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    用改進(jìn)的重疊延伸PCR技術(shù)構(gòu)建三位點(diǎn)突變載體

    2014-05-04 08:04:46郭紫芬軒貴平陳方方張式一
    生物技術(shù)通訊 2014年2期
    關(guān)鍵詞:瓊脂糖定點(diǎn)質(zhì)粒

    郭紫芬,軒貴平,陳方方,張式一

    南華大學(xué) 藥物藥理研究所,湖南 衡陽 421001

    定點(diǎn)突變是分子生物實(shí)驗(yàn)常用的技術(shù)之一[1],目前實(shí)驗(yàn)室研究常規(guī)使用試劑盒進(jìn)行定點(diǎn)突變,如Ta?KaRa公司的多點(diǎn)突變試劑盒[2]、Stratagene公司的定點(diǎn)突變試劑盒[3]。試劑盒不僅價格較昂貴,技術(shù)要求程度相對較高,且具體的突變效率也有待進(jìn)一步驗(yàn)證。重疊延伸PCR技術(shù)(splicing by overlap exten?sion PCR,SOE PCR)是一種特殊的PCR技術(shù),該技術(shù)采用具有互補(bǔ)末端的引物,使PCR產(chǎn)物形成重疊鏈,從而在隨后的擴(kuò)增反應(yīng)中通過重疊鏈的延伸,將不同來源的擴(kuò)增片段重疊拼接起來。因此,此技術(shù)能在體外進(jìn)行有效的基因拼接、重組,在基因的定點(diǎn)突變方面有著廣泛而獨(dú)特的應(yīng)用[4-11]。但傳統(tǒng)的重疊延伸PCR技術(shù)需要依靠瓊脂糖凝膠電泳回收PCR產(chǎn)物,此過程繁瑣、不經(jīng)濟(jì)。在本實(shí)驗(yàn)中,我們采用重疊延伸PCR技術(shù)結(jié)合冷凍析出目的片段的方法,減少了繁瑣的瓊脂糖凝膠回收步驟,同時設(shè)計(jì)的點(diǎn)突變引物使突變位點(diǎn)位于引物中間位置,且上下游引物完全互補(bǔ),使引物設(shè)計(jì)更加方便,突變成功率也有所保證,節(jié)省了大量時間,突變效率高,能一次實(shí)現(xiàn)多位點(diǎn)的突變,方便廉價,目前不失為一種值得推廣的節(jié)約資源的多位點(diǎn)突變方法。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    大腸桿菌DH5ɑ為本實(shí)驗(yàn)室保存;野生型質(zhì)粒模板是將人線粒體基因中包含熱點(diǎn)突變位點(diǎn)的基因片段插入T載體,且經(jīng)測序確證序列,用質(zhì)粒提取試劑盒提取野生型質(zhì)粒作為模板,在此基礎(chǔ)上實(shí)現(xiàn)不相鄰三位點(diǎn)的同時突變,為試驗(yàn)前期工作結(jié)果。質(zhì)粒小提試劑盒(離心柱形)Plasmid Mini KitⅠ購自O(shè)mega公司;瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System購自Promega公司;高保真度Pfx DNA聚合酶購自Invitrogen公司;限制性內(nèi)切酶HindⅢ、EcoRⅠ,10×M緩沖液、10×上樣緩沖液購自TaKaRa公司。

    1.2 引物合成

    利用Muta Primer 2.0設(shè)計(jì)3對定點(diǎn)突變引物,突變位點(diǎn)分別位于人線粒體基因的961、1494和1555位,且均在引物的中間位置,每對引物均為完全互補(bǔ)引物;同時合成pMD-19T載體的一對通用引物。引物序列見表1。

    1.3 單重PCR反應(yīng)

    以野生型質(zhì)粒為模板,引物如表2所示,進(jìn)行高保真DNA聚合酶介導(dǎo)的雙向引物延伸反應(yīng),分別得到A、B、C、D共4段PCR產(chǎn)物。PCR反應(yīng)體系包括模板1 μL,上、下游引物各1 μL,10 mmol/L dNTP 0.5 μL,50 mmol/L MgSO40.5 μL,Enhanced 緩沖液1.25 μL,Pfx酶0.5 μL,10×Pfx酶緩沖液2.5 μL,加水至25 μL。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性2 min;94℃變性15 s,55℃退火 30 s,68℃延伸 60 s,30個循環(huán);4℃降溫。

    用2.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測A、B、C、D各段,分別切下含各目的片段的膠條,于-80℃冷凍20 min后,于4℃、12 000 r/min離心5 min,取上清析出液作為模板,進(jìn)行重疊PCR。

    1.4 重疊PCR反應(yīng)

    分別取單重PCR的冷凍析出液2 μL混合,作為模板將2段融合,引物與模板的組合如表3,其他反應(yīng)體系和反應(yīng)條件同單重PCR,用2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測反應(yīng)產(chǎn)物,證實(shí)為兩目的片段并同單重PCR進(jìn)行冷凍析出。取重疊PCR產(chǎn)物A+B、C+D段的冷凍析出液各2 μL混合作為模板,以RVM、M13為引物,按單重PCR體系和條件再次進(jìn)行重疊PCR反應(yīng)。用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,回收重疊PCR產(chǎn)物,即融合片段A+B+C+D段。

    1.5 突變目的片段的體外重組

    將回收的突變目的片段用HindⅢ、EcoRⅠ雙酶切,與經(jīng)相同酶切的野生型質(zhì)粒模板連接,用化學(xué)轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH5ɑ感受態(tài)細(xì)胞,37℃培養(yǎng)于含100 μg/mL氨芐西林的LB固體培養(yǎng)基上,挑取單克隆陽性菌落過夜振蕩培養(yǎng),并以RVM和M13為引物,通過菌液PCR法鑒定陽性克隆,取陽性克隆的菌液交上海生工生物工程公司測定其基因序列。

