李瑞芳,管志玉,付玉榮,伊正君
很多研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn),TLR7會(huì)增強(qiáng)宿主抗感染免疫應(yīng)答能力。在感染早期,TLR7可以通過誘導(dǎo)細(xì)胞因子的分泌來增強(qiáng)機(jī)體快速地對病原體感染做出全身性免疫應(yīng)答[1],以有助于清除細(xì)菌、病毒的感染[2-3]。ssRNA作為TLR7的配體,可以有效的激活TLR7,刺激免疫細(xì)胞表達(dá)TLR7增強(qiáng)細(xì)胞免疫應(yīng)答。Monica A Delgado指出,卡介苗(BCG)感染巨噬細(xì)胞后,用TLR7配體咪喹莫特或ssRNA治療細(xì)胞或使細(xì)胞饑餓后,顯示TLR7能通過誘導(dǎo)自噬減少胞內(nèi)BCG。但是,在結(jié)核分枝桿菌感染中TLR7的作用至今未有報(bào)道。本研究以小鼠巨噬細(xì)胞為模型,結(jié)核分枝桿菌感染后加入化學(xué)合成的TLR7激活基序ssRNA激活TLR7,研究TLR7在結(jié)核分枝桿菌感染中的影響,以期能為結(jié)核分枝桿菌的防治提供幫助。
1.1材料
1.1.1細(xì)胞株 小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7,濰坊醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)。
1.1.2主要試劑 RPMI 1640培養(yǎng)基(GBICO公司);胎牛血清(GBICO公司);羅氏培養(yǎng)基(實(shí)驗(yàn)室自配);ssRNA(本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建);異煙肼;胰酶;磷酸鹽緩沖液PBS(實(shí)驗(yàn)室自配);小鼠TNF-α ELISA試劑盒、小鼠IFN-γ ELISA試劑盒、小鼠IL-4 ELISA試劑盒、小鼠IL-12 ELISA試劑盒(北京達(dá)科為生物科技有限公司);結(jié)核桿菌(TB)核酸測定試劑盒(上海之江生物科技有限公司),所用試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.3實(shí)驗(yàn)儀器 Fax-2100型酶標(biāo)儀,倒置顯微鏡(Olympus公司),Thermo型CO2培養(yǎng)箱,HHB114-20型恒溫培養(yǎng)箱,Sirion200型掃描電鏡(FEI公司)。
1.2方法
1.2.1TLR7對結(jié)核分枝桿菌吞噬率的影響 細(xì)胞用完全1640培養(yǎng)基稀釋至3×105/mL,2 mL /孔加入24孔板,37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)至細(xì)胞牢固貼壁,次日,用新鮮的完全1640培養(yǎng)基換液,1 mL /孔。實(shí)驗(yàn)細(xì)菌接種于羅氏平板,37 ℃恒溫培養(yǎng)約15 d,挑取單個(gè)菌落進(jìn)行研磨,0.9%生理鹽水反復(fù)淘洗后自然沉淀3次,取上清,調(diào)整細(xì)菌濃度至1.5×108/ mL,沉淀及所有用具高壓滅菌后丟棄。取20 μL/孔加入細(xì)胞上清中。細(xì)胞分組處理,每組重復(fù)3孔。處理如下:感染后未激活組、感染后加入ssRNA組(20 μL/孔,終濃度10 μg/mL)、饑餓組(即感染前用無血清1640培養(yǎng)基換液)、感染后加入異煙肼組(20 μL/孔,終濃度10 μg/mL)。