許家棟 上官婉 徐孟杰 潘亞囡 余志達(dá) 張偉
【摘 要】 氧化應(yīng)激產(chǎn)生的自由基可作為氧化劑和炎癥介質(zhì)參與類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的病理過程;超氧化物歧化酶是重要的抗氧化酶,對(duì)維持機(jī)體氧化還原水平的動(dòng)態(tài)平衡具有重要作用。對(duì)氧化應(yīng)激、超氧化物歧化酶在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎病理中的調(diào)控研究,不僅為揭示“氧化-抗氧化”在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎發(fā)生機(jī)制中的作用奠定基礎(chǔ),也為尋求干預(yù)治療類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎藥物提供新選擇。
【關(guān)鍵詞】 關(guān)節(jié)炎,類風(fēng)濕;氧化應(yīng)激;超氧化物歧化酶;抗氧化;綜述
類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)是一種病因復(fù)雜的炎癥性自身免疫性疾病?;み^度增殖形成血管翳,并導(dǎo)致關(guān)節(jié)軟骨和骨損傷是其典型病理特征[1]。研究表明,氧化應(yīng)激在RA病理過程中具有重要作用[2]。機(jī)體抗氧化系統(tǒng)由抗氧化酶系和非酶抗氧化劑組成,其中超氧化物歧化酶(SOD)是體內(nèi)最重要的抗氧化酶[3]。對(duì)RA患者體內(nèi)氧化應(yīng)激、SOD抗氧化作用及調(diào)控關(guān)系研究,為揭示RA病理機(jī)制、尋找新型抗RA藥物具有重要意義。
1 RA與氧化應(yīng)激
氧化應(yīng)激是體內(nèi)氧化與抗氧化作用失衡并傾向氧化的一種狀態(tài)。氧化應(yīng)激會(huì)導(dǎo)致中性粒細(xì)胞炎性浸潤,促進(jìn)活性氧簇(ROS)和活性氮簇(RNS)自由基的大量產(chǎn)生。ROS主要包括超氧陰離子(O2-)、過氧化氫(H2O2)和羥自由基(·OH);RNS主要包括一氧化氮(NO)和過氧亞硝基(ONOO-)。過量自由基會(huì)造成機(jī)體內(nèi)多種分子的氧化或硝化損傷,與包括RA在內(nèi)的多種炎癥性疾病的發(fā)生密切相關(guān)[4]。
1.1 自由基來源 ROS是自身免疫性疾病的風(fēng)險(xiǎn)增強(qiáng)因子,炎癥促使RA患者關(guān)節(jié)滑液中的巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞活化,通過腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細(xì)胞介素-1β(IL-1β)、γ-干擾素(IFN-γ)等因子激活NADPH氧化酶途徑產(chǎn)生大量的ROS(主要為O2-)[5]。RA患者滑膜組織或滑液高表達(dá)的環(huán)氧化酶、脂氧合酶、黃嘌呤氧化酶也參與ROS的生成[6]。此外,滑膜增殖和關(guān)節(jié)囊纖維化導(dǎo)致關(guān)節(jié)腔內(nèi)壓升高,顯著降低毛細(xì)血管流速,造成滑液PO2低于靜脈血水平,誘導(dǎo)關(guān)節(jié)內(nèi)重復(fù)性的缺血再灌注損傷,組織損傷又會(huì)促進(jìn)Fe和Cu離子的釋放,催化自由基反應(yīng)產(chǎn)生ROS[5]。環(huán)境因素如抽煙也是誘發(fā)RA的風(fēng)險(xiǎn)因子,煙霧中含有的有機(jī)醌類化合物能產(chǎn)生O2-等自由基,是機(jī)體ROS的重要來源[7]。
體內(nèi)產(chǎn)生的O2-可被SOD催化生成H2O2,H2O2可由CAT/GSH-Px催化分解為H2O和O2,或經(jīng)Fenton反應(yīng)轉(zhuǎn)化生成為水溶性的·OH,高活性的·OH被認(rèn)為是ROS產(chǎn)生細(xì)胞毒性的主要作用形式[8]。此外,中性粒細(xì)胞相關(guān)髓過氧化物酶(MPO)也能將H2O2轉(zhuǎn)化生成HOCl;HOCl既可與H2O2反應(yīng)產(chǎn)生單態(tài)氧,也可與氨基酸反應(yīng)生成氯胺[2]。