    2 結(jié)果

    2.1 重疊延伸PCR反應(yīng)

    通過單重PCR擴(kuò)增得到A、B、C、D共4個PCR片段,與各段預(yù)計(jì)目的片段A(251 bp)、B(530 bp)、C(82 bp)、D(242 bp)大小一致(圖1)。通過重疊PCR得到融合A+B段、C+D段和融合全長目的片段,也與預(yù)計(jì)目的片段A+B段(781 bp)、C+D段(324 bp)和融合全長(1105 bp)大小一致(圖2)。

    2.2 突變目的片段的體外重組

    全長突變目的片段與野生質(zhì)粒模板的HindⅢ、EcoRⅠ雙酶切結(jié)果如圖3,各條帶位置正確。回收酶切目的片段和質(zhì)粒,連接后轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5ɑ感受態(tài)細(xì)胞,隨機(jī)挑取12個單克隆陽性菌落,振蕩培養(yǎng),得到10管單克隆陽性菌液,分別用M13和RVM引物進(jìn)行菌液PCR初步篩選,得到轉(zhuǎn)化成功的陽性菌液8管。取PCR反應(yīng)陽性的菌液各1 mL,交上海生工生物工程公司進(jìn)行基因測序,結(jié)果經(jīng)Blast同源性分析,表明6個樣本同時包含3個定點(diǎn)突變位點(diǎn),而其他2個樣本同時出現(xiàn)了1個非定點(diǎn)突變位點(diǎn)。突變成功的部分測序結(jié)果如圖4。

    表1 重疊延伸PCR引物序列

    表2 單重PCR各段引物名稱

    表3 重疊PCR反應(yīng)引物與模板

    3 討論

    圖1 單重PCR擴(kuò)增各片段

    圖2 重疊PCR擴(kuò)增各片段

    目前的多點(diǎn)突變試劑盒層出不窮。TaKaRa公司的Multipoints Mutagenesis Kit的原理,是設(shè)計(jì)合成同一方向的錨定引物及定點(diǎn)突變引物,將錨定引物及定點(diǎn)突變引物用T4多聚核苷酸激酶磷酸化后與模板質(zhì)粒DNA進(jìn)行退火,再用T4DNA聚合酶和T4DNA連接酶進(jìn)行延伸和連接形成突變單鏈,然后用錨定引物“尾巴”上的特異性引物(ETail F/ETail R)和高保真DNA聚合酶PrimeSTAR對突變單鏈進(jìn)行PCR擴(kuò)增,再將獲得的雙鏈PCR產(chǎn)物克隆回原載體中,即可達(dá)到實(shí)驗(yàn)?zāi)康模@得目的突變體。本實(shí)驗(yàn)室曾3次運(yùn)用該試劑盒進(jìn)行三位點(diǎn)突變,結(jié)果3次的測序結(jié)果均顯示無任何定點(diǎn)突變產(chǎn)生。其原因可能是定點(diǎn)突變引物同錨定引物與質(zhì)粒退火過程不能保證所有引物均與模板相連,從而導(dǎo)致突變位點(diǎn)的引入困難。應(yīng)用重疊延伸PCR技術(shù),采用突變位點(diǎn)位于引物中間位置的完全互補(bǔ)引物,PCR擴(kuò)增出的產(chǎn)物也必定包含引物上的突變位點(diǎn),相比傳統(tǒng)的突變位點(diǎn)位于引物兩端而言,既能方便引物設(shè)計(jì),又能保證突變位點(diǎn)的順利引入,提高突變效率。同時,采用冷凍析出法代替各步PCR產(chǎn)物回收,是考慮到PCR需要的模板量相對較少。也有用上一步PCR產(chǎn)物直接作為模板進(jìn)行下一步PCR反應(yīng)的[12],但PCR產(chǎn)物中有酶、引物和質(zhì)粒模板,會使非特異性擴(kuò)增幾率加大,也可能會干擾重疊PCR反應(yīng)條件,使產(chǎn)物特異性下降。對于剩余引物的干擾問題,雖然有學(xué)者提出不對稱PCR解決方法,但該方法過于繁瑣,需要反復(fù)優(yōu)化條件[13-15]。本實(shí)驗(yàn)采用切膠條冷凍析出法,切下的只是包含單重PCR目的條帶的部分,經(jīng)-80℃快速冷凍,離心析出,可方便快捷地得到少量目的產(chǎn)物,作為模板既能保證特異性和需要量,又能使PCR反應(yīng)更易調(diào)控。因此,這種改進(jìn)的重疊延伸PCR構(gòu)建同時包含多位點(diǎn)突變質(zhì)粒,相比本實(shí)驗(yàn)室前期所應(yīng)用的試劑盒,具有高效、廉價、突變特異性高的優(yōu)點(diǎn),同時又簡便于傳統(tǒng)的重疊延伸PCR技術(shù),值得在分子生物學(xué)領(lǐng)域發(fā)揮更高的使用價值。

    圖3 質(zhì)粒與融合全長片段的雙酶切

    圖4 質(zhì)粒載體部分測序結(jié)果比對圖A、B、C:前期構(gòu)建的野生型質(zhì)粒;D、E、F:本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建的突變型質(zhì)粒D:1555位T突變?yōu)镃;E:1494位G突變?yōu)锳;F:961位缺失A

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