處理后于37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。收集感染后0 h、1 h、3 h、5 h細(xì)胞上清,煮沸后離心取上清液進(jìn)行熒光定量PCR檢測。定量PCR反應(yīng)體系如下:36 μLTB核酸熒光PCR檢測混合液(含有dNTP、1對引物和1條熒光探針的溶液),0.4 μL酶(Tag+UNG),4 μL細(xì)胞上清。反應(yīng)體系按下列參數(shù)進(jìn)行:37 ℃ 2 min,94 ℃ 2 min,93 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,循環(huán)40次,單點(diǎn)熒光檢測在60 ℃,熒光通道檢測選擇FAM通道。
1.2.2TLR7對結(jié)核分枝桿菌感染細(xì)胞作用的形態(tài)學(xué)觀察 取5×106個(gè)細(xì)胞,200 mL細(xì)胞培養(yǎng)瓶內(nèi)過夜培養(yǎng),感染3 h后加入50 μL ssRNA(終濃度10 μg/mL),同時(shí)設(shè)立感染后未激活對照和未感染正常細(xì)胞對照,細(xì)胞于37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)3 h。掃描電鏡觀察細(xì)胞形態(tài),步驟如下:細(xì)胞用0.3%胰酶消化,離心,取細(xì)胞沉淀用1 mL 0.01 mol/L pH7.4 無菌PBS重懸后移入1.5 mL EP管,離心;加入0.5 mL 4 ℃預(yù)冷3%戊二醛預(yù)固定,上清吸棄,加1 mL 預(yù)冷3%戊二醛,4 ℃過夜。然后經(jīng)脫水、浸透、包埋聚合、切片(厚度為70 nm)及染色,最后掃描電鏡觀察。
1.2.3TLR7對殺菌活性的影響 細(xì)胞過夜培養(yǎng),次日換液,細(xì)菌感染3 h后分組處理(分組同1.2.1 TLR7對結(jié)核分枝桿菌吞噬率的影響),每組重復(fù)3次,37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱孵育36 h,收集細(xì)胞上清凍存于-80 ℃?zhèn)溆茫?xì)胞用無菌1% Tritonx-100裂解,500 μL/孔,完全裂解后,吹打混勻,0.01 mol/L pH7.4 無菌PBS 1∶20稀釋,取100 μL菌液涂于羅氏平板。37 ℃恒溫培養(yǎng)19 d后菌落計(jì)數(shù)。
1.2.4TLR7對結(jié)核分枝桿菌感染細(xì)胞作用的細(xì)胞因子影響 細(xì)胞于24孔板過夜培養(yǎng),6×105/孔,次日換液,細(xì)菌感染3 h后分組處理(分組同1.2.1 TLR7對結(jié)核分枝桿菌吞噬率的影響),37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)36 h、48 h,收集細(xì)胞上清。按試劑盒說明操作,分別檢測細(xì)胞上清中IL-12、IL-4與TNF-α的含量。
2.1TLR7對結(jié)核分枝桿菌吞噬率的影響 RT-PCR法檢測不同時(shí)間感染后4個(gè)組的細(xì)胞上清結(jié)果顯示,4組均在感染后3 h CT值最高(P>0.05),即細(xì)胞上清中細(xì)菌濃度最低,而感染5 h后CT值均略有下降,因此以下試驗(yàn)均選定感染時(shí)間為3 h。如圖1所示。