除ROS外,滑膜成纖維細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、成骨細(xì)胞在應(yīng)答促炎癥因子反應(yīng)時(shí),高表達(dá)的一氧化氮合酶(NOS)催化精氨酸生成大量NO,NO能與O2-反應(yīng)生成ONOO-,ONOO-又可轉(zhuǎn)化為ONOOH、·NO2等RNS自由基[9]。
1.2 自由基的損傷作用 對(duì)RA患者血清和滑液檢測發(fā)現(xiàn),多種氧化標(biāo)記物如丙二醛(MDA)、蛋白羰基、氧化型透明質(zhì)酸、8-羥基脫氧鳥苷(8-OHdG)等水平顯著增加,表明過量自由基對(duì)多種分子造成了氧化損傷。
1.2.1 對(duì)蛋白的損傷 ROS能對(duì)多種氨基酸氧化并形成特征性產(chǎn)物(如二硫化物、蛋白羰基衍生物、氯化氨基酸等),造成蛋白交聯(lián)并導(dǎo)致蛋白變性而喪失功能[4]。Starmp等[10]發(fā)現(xiàn),RA患者血清、滑膜組織中的MPO水平顯著升高,且與RA疾病活動(dòng)呈正相關(guān),由MPO催化生成的HOCl是造成關(guān)節(jié)蛋白氧化損傷的關(guān)鍵因子;此外,MPO還可能通過轉(zhuǎn)化LDL和HDL并使其功能失調(diào),促使動(dòng)脈粥樣硬化斑塊內(nèi)形成泡沫細(xì)胞,減少胞內(nèi)膽固醇外流,增強(qiáng)RA患者動(dòng)脈粥樣硬化的風(fēng)險(xiǎn)。Vytá?ek等[11]報(bào)道了RA患者血清中兩種晚期糖基化終產(chǎn)物(AGEs)水平異常升高,AGEs源自氧化應(yīng)激對(duì)蛋白造成的非酶促損傷,推測其可能參與了RA自身免疫反應(yīng)。
1.2.2 對(duì)脂質(zhì)的損傷 膜脂,特別是磷脂分子上的多不飽和脂肪酸易受ROS氧化,氧化的脂質(zhì)可形成脂自由基(·L)、脂質(zhì)過氧自由基(·LOO)、內(nèi)過氧化物,并最終生成能對(duì)DNA和蛋白造成損傷的MDA和4-羥基壬烯酸[4]。脂質(zhì)過氧化會(huì)導(dǎo)致諸如膜流動(dòng)性降低、膜結(jié)合受體或酶功能喪失等作用,參與多種疾病的病理過程。對(duì)RA患者血漿、紅細(xì)胞、滑膜等組織的檢測發(fā)現(xiàn)其脂質(zhì)過氧化物水平與正常人相比均顯著升高[12-13]。
1.2.3 對(duì)DNA的損傷 ROS不僅能攻擊DNA分子中的堿基和脫氧核糖產(chǎn)生各種加合物,還可與引起DNA的單、雙鏈斷裂或DNA-蛋白交聯(lián),從而造成DNA突變損傷。鳥嘌呤氧化加合物8-OHdG被認(rèn)為是DNA氧化損傷的特征性分子標(biāo)志物,可參與突變、癌變和衰老過程。Seven等[14]對(duì)20例RA患者血液和滑液中的DNA氧化損傷評(píng)估發(fā)現(xiàn),患者8-OHdG水平顯著升高且與氧化應(yīng)激增強(qiáng)、總抗氧化水平下降及病情的嚴(yán)重程度相關(guān);而當(dāng)藥物干預(yù)治療后,患者血清、尿液中的8-OHdG含量則明顯下降[15-16]。Lee等[17]通過體外實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),氧化應(yīng)激會(huì)導(dǎo)致RA滑膜成纖維細(xì)胞中參與DNA修復(fù)的關(guān)鍵蛋白hMSH6表達(dá)下降,造成DNA錯(cuò)配修復(fù)系統(tǒng)異常,從而干擾DNA堿基突變修復(fù)。因此,氧化應(yīng)激不僅直接對(duì)DNA分子造成損傷,還能抑制DNA修復(fù)系統(tǒng)。
