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      牛血清白蛋白色譜柱的制備及對阿司匹林的含量測定

      2014-10-17 06:04:22唐玲利韋室百黃東萍黃明立
      中國醫(yī)藥導(dǎo)報 2014年16期
      關(guān)鍵詞:腸溶片硅膠緩沖液

      唐玲利 韋室百 黃東萍 黃明立 阮 沖

      1.廣西醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,廣西南寧 530021;2.廣西醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院藥學(xué)部,廣西南寧 530021

      分子生物色譜法(MBC)是20世紀(jì)80年代中后期逐漸發(fā)展起來的以酶、受體、抗體、傳輸?shù)鞍椎壬锎蠓肿訛楣潭ㄏ嗟囊活惿V法,是基于生物大分子的特異性相互作用原理進(jìn)行分離純化具有活性的化合物或測定生化參數(shù)的一項(xiàng)新興技術(shù)[1]。藥物作為一類重要的生物活性物質(zhì)與血漿蛋白存在可逆性的結(jié)合平衡,藥物分子通過血漿白蛋白的運(yùn)輸?shù)竭_(dá)受體部位發(fā)生藥理作用,而藥物分子在體內(nèi)與血漿蛋白的相互作用是其發(fā)揮藥理作用的前提,因此可以通過血漿白蛋白生物色譜篩選藥物中的活性成分。付強(qiáng)等[2]通過自制人血清白蛋白色譜柱成功對DL(±)色氨酸進(jìn)行了手性分離;Bentucci等[3]制備出的血清白蛋白色譜柱,不僅可篩選出藥物活性成分,還可通過體外實(shí)驗(yàn)反映藥物-血清白蛋白的相互作用。蔡漢寧等[4]制備出核心組蛋白色譜柱作用于其活性物質(zhì),至少篩選出9種組蛋白作用蛋白。與傳統(tǒng)的實(shí)驗(yàn)方法相比,分子生物色譜法具有高度專一性、分離速度更快、容易自動化操作、重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn)[5]。

      由于人血清白蛋白價格昂貴,用于制備生物色譜柱成本太高,有學(xué)者利用牛血清白蛋白與人血清白蛋白結(jié)構(gòu)相似的特點(diǎn),制備成牛血清白蛋白色譜柱用于中藥活性成分的分離測定。Tan等[6]通過制備的牛血清蛋白生物整體柱,成功的分離出當(dāng)歸的活性成分,并考察了當(dāng)歸提取液在該整體柱上保留的影響。本文主要通過將硅膠氨基功能化與BSA共價鍵結(jié)合合成BSA固定相,制備BSA生物色譜柱,并選擇了阿司匹林(ASP)作為與BSA結(jié)合的對象來驗(yàn)證BSA色譜柱的性能。ASP作為一種代表性藥物,不僅具有卓越的消炎、退熱、止痛能力,研究表明它還可以協(xié)同干擾素抑制肝細(xì)胞癌生長轉(zhuǎn)移[7],抑制宮頸癌 Hela細(xì)胞增殖[8],預(yù)防妊娠期高血壓[9]等。通過對ASP及其腸溶片的分離測定,可以進(jìn)一步探討生物色譜柱在藥物有效成分分離測定中的應(yīng)用前景。

      1 儀器與材料

      6010紫外可見分光度計(安捷倫科技公司,上海);LC-10Tvp高效液相色譜儀(日本島津公司);spectrum 100傅立葉變換紅外光譜儀(美國penkim Elmer儀器有限公司);Bio-Rad垂直電泳槽、電泳儀(美國 Bio-Rad公司)。

      3-氨基丙基三甲氧基硅烷(APTS)(97%,上海晶純試劑有限公司,批號:15122);N,N′-琥珀酰亞胺碳酸酯(98%,阿拉丁公司,批號:25231);考馬斯亮藍(lán)G250(沃凱,批號:WB20091102);BSA(Solarbio);硅膠Sepra Silica (粒徑 50 μm,phenomenex 美國);ASP 標(biāo)準(zhǔn)品(Purity>99%);ASP 腸溶片(50 mg/片,國藥準(zhǔn)字H43021814);四甲基乙二胺(TEMED)、丙烯酰胺溶液、甲叉雙丙烯酰胺、過硫酸胺、Tris堿、甘氨酸、十二烷基硫酸鈉(SDS)均來自北京索萊寶。

