),TBC1D1-絲氨酸237、絲氨酸660和絲氨酸700位點只在運動干預(yù)下發(fā)生磷酸化,而TBC1D1-蘇氨酸596在運動干預(yù)和胰島素作用下均能發(fā)生磷酸化改變[11]。
與野生型小鼠相比,有氧運動對AMPKα2基因敲除(AMPKα2-/-)小鼠骨骼肌細胞中TBC1D1磷酸化位點的磷酸化作用明顯降低[19],因此,有氧運動下,AMPKα2-/-小鼠骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運顯著減少[20],但是有氧運動對AKT失活小鼠骨骼肌細胞中TBC1D1磷酸化位點的作用以及葡萄糖攝入影響沒有異常[21]。野生型小鼠趾長伸肌收縮會增加TBC1D1-絲氨酸237和TBC1D1-蘇氨酸596的磷酸化,但是AMPKα2-/-小鼠中,在趾長伸肌收縮作用下,任何磷酸化位點都沒有磷酸化水平的增加[21]。同時,有氧運動也會增強骨骼肌細胞中TBC1D1和14-3-3蛋白的結(jié)合能力,但是AMPKα2-/-小鼠骨骼肌細胞中這種結(jié)合作用不會在有氧運動作用下增強,而AKT的失活不會影響有氧運動下骨骼肌細胞中TBC1D1和14-3-3蛋白的結(jié)合作用的增強[21]。跑臺運動干預(yù)能夠增加小鼠趾長伸肌TBC1D1-絲氨酸237、蘇氨酸596、絲氨酸660和絲氨酸700的磷酸化水平,但在比目魚肌中以上各個磷酸化位點的磷酸化水平均未發(fā)生改變,提示有氧運動對TBC1D1磷酸化活性的影響具有骨骼肌類型特異性,即酵解型快肌纖維的TBC1D1磷酸化水平易受運動干預(yù)的影響,而氧化型纖維TBC1D1磷酸化水平無顯著變化。此外,人體實驗表明,骨骼肌細胞TBC1D1還參與調(diào)控細胞代謝的能量感受信號AMPK相關(guān)途徑,但具體機制尚需進一步研究來證實[22]。
圖1 TBC1D1/4調(diào)節(jié)骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運作用模式
骨骼肌細胞中TBC1D4主要在胰島素作用下發(fā)生磷酸化從而促進葡萄糖轉(zhuǎn)運,但有研究表明,TBC1D4也是骨骼肌細胞中AMPK的作用靶點,同時AMPK的激活劑AICAR也能夠增加TBC1D4的磷酸化水平[24]。表達TBC1D4突變體的骨骼肌細胞中,有氧運動刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運降低20%~25%,進一步佐證了TBC1D4參與有氧運動刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運。
研究表明,TBC1D4-蘇氨酸642位點磷酸化是骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運機制的關(guān)鍵步驟[23]。有氧運動刺激下,骨骼肌細胞中TBC1D4以與TBC1D1相同的方式作用于GLUT4囊泡,從而對葡萄糖轉(zhuǎn)運發(fā)揮作用(詳見圖1)。實驗證明,當骨骼肌細胞中表達能夠抑制TBC1D4磷酸化的突變體時,有氧運動刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運會明顯減少。小鼠脛骨前肌中TBC1D4會影響有氧運動刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運,但是對胰島素刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運沒有影響[25],其中的機制尚不清楚。質(zhì)譜分析顯示,與其他骨骼肌組織類型相比,有氧運動后小鼠腓腸肌中TBC1D4有更高的磷酸化水平[26]。當小鼠進行30分鐘跑臺運動后,其腓腸肌組織中TBC1D4-蘇氨酸642磷酸化活性即增加[27]。而即使小鼠進行跑臺運動達60分鐘后,其趾長伸肌組織中TBC1D4上所有磷酸化位點均未發(fā)生變化[28],同樣有氧運動亦未引起比目魚肌組織TBC1D4的磷酸化活性變化,提示有氧運動對TBC1D4磷酸化水平的增強作用具有骨骼肌類型表現(xiàn)特異性,但是這種特異性變化的機制目前尚不清楚。而當大鼠進行有氧運動后3~4 h,其脛骨前肌組織中TBC1D4-蘇氨酸642、絲氨酸588的磷酸化水平均顯著提高[28]。眾所周知,細胞內(nèi)的Ca2+是骨骼肌收縮的必要條件,小鼠脛骨前肌組織中,表達CBD突變體的TBC1D4不會影響胰島素刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運,但是會顯著抑制有氧運動引起的葡萄糖轉(zhuǎn)運[29],提示Ca2+也是有氧運動增強骨骼肌細胞中TBC1D4磷酸化水平的必要條件。