1.2.4 對(duì)關(guān)節(jié)軟骨的損傷 ROS能破壞透明質(zhì)酸、降解關(guān)節(jié)軟骨并造成骨損傷。透明質(zhì)酸是關(guān)節(jié)滑液的主要生物大分子,也是軟骨蛋白聚糖的重要組分,對(duì)滑液的黏度起重要作用,自由基介導(dǎo)炎癥關(guān)節(jié)滑液中透明質(zhì)酸的降解已得到證實(shí)[18]。ROS不僅能使透明質(zhì)酸解聚,導(dǎo)致關(guān)節(jié)滑液黏度下降、抗蛋白酶失活并誘導(dǎo)骨吸收作用,還可通過抑制軟骨基質(zhì)生成、誘導(dǎo)基質(zhì)分解酶表達(dá)直接降解基質(zhì)的方式參與軟骨降解過程[19]。轉(zhuǎn)錄因子NF-E2相關(guān)因子2(Nrf2)是一種參與氧化應(yīng)激防御的轉(zhuǎn)錄因子,在關(guān)節(jié)炎性條件下,Nrf2被激活并與抗氧化應(yīng)激元件(ARE)結(jié)合,啟動(dòng)或增強(qiáng)多HO-1、γ-GCS、硫氧還蛋白等抗氧化酶的表達(dá),參與氧化應(yīng)激防
御[20]。Wruck等[21]將AIA小鼠的Nrf2基因敲除后發(fā)現(xiàn),小鼠關(guān)節(jié)組織中的VEGF-A水平顯著升高,關(guān)節(jié)軟骨損傷程度加重,這表明氧化應(yīng)激與RA關(guān)節(jié)軟骨的降解密切相關(guān)。
1.2.5 RNS的損傷作用 RNS除直接造成脂質(zhì)氧化、堿基修飾、DNA斷裂等損傷外,還能激活核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)信號(hào)通路[5]。ONOO-質(zhì)子化會(huì)消耗大量的-SH,導(dǎo)致細(xì)胞中GSSG/GSH水平升高從而激活I(lǐng)KK,進(jìn)而使IkB磷酸化并從NF-κB上脫落,NF-κB被激活后誘導(dǎo)環(huán)氧化酶-2(COX-2)、IL-1b、iNOS、TNF-α等多種炎癥介質(zhì)的表達(dá),進(jìn)一步增強(qiáng)氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng),加重了RA病情[22]。
2 RA抗氧化體系
機(jī)體自身抗氧化系統(tǒng)由抗氧化酶和非酶抗氧化劑組成,抗氧化酶主要包括SOD、GSH-Px和CAT;非酶抗氧化劑包括維生素C、維生素E、GSH、類胡蘿卜素等。抗氧化酶在體內(nèi)分布廣泛,它們能有效地捕獲自由基并將其轉(zhuǎn)化為無害物質(zhì);抗氧化劑則主要是通過競爭性作用保護(hù)其他分子免受自由基破壞,對(duì)細(xì)胞膜和血漿脂蛋白的保護(hù)尤為重要。
RA發(fā)生是否與患者體內(nèi)抗氧化水平下降相關(guān)呢?Gambhir等[23]研究認(rèn)為,RA患者機(jī)體酶促/非酶抗氧化系統(tǒng)遭到自由基的破壞,從而使脂質(zhì)過氧化等損傷容易發(fā)生。有研究發(fā)現(xiàn),與正常人相比,RA患者體內(nèi)抗氧化酶活性確實(shí)顯著下降[24-25]。然而,也有報(bào)道稱,RA患者體內(nèi)抗氧化酶活性變化不大甚至顯著升高[26-27]。Cimen等[28]認(rèn)為,RA患者體內(nèi)過多自由基主要通過黃嘌呤氧化酶體系產(chǎn)生,而非抗氧化系統(tǒng)損壞所致。Davies等[29]認(rèn)為,機(jī)體通過誘導(dǎo)抗氧化酶合成來適應(yīng)氧化應(yīng)激的不斷變化,盡管患者體內(nèi)抗氧化水平增強(qiáng),但氧化損傷依然不可避免。目前,對(duì)RA患者機(jī)體內(nèi)抗氧化水平變化的還不清楚,不同實(shí)驗(yàn)產(chǎn)生的相悖結(jié)論可能源于氧化應(yīng)激調(diào)控機(jī)制的復(fù)雜性和多變性,患者的遺傳多樣性、疾病活動(dòng)水平、性別、年齡、飲食等多個(gè)影響因素[1]。
3 RA與SOD抗氧化研究
3.1 SOD分類 哺乳動(dòng)物體內(nèi)存在3種類型的SOD同工酶,即Cu/Zn-SOD (SOD1)、Mn-SOD (SOD2)和EC-SOD (SOD3)。其中SOD1為組成性表達(dá)蛋白,SOD2和SOD3為誘導(dǎo)性表達(dá)蛋白,3種SOD的基因位點(diǎn)、分子組成及亞細(xì)胞分布均有不同(表1)[30]。目前已發(fā)現(xiàn),NF-κB、Sp1、AP-1、AP-2、C/EBP等多個(gè)轉(zhuǎn)錄因子參與sod基因的表達(dá)調(diào)控[31]。