      2 方法與結(jié)果

      2.1 BSA色譜柱的制備

      取硅膠 2 g(平均粒徑為 50 μm,孔徑 46 ?(1 ?=0.1 nm),比表面積為518 m2/g),加入適量甲苯回流除去殘留水分,按10 μmol/m2加入3-氨丙基三甲基硅烷反應(yīng)8 h得到氨丙基硅膠,過濾,分別用甲苯和甲醇洗滌,真空干燥后置干燥器保存。取氨丙基硅膠2 g,加入乙腈 5 mL和 N,N′-琥珀酰亞胺碳酸酯 2 g,于30℃反應(yīng)24 h,過濾后分別用乙腈、甲醇洗滌得到活化硅膠。取制備得的活性硅膠1.5 g,加入到25 mmol/L(pH=6.6)的磷酸鹽緩沖液中,再加入適量 BSA,30℃下攪拌反應(yīng)20 h,過濾后依次用水及5%乙醇多次洗滌,得到BSA固定相。將制備好的BSA固定相用緩沖液勻漿后注入不銹鋼柱(4.5 nm×150 nm)中,并抽真空壓緊柱,制備得到BSA色譜柱。

      2.2 傅里葉紅外光譜(FTIR)驗(yàn)證活化硅膠功能基團(tuán)

      用溴化鉀壓片法制備活化硅膠樣品,進(jìn)行FTIR分析。FTIR分析結(jié)果見圖1,硅膠(a)和活化硅膠(b)共有的吸收峰有:1099、1103 cm-1處的非對稱伸縮振動,指紋區(qū)800 cm-1的對稱伸縮振動和470 cm-1的彎曲振動,均為硅膠的主要結(jié)構(gòu)Si-O的特征譜帶;與硅膠(a)相比,活化硅膠(b)增加了伯胺(-NH2)的吸收峰 1402、1561 cm-1,2928 cm-1峰為亞甲基的不對稱變形振動峰,說明硅膠上中有亞甲基的存在,表明APTS已結(jié)合在硅膠上。由此可見,活化硅膠成功連接上了氨基功能基團(tuán)。

      圖1 硅膠和活化硅膠的紅外光譜圖

      2.3 BSA與活化硅膠結(jié)合量

      按硅膠與 BSA 質(zhì)量比 8∶1、4∶1、2∶1、1∶1 進(jìn)行表面覆蓋率的測定。稱取四份硅膠,每份0.5000 g,分別與0.0625、0.1251、0.2500、0.5000 g BSA 反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后各取100 μL洗滌液采用考馬斯亮藍(lán)染色法[10]測定其中BSA含量,用BSA加入量與反應(yīng)剩余BSA量之差計算出結(jié)合量,按照下列公式計算出BSA的表面覆蓋率:表面覆蓋率=結(jié)合蛋白的物質(zhì)的量(μmol)/活化硅膠質(zhì)量(g)。結(jié)果顯示,活化硅膠與BSA質(zhì)量比為4∶1時,BSA結(jié)合量已基本達(dá)到飽和,加大劑量并不能明顯的增加鍵合量,表明BSA表面覆蓋率可能受空間位阻大小的影響。見圖2。

      圖2 活化硅膠與BSA不同配比下的BSA表面覆蓋率

      2.4 BSA固定相結(jié)合ASP研究

      精密稱取 ASP 對照品 50 mg,用冰醋酸-甲醇(1∶10)溶液稀釋至50 mL,搖勻,得到ASP標(biāo)準(zhǔn)溶液。取ASP標(biāo)準(zhǔn)溶液 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 mL 用冰醋酸-甲醇(1∶10)溶液稀釋至 10 mL,各取 10 μL 用于 HPLC。色譜條件:流動相:甲醇-20%冰醋酸(3∶1);流速:1 mL/min;色譜柱:C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30℃;紫外檢測器,λ=237 nm。得到ASP標(biāo)準(zhǔn)曲線方程:Y=97 941X+37 178,r=0.9997,其中 Y為峰面積,X為 ASP濃度(μg/μL)。

      稱取一定量的硅膠和BSA固定相勻漿法分別填裝于兩根柱子中,精密稱定適量的ASP,用中性乙醇溶解后緩緩傾注入色譜柱中,用蒸餾水洗滌柱子,接收洗滌液,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算洗脫液中ASP含量,ASP加入量與洗脫液中ASP含量之差得到固定相對ASP的結(jié)合量,見圖3。對比硅膠固定相和BSA固定相對ASP的結(jié)合量,ASP與BSA固定相結(jié)合量明顯大于與硅膠固定相結(jié)合量,證明與ASP結(jié)合的主要是BSA而不是硅膠。

      圖3 硅膠固定相、BSA固定相與阿司匹林結(jié)合量的比較

      2.5 BSA色譜柱性能考察

      2.5.1 BSA固定相的pH值穩(wěn)定性 分別配制pH=4.5、6.5、7.5、8.0 的 KH2PO4-K2HPO4溶液(25 mmol/L),用上述四種緩沖液各10 mL分別洗脫BSA色譜柱,接收洗脫液,測定洗脫液中BSA含量,考察BSA固定相在不同pH值緩沖液中的穩(wěn)定性。