耐力運動可增加氧化型肌纖維中TBC1D4的磷酸化水平。正常成年男性進行自行車訓(xùn)練(最大攝氧量67%)時,運動持續(xù)時間在30分鐘以內(nèi),骨骼肌組織TBC1D4的磷酸化水平未發(fā)現(xiàn)顯著變化,運動持續(xù)時間達到60分鐘時,骨骼肌組織TBC1D4的磷酸化水平明顯升高,且隨著運動持續(xù)時間的延長其磷酸化水平隨之增加,并在90分鐘時達到峰值[26]。雖然正常成年男性有氧運動持續(xù)時間達到60分鐘時,骨骼肌組織TBC1D4磷酸化水平才會升高,但是14-3-3蛋白與TBC1D4的結(jié)合能力只在運動結(jié)束后即刻有所增加[28]。最新研究表明,在持續(xù)時間為60分鐘的電刺激實驗中,小鼠骨骼肌細胞中TBC1D4的磷酸化水平升高是短暫的,但是葡萄糖轉(zhuǎn)運一直持續(xù)進行[3],提示有氧運動刺激的骨骼肌細胞中TBC1D4磷酸化和葡萄糖轉(zhuǎn)運并不是伴隨進行的。與其同源物TBC1D1一樣,人類骨骼肌細胞中TBC1D4不同磷酸化位點對不同的刺激產(chǎn)生磷酸化效應(yīng),TBC1D4-絲氨酸588、絲氨酸751僅在運動干預(yù)下發(fā)生磷酸化,TBC1D4-絲氨酸318只在胰島素作用下發(fā)生磷酸化,TBC1D4-絲氨酸341、蘇氨酸642和絲氨酸704位點在運動干預(yù)和胰島素作用下均能發(fā)生磷酸化,而TBC1D4-絲氨酸666在運動干預(yù)和胰島素作用下均不能發(fā)生磷酸化[25];與TBC1D1不同的是,有氧運動對TBC1D4的磷酸化作用與AMPKα2/β2/ γ1三聚體相關(guān)[11]。與有氧運動不同,急性運動刺激下,正常成年男性骨骼肌組織TBC1D4的磷酸化水平在運動結(jié)束即刻會降低,直到運動結(jié)束后幾小時有所增加,提示不同運動形式對骨骼肌組織TBC1D4的作用機制可能有所不同[30]。
在有氧運動過程中,TBC1D1和TBC1D4共同促進骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運,同時二者具有補償效應(yīng)。TBC1D1已被證實是骨骼肌細胞AMPK的主要作用底物,雖然TBC1D4主要在胰島素刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運中發(fā)揮作用,但有研究表明其對有氧運動刺激的葡萄糖轉(zhuǎn)運也具有促進效應(yīng)[29]。有氧運動激活A(yù)MPK,進而磷酸化骨骼肌細胞中的TBC1D1和TBC1D4,使其喪失Rab-GAP活性,從而促進GLUT4囊泡向細胞膜的轉(zhuǎn)位,促進骨骼肌細胞中葡萄糖的攝入;與此同時,TBC1D1和TBC1D4對細胞內(nèi)GLUT4囊泡的穩(wěn)定性也具有重要作用。探索有氧運動下TBC1D1和TBC1D4在骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運中的作用對于胰島素抵抗、肥胖、2型糖尿病等代謝性疾病的預(yù)防及治療具有積極的意義。但是目前對TBC1D1和TBC1D4在骨骼肌細胞葡萄糖轉(zhuǎn)運中作用的具體機制所知甚少,仍然有許多問題需要更為深入的探討。
[1]Miinea CP,Sano H,Kane S,et al.AS160,the Akt substrate regulating GLUT4 translocation,has a functional Rab GTPase-activating protein domain[J].Biochem J,2005,391:87-93.
[2]Roach WG,Chavez JA,Miinea CP,et al.Substrate specificity and effect on GLUT4 translocation of the Rab GTPaseactivating protein Tbc1d1[J].Biochem J,2007,403:353-358.
[3]Erik A.Richter,Neil B.Ruderman.AMPK and the biochemistry of exercise:Implications for human health and disease[J].Biochem J,2009,418(2):261-275.
[4]Roach WG,Chavez JA,Miinea CP,et al.Substrate specificity and effect on GLUT4 translocation of the Rab GTPase activating protein Tbc1d1[J].Biochem J,2007,403:353-358.
[5]Chen S,Murphy J,Toth R,et al.Complementary regulation of TBC1D1 and AS160 by growth factors,insulin and AMPK activators[J].Biochem J,2008,409:449-459.
[6]Chadt A,Leicht K,Deshmukh A,et al.Tbc1d1 mutation in lean mouse strain confers leanness and protects from0 diet-induced obesity[J].Nat Genet,2008,40:1354-1359.
[7]Chavez JA,Roach WG,Keller SR,et al.Inhibition of GLUT4 translocation by Tbc1d1,a Rab GTPase-activating protein abundant in skeletal muscle,is partially relieved by AMP-activated protein kinase activation[J].J Biol Chem,2008,283:9187-9195.
[8]Taylor EB,An D,Kramer HF,et al.Discovery of TBC1D1as an insulin-,AICAR-,and contraction-stimulated signaling nexus in mouse skeletal muscle[J].J Biol Chem,2008,283:9787-9796.