3.2 SOD在RA中的表達(dá) 早期研究發(fā)現(xiàn),RA患者關(guān)節(jié)滑液80%的SOD活性來自SOD3,其活性下降顯著增加了ROS誘導(dǎo)的滑膜組織損傷[32]。隨后多個(gè)研究報(bào)道了RA患者體內(nèi)SOD活性水平較低,人血清SOD3水平與RA疾病活動(dòng)呈負(fù)相
關(guān)[33-34]。Jira等[35]認(rèn)為,SOD活性的降低可能是源于H2O2對(duì)酶的抑制作用。Afonso等[8]發(fā)現(xiàn),RA患者機(jī)體內(nèi)過量分泌的TNF-α不僅能誘導(dǎo)ROS產(chǎn)生直接造成細(xì)胞損傷,還會(huì)抑制SOD1和SOD3表達(dá)。Wang等[36]對(duì)RA患者及正常人滑膜成纖維原代培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行比較蛋白質(zhì)組學(xué)研究,發(fā)現(xiàn)11種氧化還原相關(guān)蛋白的表達(dá)全部下調(diào),其中與氧化還原高連接度的Hub基因是sod2。然而,有些研究則呈現(xiàn)相反結(jié)論,Kasama等[37]發(fā)現(xiàn),膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠的滑膜、血清等組織中SOD活性顯著增加,推測ROS可能通過誘導(dǎo)SOD表達(dá)以阻止其產(chǎn)生的細(xì)胞毒害作用。Mazzetti等[26]發(fā)現(xiàn),RA患者血清SOD1水平較高,且與類風(fēng)濕因子呈正相關(guān)。近期也有2篇關(guān)于RA患者體內(nèi)SOD活性顯著增強(qiáng)的研究報(bào)道[1,27]。
3.3 SOD與RA治療 盡管目前對(duì)RA抗氧化機(jī)制還不十分清楚,但SOD確有抗炎作用。酵母來源的SOD1能夠顯著降低關(guān)節(jié)炎小鼠體內(nèi)IL-12、IFN-γ、IL-6、TNF-α、NO的生成,顯示出良好的抗炎效果[38-39]。Yu等[40]發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因鼠滑膜成纖維細(xì)胞中SOD3的過表達(dá)可抑制IL-1β、TNF-α、基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)等促炎因子的表達(dá)。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)顯示,SOD3缺陷型關(guān)節(jié)炎小鼠體內(nèi)促炎因子的水平顯著升高,其關(guān)節(jié)組織損傷程度嚴(yán)重,若將SOD基因轉(zhuǎn)至小鼠體內(nèi),則能有效減輕炎性癥狀[41]。
Goebel等[42]對(duì)RA患者關(guān)節(jié)內(nèi)注射牛源SOD,結(jié)果顯示,患者滑液中類風(fēng)濕因子水平、前列腺素E2生成、乳酸脫氫酶活性均顯著下降,關(guān)節(jié)炎癥狀得到有效改善。Biagi等[43]報(bào)道合成了一些具有SOD活性的硫化1,2,3-三唑衍生物,其藥物活性與青霉胺、硫普羅寧等RA藥物相當(dāng)或更高。Cruz等[44]應(yīng)用脂質(zhì)體包埋技術(shù)將SOD輸送到關(guān)節(jié)炎小鼠體內(nèi),結(jié)果表明,脂質(zhì)體介導(dǎo)的SOD在小鼠體內(nèi)均具良好的抗炎效果。最近,Chen等[45]利用硅納米顆粒與含有反式激活蛋白(TAT)結(jié)構(gòu)域的重組SOD1結(jié)合,跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞后能有效地保護(hù)細(xì)胞免受ROS氧化損傷,納米藥物為抗氧化酶在體內(nèi)的靶向輸送及RA治療提供了新選擇。目前,SOD能否用作RA臨床治療藥物仍是爭論的學(xué)術(shù)問題,原因包括:①RA疾病與機(jī)體“氧化-抗氧化”水平的關(guān)聯(lián)性仍不十分明確;②若使用SOD進(jìn)行RA抗氧化治療,如何確?;颊唧w內(nèi)“氧化-抗氧化”平衡?③對(duì)SOD的藥效學(xué)、免疫原性、動(dòng)力學(xué)及靶向輸送研究仍需深入;④長期、大劑量肌注SOD的性價(jià)比和潛在危害。