      經(jīng)測定洗脫液中不含BSA,表明通過改變緩沖液的pH值并不能洗脫鍵合在硅膠上的BSA,該BSA色譜柱在pH 4.5~8.0之間穩(wěn)定性良好。

      2.5.2 BSA固定相穩(wěn)定時間 配制濃度為 2、4、6、8、10 mg/mL的ASP標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,以BSA生物色譜做分離測定,繪制ASP標(biāo)準(zhǔn)曲線。色譜條件:流動相:pH 7.5磷酸鹽緩沖液;流速:0.5 mL/min;色譜柱:BSA生物色譜柱(4.5 nm×150 nm,50 μm);紫外檢測器,λ=237 nm。得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程:Y=694 217X-11 080,r=0.9996,其中 Y 為峰面積,X 為 ASP 濃度(μg/μL)。

      通過ASP的含量變化評價BSA固定相穩(wěn)定時間:在BSA色譜柱制備完成后進(jìn)行測定,取2 mg/mL ASP標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)樣10 μL,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算出ASP含量,前8天ASP含量變化不大,標(biāo)準(zhǔn)偏差:S1=0.3525,第9天開始 ASP含量急劇下降,考察到第10天,算出標(biāo)準(zhǔn)偏差:S2=7.238,結(jié)果見圖4。由此可看出:用自制的BSA色譜柱測定ASP標(biāo)準(zhǔn)品,在8 d內(nèi)測定結(jié)果相差不大,表明該色譜柱穩(wěn)定性較好。

      圖4 BSA色譜柱穩(wěn)定時間考察

      2.6 用BSA色譜柱分離阿司匹林腸溶片

      取阿司匹林腸溶片10片,精密稱定,置研缽中,研細(xì),稱取適量的粉末(約相當(dāng)于 ASP 0.2 g)于燒杯中,加無水乙醇40 mL溶解,用pH 7.5磷酸鹽緩沖液定容至100 mL,充分搖勻,快速過濾,棄去初濾液,取續(xù)濾液,即得到樣品溶液。按照“2.5.2”項(xiàng)下色譜條件上樣,進(jìn)樣量 15 μL,根據(jù)“2.5.2”項(xiàng)下標(biāo)準(zhǔn)曲線計算含量,求出標(biāo)示量。

      阿司匹林腸溶片中ASP的分離效果見圖5,ASP保留時間為 (5.25±0.53)min,ASP 腸溶片保留時間5.10 min在此范圍。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算結(jié)果為阿司匹林腸溶片中ASP的含量為14.65 μg/片,標(biāo)示量為107.8%。由此看出,該BSA生物色譜柱能夠很好地在復(fù)雜樣品中分離并測定ASP。

      3 討論

      BSA是由17個雙硫鍵起穩(wěn)定作用的581個氨基酸組成的球蛋白,BSA生物色譜分離物質(zhì)的原理可能是比較容易與帶有苯環(huán)結(jié)構(gòu)的化合物結(jié)合[11],劉文等[12]研究表明含有苯環(huán)結(jié)構(gòu)的抗結(jié)核藥對氨基水楊酸的希夫堿可以與BSA通過疏水作用相結(jié)合,除了ASP的藥理作用,它的結(jié)構(gòu)比較簡單且含一個苯環(huán),因此本文選擇ASP來檢驗(yàn)BSA色譜柱的性能。本實(shí)驗(yàn)中,BSA鍵合固定相合成方法反應(yīng)條件溫和,試劑毒性小,能夠很好地結(jié)合ASP,且蛋白活性保持比較好,蛋白鍵合量較高,制備成的BSA生物色譜柱能夠從復(fù)雜樣品阿司匹林腸溶片中分離出ASP并測定其含量,可體外模擬人體生理?xiàng)l件下藥物與血清蛋白的作用。

      圖5 ASP的BSA生物色譜圖

      本文不足之處:對于驗(yàn)證BSA色譜柱分離鑒定藥物的特性是否與化合物含有苯環(huán)有關(guān),可以考慮多選擇幾種含有苯環(huán)和不含苯環(huán)的藥物進(jìn)行對比研究;穩(wěn)定性的考察時間可以延長到BSA色譜柱完全失去活性至不能結(jié)合ASP,并進(jìn)一步分析原因。

      在人體內(nèi)藥物與藥物、藥物與蛋白質(zhì)之間的相互作用難以觀察和論證,但通過應(yīng)用生物色譜技術(shù),可以直接觀察藥物與生物活性物質(zhì)的相互作用,因?yàn)橐环N藥物對生物活性物質(zhì)的影響或者是對另一種藥物的影響,可以通過結(jié)合率和色譜保留的變化方面反映出來,對于探討藥物作用機(jī)制、條件更加直觀方便;對于應(yīng)用生物色譜柱分析其他大分子化合物結(jié)合血清白蛋白的情況有較高的價值,有利于推進(jìn)藥物學(xué)的研究進(jìn)程。

      [1]孫言才,屈建.色譜新技術(shù)在體內(nèi)藥物分析中的應(yīng)用[J].中國新藥雜志,2004,13(11):973-977.

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