2.2TLR7對結(jié)核分枝桿菌感染細(xì)胞作用的形態(tài)學(xué)測定 治療3 h后掃描電鏡觀察,正常細(xì)胞加入TLR7激活基序ssRNA后細(xì)胞形態(tài)未發(fā)生變化,結(jié)構(gòu)完整,胞核邊緣整齊,線粒體清晰(圖2,D),與正常細(xì)胞比較(圖2,A)無顯著變化;感染后加入TLR7激活基序ssRNA治療組感染組比較線粒體相對清晰,吞噬小泡明顯增多(圖2,C),而感染組細(xì)胞出現(xiàn)較多的細(xì)胞碎片,線粒體不清晰(圖2,B)。
圖1 TLR7對結(jié)核分枝桿菌吞噬率的影響
圖2 掃描電鏡觀察不同處理下的細(xì)胞形態(tài)變化
2.3TLR7對殺菌活性的影響 感染細(xì)胞用不同方法處理后,細(xì)胞經(jīng)1%Tritonx-100無菌裂解于羅氏培養(yǎng)基培養(yǎng)后活菌落計(jì)數(shù)顯示,加異煙肼處理后菌落數(shù)量最少(P>0.05),而ssRNA組菌落數(shù)量與異煙肼組差別不大(P>0.05),但是與感染組相比明顯減少(P<0.05)。結(jié)果見圖3所示。
圖3 TLR7對殺菌活性的影響
2.4TLR7對結(jié)核分枝桿菌感染細(xì)胞的細(xì)胞因子影響 感染3 h后用不同方法處理細(xì)胞檢測細(xì)胞上清中的IL-12、IL-4與TNF-α的含量,結(jié)果顯示,與感染組比較,處理36 h后,ssRNA組IL-12(P<0.05)、IL-4(P<0.05)上升,處理48 h后IL-4(P< 0.05)下降,TNF-α的含量上升(P<0.05);異煙肼組在處理48 h后顯示IL-4(P< 0.05)下降、IL-12(P<0.05)上升。結(jié)果見圖4所示。
結(jié)核分枝桿菌是胞內(nèi)感染菌[4],感染宿主后巨噬細(xì)胞在防御方面起重要作用,是結(jié)核分枝桿菌入侵宿主后侵入的首要細(xì)胞。巨噬細(xì)胞表達(dá)TLRs識(shí)別病原體并且通過誘導(dǎo)自噬等機(jī)制清除胞內(nèi)病原體[5]??ń槊?BCG)感染巨噬細(xì)胞后,用TLR7配體咪喹莫特或ssRNA治療細(xì)胞或使細(xì)胞饑餓后,顯示TLR7能通過誘導(dǎo)自噬減少胞內(nèi)BCG。核酸樣結(jié)構(gòu)是盡人皆知的TLR7/8配體,ssRNA可以有效的激活TLR7,ssRNA作為TLR7激動(dòng)劑可以發(fā)展成作為誘導(dǎo)細(xì)胞免疫應(yīng)答的佐劑[6-7]。本文選用小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7細(xì)胞作為細(xì)胞模型,加入本實(shí)驗(yàn)前期構(gòu)建TLR7激活基序ssRNA檢測TLR7在結(jié)核分枝桿菌感染中的殺菌作用。巨噬細(xì)胞有吞噬能力,但何時(shí)吞噬作用最強(qiáng)還未知,本實(shí)驗(yàn)設(shè)定3個(gè)感染時(shí)間段1 h、3 h、5 h,定量PCR法檢測細(xì)胞上清中的細(xì)菌數(shù)量,重復(fù)3次,取平均值。實(shí)驗(yàn)設(shè)定4組,分別為感染后未激活對照組(以下簡稱感染組)、感染后加ssRNA組(以下簡稱ssRNA組)、饑餓組、感染后加異煙肼組(以下簡稱異煙肼組)。結(jié)果顯示,細(xì)胞吞噬細(xì)菌后每組CT3 h值均高于CT1 h值和CT5 h值(P>0.05),說明實(shí)驗(yàn)設(shè)定的3個(gè)時(shí)間段,3 h時(shí)吞噬能力最強(qiáng),因此下步實(shí)驗(yàn)均選定感染時(shí)間為3 h。另外,從CT3 h值-CT1 h值結(jié)果看,差值最大的為ssRNA組,其次為感染組、異煙肼組、饑餓組,由此證明ssRNA組吞噬能力較強(qiáng),說明TLR7有增強(qiáng)細(xì)胞吞噬細(xì)菌的能力。