4 小 結(jié)
氧化應(yīng)激既是RA發(fā)生的重要誘因,也是RA產(chǎn)生的病理結(jié)果。目前,對(duì)RA患者體內(nèi)氧化應(yīng)激、抗氧化水平與疾病活動(dòng)的關(guān)聯(lián)性仍有爭論,需要采集更多臨床樣本進(jìn)行系統(tǒng)性研究,進(jìn)一步完善RA發(fā)生中“氧化應(yīng)激—抗氧化”的作用機(jī)制。同時(shí),要加強(qiáng)SOD及其他相關(guān)抗氧化酶在RA治療中的應(yīng)用研究,包括重組酶表達(dá)、納米藥物構(gòu)建、藥效學(xué)、動(dòng)物實(shí)驗(yàn)等,為實(shí)現(xiàn)抗氧化酶在RA臨床診斷、藥物治療、預(yù)后評(píng)價(jià)等方面的應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
5 參考文獻(xiàn)
[1] García-González A,Gaxiola-Robles R,Zenteno-Savín T.Oxidative stress in patients with rheumatoid arthritis[J].Rev Invest Clin,2015,67(1):46-53.
[2] Hitchon CA,EI-Gabalawy HS.Oxidation in rheumatoid arthritis[J].Arthritis Res Ther,2004,6(6):265-278.
[3] Ozkan Y,Yard?m-Akayd?n S,Sepici A,et al.Oxidative status in rheumatoid arthritis[J].Clin Rheumatol,2007,26(1):64-68.
[4] Phaniendra A,Jestadi DB,Periyasamy L.Free radicals:properties,sources,targets,and their implication in various diseases[J].Ind J Clin Biochem,2015,30(1):11-26.
[5] Filippin LI,Vercelino R,Marroni NP,et al.Redox signaling and the inflammatory respone in rheumatoid arthritis[J].Clin Exp Immunol,2008,152(3):415-422.
[6] 韋超,常曉天.氧化應(yīng)激在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎中的表現(xiàn)[J].中華風(fēng)濕病學(xué)雜志,2011,15(2):127-130.
[7] Navarro-Compán V,Melguizo-Madrid E,Hernández-Cruz B,et al.Interaction between oxidative stress and smoking is associated with an increased risk of rheumatoid arthritis:a case-control study[J].Rheumatology(Oxford),2013,52(3):487-493.
[8] Afonso V,Champy R,Mitrovic D,et al.Reactive oxygen species and superoxide dismutases:role in joint diseases[J].Joint Bone Spine,2007,74(4):324-329.