[9]Chen S,Murphy J,Toth R,et al.Complementary regulation of TBC1D1 and AS160 by growth factors,insulin and AMPK activators[J].Biochem J,2008,409:449-459.
[10]Bryant N,Govers R,James D,et al.Regulated Transport Of The Glucose Transporter GLUT4[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2002,3(4):267-277.
[11]Treebak JT,Pehmoller C,Kristensen JM,et al.Acute exercise and physiological insulin induce distinct phosphorylation signatures on TBC1D1 and TBC1D4 proteins in human skeletal muscle[J].J Physiol,2014,592:351-375.
[12]FrosigC,PehmollerC,BirkJB,etal.Exerciseinduced TBC1D1 Ser237 phosphorylation and 14-3-3 protein binding capacity in human skeletal muscle[J].J Physiol,2010,588:4539-4548.
[13]Roach WG,Chavez JA,Miinea CP,et al.Substrate specificity and effect on GLUT4 translocation of the Rab GTPaseactivating protein Tbc1d1[J].Biochem J,2007,403:353-358.
[14]Miinea CP,Sano H,Kane S,et al.AS160,the Akt substrate regulatingGLUT4translocation,hasafunctionalRab GTPase-activating protein domain[J].Biochem J,2005,391:87-93.
[15]Tomas E,Sevilla L,PalacinM,et al.The insulin-sensitive GLUT4storagecompartmentisapostendocyticand heterogeneous population recruited by acute exercise[J]. Biochem Biophys Res Commun,2001,284(2):490-495.
[16]Stockli J,Meoli CC,Hoffman NJ,et al.The RabGAP TBC1D1 plays a central role in exercise-regulated glucose metabolism in skeletal muscle[J].Diabetes,2015,64:1914-1922.
[17]Szekeres F,Chadt A,Tom RZ,et al.The Rab-GTPaseactivating protein TBC1D1 regulates skeletal muscle glucosemetabolism[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2012,303:E524-E533.
[18]Lansey MN,Walker NN,Hargett SR,et al.Deletion of Rab-GAP AS160 modifies glucose uptake and GLUT4 translocation in primary skeletal muscles and adipocytes and impairs glucose homeostasis[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2012,303:E1273-E1286.
[19]Vichaiwong K,Purohit S,An D,et al.Contraction regulates site-specific phosphorylation of TBC1D1 in skeletal muscle [J].Biochem J,2010,431:311-320.
[20]Mu J,Brozinick JT Jr,Valladares O,et al.A role for AMP-activated protein kinase in contraction-and hypoxia-regulated glucose transport in skeletal muscle[J].Mol Cell,2001,7:1085-1094.
[21]Pehmoller C,Treebak JT,Birk JB,et al.Genetic disruption of AMPK signaling abolishes both contraction-and insulin-stimulated TBC1D1 phosphorylation and 14-3-3 binding in mouse skeletal muscle[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2009,297:E665-E675.
[22]Jessen N,An D,Lihn AS,et al.Exercise increases TBC1D1 phosphorylation in human skeletal muscle[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2011,301(1):E164-E171.
[23]Cartee GD.Roles of TBC1D1 and TBC1D4 in insulin-and exercise-stimulated glucose transport of skeletal muscle[J]. Diabetologia,2015,58:19-30.
[24]Bruss MD,Arias EB,Lienhard GE,et al.Increased phosphorylation of Akt substrate of 160 k Da(AS160)in rat skeletal muscle in response to insulin or contractile activity[J]. Diabetes,2005,54:41-50.
[25]Kramer HF,Witczak CA,Taylor EB,et al.AS160 regulates insulin-and contraction stimulated glucose uptake in mouse skeletal muscle[J].J Biol Chem,2006,281:31478-31485.
[26]Treebak JT,Birk JB,Rose AJ,et al.AS160 phosphorylation is associated with activation of α2β2γ1—but not α2β2γ3—AMPK trimeric complex in skeletal muscle during exercise in humans[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2007,292:E715-E722.
[27]Kramer HF,Witczak CA,F(xiàn)ujiiN,et al.Distinct signals regulate AS160 phosphorylation in response to insulin,AICAR,and contraction in mouse skeletal muscle[J]. Diabetes,2006,55:2067-2076.
[28]Howlett KF,Mathews A,Garnham A,et al.The effect of exercise and insulin on AS160 phosphorylation and 14-3-3 binding capacity in human skeletal muscle[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2008,294:E401-E407.
[29]Kramer HF,Taylor EB,Witczak CA,et al.Calmodulin-binding domain of AS160 regulates contraction-but not insulin-stimulated glucose uptake in skeletal muscle[J]. Diabetes,2007,56:2854-2862.
[30]Guerra B,Guadalupe-Grau A,F(xiàn)uentes T,et al.SIRT1,AMP-activated protein kinase phosphorylation and downstream kinases in response to a single bout of sprint exercise:influence of glucose ingestion[J].Eur J Appl Physiol,2010,109:731-743.
2016.03.11
國家自然科學(xué)基金面上項目(31571220,31671237),天津市科技項目計劃(13ZCZDSY02000)
傅力,Email:lifu@tmu.edu.cn