從CT5 h值看,每組CT值均下降,細(xì)胞狀態(tài)也不如感染后3 h,可能感染細(xì)菌濃度偏高造成細(xì)胞裂解或其他原因使得細(xì)菌片段又釋放入上清中;而ssRNA組CT5 h值高于其他組,細(xì)胞狀態(tài)也好于其他組,這可能與ssRNA激活TLR7有抑制細(xì)胞壞死或凋亡的作用,而后期的掃描電鏡實(shí)驗(yàn)也證明ssRNA組細(xì)胞狀態(tài)明顯好于感染組,兩次實(shí)驗(yàn)結(jié)果相符。電鏡觀察自噬小體表明,治療3 h后,ssRNA組細(xì)胞形態(tài)明顯好于感染組,而且吞噬小泡增多,并且有多個(gè)細(xì)胞顯示細(xì)胞處于分裂狀態(tài),這是否顯示TLR7能促進(jìn)細(xì)胞分裂也未可知,而且未感染加ssRNA對照組細(xì)胞狀態(tài)與正常細(xì)胞無差別,說明TLR7激活基序ssRNA對細(xì)胞沒有不良刺激,結(jié)果表明,TLR7是可以通過自噬機(jī)制殺滅結(jié)核分枝桿菌的。為了進(jìn)一步研究TLR7是否有殺菌的能力,本實(shí)驗(yàn)將細(xì)胞感染后用不同方法處理,最后裂解細(xì)胞計(jì)數(shù)胞內(nèi)活菌數(shù)量。經(jīng)培養(yǎng)后菌落計(jì)數(shù)顯示,用不同方法處理細(xì)胞36 h后,細(xì)胞內(nèi)活菌數(shù)量最低的為異煙肼組(P>0.05),其次是ssRNA組、饑餓組、感染對照組,此結(jié)果證明TLR7確實(shí)能增強(qiáng)細(xì)胞殺結(jié)核分枝桿菌的能力。雖然異煙肼組和ssRNA組菌落數(shù)量均明顯低于感染對照組,但是菌落數(shù)量還是偏多,這可能是由于本實(shí)驗(yàn)加入的藥量偏低并且處理時(shí)間偏短的原因。
圖4 TLR7對結(jié)核分枝桿菌感染細(xì)胞的細(xì)胞因子影響
TLR7刺激樹突狀細(xì)胞和巨噬細(xì)胞的炎癥應(yīng)答,增強(qiáng)CD8+T細(xì)胞的細(xì)胞溶解活性,可通過刺激自噬、產(chǎn)生NO、誘導(dǎo)產(chǎn)生趨化型細(xì)胞因子等清除微生物。本實(shí)驗(yàn)已證明TLR7能清除胞內(nèi)結(jié)核分枝桿菌,但TLR7的殺結(jié)核分枝桿菌機(jī)理此前還未知。為揭示TLR7清除結(jié)核分枝桿菌的機(jī)理,本實(shí)驗(yàn)繼續(xù)從細(xì)胞的免疫機(jī)理來研究。從檢測細(xì)胞因子看,ssRNA組IL-12(P<0.05)、TNF-α(P<0.05)、IL-4(P<0.05)的含量在不同時(shí)間點(diǎn)高于感染組,從結(jié)果看,TLR7還可以通過調(diào)節(jié)細(xì)胞因子殺菌。研究結(jié)果提示,TLR7確實(shí)有增強(qiáng)細(xì)胞殺結(jié)核桿菌的能力,可以通過刺激細(xì)胞產(chǎn)生自噬體和調(diào)節(jié)細(xì)胞因子產(chǎn)生等機(jī)制清除胞內(nèi)結(jié)核分枝桿菌,而激活基序ssRNA是否可以通過抑制細(xì)胞壞死或凋亡以維持細(xì)胞生存還需要繼續(xù)研究。本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建的TLR7激活基序ssRNA可以用于治療結(jié)核分枝桿菌,具體治療方案還需要繼續(xù)研究,后期研究期望能為結(jié)核分枝桿菌的治療找到新的突破點(diǎn),也為臨床用藥提供理論依據(jù)。
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