[9] Nash KM,Ahmed S.Nanomedicine in the ROS-mediated pathophysiology:applications and clinical advances[J].Nanomedicine,2015,11(8):2033-2040.
[10] Starmp LK,Khalilova I,Tarr JM,et al.Myeloperoxidase and oxidative stress in rheumatoid arthritis[J].Rheumatology(Oxford),2012,51(10):1796-1803.
[11] Vytásek R,Sedová L,Vilím V.Increased concentration of two different advanced glycation end-products detected by enzyme immunoassays with new monoclonal antibodies in sera of patients with rheumatoid arthritis[J].BMC Musculoskeletal Disorders,2010,11(4):83.
[12] Surapneni KM,Chandrasada Gopan VS.Lipid peroxidation and antioxidant status in patients with rheumatoid arthritis[J].Indian J Clin Biochem,2008,23(1):41-44.
[13] Luczai W,Jarocka-Karpinska I,Sierakowski S,et al.Lipid peroxidation in rheumatoid arthritis:consequences and monitoring[J].Free Radic Biol Med,2014,75(suppl 1):S49.
[14] Seven A,Güzel S,Aslan M,et al.Lipid,protein,DNA oxidation and antioxidant status in rheumatoid arthritis[J].Clin Biochem,2008,41(7-8):538-543.
[15] Kageyama Y,Takahashi M,Ichikawa T,et al.Reduction of oxidative stress marker levels by anti-TNF-alpha antibody,infliximab,in patients with rheumatoid arthritis[J].Clin Exp Rheumatol,2008,26(1):73-80.
[16] Ishibashi T,Sato B,Shibata S,et al.Therapeutic efficacy of infused molecular hydrogen in saline on rheumatoid arthritis:a randomized,double-blind,placebo-controlled pilot study[J].Int immunopharmacol,2014,21(2):468-473.
[17] Lee SH,Chang DK,Goel A,et al.Microsatellite instability and suppressed DNA repair enzyme expression in rheumatoid arthritis[J].J Immunol,2003,170(4):2214-2220.
[18] Cuzzocrea S.Role of nitric oxide and reactive oxygen species in arthritis[J].Curr Pharm Des,2006,12(27):3551-3570.
[19] Henrotin Y,Kurz B,Aigner T.Oxygen and reactive oxygen species in cartilage degradation:friends or foes?[J].Osteoarthritis Cartilage,2005,13(8):643-654.
[20] Kalpakcioglu B,Senel K.The interrelation of glutathione reductase,catalase,glutathione peroxidase,superoxide dismutase,and glucose-6-phosphate in the pathogenesis of rheumatoid arthritis[J].Clin Rheumatol,2008,27(2):141-145.
[21] Wruck CJ,F(xiàn)ragoulis A,Gurzynski A,et al.Role of oxidative stress in rheumatoid arthritis:insights from the Nrf2-knockout mice[J].Ann Rheum Dis,2011,70(5):844-850.
[22] Onodera Y,Teramura T,Takehara T,et al.Reactive oxygen species induce Cox-2 expression via TAK-1 activation in synovial fibroblast cells[J].FEBS Open Bio,2015(5):492-501.
[23] Gambhir JK,Lali P,Jain AK.Correlation between blood antioxidant levels and lipid peroxidation in rheumatoid arthritis[J].Clin Biochem,1997,30(4):351-355.
[24] Karatas F,Ozates I,Canatan H,et al.Antioxidant status and lipid peroxidation in patients with rheumatoid arthritis[J].Indian J Med Res,2003,118:178-181.
[25] Seven A,Güzel S,Aslan M,et al.Lipid,protein,DNA oxidation and antioxidant status in rheumatoid arthritis[J].Clin Biochem,2008,41(7-8):538-543.
[26] Mazzetti I,Grigolo B,Borzì RM,et al.Serum copper/zinc superoxide dismutase levels in patients with rheumatoid arthritis[J].Int J Clin Lab Res,1996,26(4):245-249.
[27] Veselinovic M,Barudzic N,Vuletic M,et al.Oxidative stress in rheumatoid arthritis patients:relationship to diseases activity[J].Mol Cell Biochem,2014,391(1-2):225-232.
[28] Cimen MY,Cimen GB,Kaemaz M,et al.Oxidant-antioxidant status of erythrocytes from patients RA[J].Clin Rheumatol,2000,19(4):275-277.
[29] Davies KJ.Oxidative stress:The paradox of aerobic life[J].Biochem Soc Symp,1995(61):1-31.
[30] Zelko IN,Mariani TJ,F(xiàn)olz RJ.Superoxide dismutase multigene family:a comparison of the CuZn-SOD (SOD1),Mn-SOD (SOD2),and EC-SOD (SOD3) gene structures,evolution,and expression[J].Free Radic Biol Med,2002,33(3):337-349.
[31] Miao L,St Clair DK.Regulation of superoxide dismutase genes:implications in disease[J].Free Radic Biol Med,2009,47(4):344-356.
[32] Marklund SL.Human copper-containing superoxide dismutase of high molecular weight[J].Proc Natl Acad Sci USA,1982,79(24):7634-7638.
[33] Bae SC,Kim SJ,Sung MK.Inadequate antioxidant nutrient intake and altered plasma antioxidant status of rheumatoid arthritis patients[J].J Am Coll Nutr,2003,22(4):311-315.
[34] Ugur M,Yildirim K,Kiziltunc A,et al.Correlation between soluble intercellular adhesion molecule 1 level and extracellular superoxide dismutase activity in rheumatoid arthritis:a possible association with disease activity[J].Scand J Rheumatol,2004,33(4):239-243.
[35] Jira W,Spiteller G,Richter A.Increased levels of lipid oxidation products in low density lipoproteins of patients suffering from rheumatoid arthritis[J].Chem Phys Lipids,1997,87(1):81-89.
[36] Wang JG,Xu WD,Tao W,et al.Disorders in angiogenesis and redox pathways are main factors contributing to the progression of rheumatoid arthritis:a comparative proteomic study[J].Arthritis Rheum,2012,64(4):993-1004.
[37] Kasama T,Kobayashi K,Sekine F,et al.Follow-up study of lipid peroxides,SOD and glutathione peroxidase in synovial membrane,serum and liver of young and old mice with collagen-induced arthritis[J].Life Sci,1988,43(23):1887-1896.
[38] García-González A,Lotz M,Ochoa JL.Anti-inflammatory activity of superoxide dismutase obtained from Debaryomyces hansenii on type II collagen induced arthritis in rats[J].Rev Invest Clin,2009,61(3):212-220.
[39] Stefanova TH,Ratcheva I,Nikolova NJ,et al.Effect of yeast superoxide dismutase treatment on some mediators of inflammation during adjuvant-induced arthritis in mice[J].Z Naturforsch C,2010,65(1-2):141-147.
[40] Yu DH,Yi JK,Yuh HS,et al.Over-expression of extracellular superoxide dismutase in mouse synovial tissue attenuates the inflammatory arthritis[J].Exp Mol Med,2012,44(9):529-535.
[41] Dai L,Claxson A,Marklund SL,et al.Amelioration of antigen-induced arthritis in rats by transfer of extracellular superoxide dismutase and catalase genes[J].Gene Ther,2003,10(7):550-558.
[42] Goebel KM,Storck U,Neurath F.Intrasynovial orgotein therapy in rheumatoid arthritis[J].Lancet,1981,1(8228):1015-1017.
[43] Biagi G,Ramacciotti GL,Scartoni V,et al.Superoxide dismutase-like activity of 1,2,3-triazole derivatives[J].Farmaco,1990,45(1):49-57.
[44] Cruz ME,Manuela Gaspar M,Bárbara M,et al.Liposomal superoxide dismutases and their use in the treatment of experimental arthritis[J].Methods Enzymol,2005,391:395-413.
[45] Chen YP,Chen CT,Hung Y,et al.A new strategy for intracellular delivery of enzyme using mesoporous silica nanoparticles:superoxide dismutase[J].J Am Chem Soc,2013,135(4):1516-1523.
收稿日期:2016-01-30;修回日期:2016-05-30
風(fēng)濕病與關(guān)節(jié)炎2016年7期