李鴻珠,高 君,郝曉敏,張麗敏,陳俊亭
缺血后處理(ischemic postconditioning,PC)是指心肌缺血后,在再灌注早期,對(duì)心臟進(jìn)行重復(fù)幾次短暫的再灌注/缺血循環(huán)的處理方法[1]。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)已證實(shí)此方法能減輕再灌注后心肌的損傷[2]。
多巴胺受體(dopamine receptor,DR)屬于七個(gè)跨膜區(qū)域組成的G蛋白偶聯(lián)受體家族[3],根據(jù)多巴胺受體的生化和藥理學(xué)特性,將其分為D1樣和D2樣受體,其中D1樣受體又可分為D1和D5受體亞型,主要位于突觸后,受體與腺苷酸環(huán)化酶正性耦聯(lián),與G蛋白中刺激亞單位(Gs)結(jié)合,激活腺苷酸環(huán)化酶(AC),使cAMP增高,刺激磷脂酶C,從而激活鈣通道,使細(xì)胞內(nèi)鈣增高[3]。D2樣受體可分為 D2、D3、D4受體亞型,分別位于突觸前和突觸后,與腺苷酸環(huán)化酶負(fù)性耦聯(lián),與 Gi/Gq作用,抑制AC,使 cAMP降低,抑制鈣通道,調(diào)節(jié)鉀通道[3]。當(dāng)今國內(nèi)外對(duì)于DR的研究多集中在精神神經(jīng)系統(tǒng),心血管系統(tǒng)對(duì)于DR的研究較少,主要涉及其對(duì)高血壓、心臟驟停等影響[4]。我們?cè)谇捌谘芯恐邪l(fā)現(xiàn),在大鼠心肌缺血/再灌注損傷過程中,DR2表達(dá)增加[5];DR2激活通過抑制線粒體、死亡受體途徑及MAPK通路減輕乳鼠心肌細(xì)胞缺血/再灌注損傷及通過促進(jìn)PKCε轉(zhuǎn)位參與大鼠缺血后處理的心肌保護(hù)作用[6-9]。但是,DR2激活在培養(yǎng)的乳鼠心肌細(xì)胞的缺血后處理中的作用及機(jī)制尚未見報(bào)道。因此,本實(shí)驗(yàn)利用原代培養(yǎng)乳鼠心肌細(xì)胞建立缺血后處理模型,探討DR2激活在心肌缺血后處理中的作用及相關(guān)機(jī)制,這將為缺血性心臟病的防治提供新思路和新靶點(diǎn)。
Wistar乳鼠(2~3 d,雄性,8~15 g),由哈爾濱醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
Bromocriptine(Bro)和 Haloperidol(Hal,Sigma),Western及IP細(xì)胞裂解液(Beyotime),DMEM培養(yǎng)液(Hyclone),DR2抗體(Satan),p38、p-p38、JNK、p-JNK抗體(Cell Signaling Technology),LDH、SOD、MDA測(cè)定試劑盒(南京建成),Anexin-V凋亡檢測(cè)試劑盒(北京寶賽),其它試劑均為分析純。
高速低溫離心機(jī)(Beckman),US-640型紫外分光光度計(jì)(Beckman),倒置相差顯微鏡(Olympus),培養(yǎng)箱 MCO-17AICO2(SANYO),Western blot電泳槽(美國BIO-RAD),S-1300-U凈化工作臺(tái)等。
用70%的酒精浸泡消毒W(wǎng)istar乳鼠,開胸取心,D-Hank’s液清洗2次,剪碎放入10 ml離心管中;加入心肌5倍體積的0.25%胰酶,37℃水浴消化12min,共消化4~5次;除第一次外,每次收集的細(xì)胞懸液,放入等體積的高糖DMEM培養(yǎng)液終止消化后,1500 r/min離心 15 min,棄上清,用含 10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)液將沉淀吹打?yàn)閱渭?xì)胞懸液,經(jīng)200目篩網(wǎng)過濾去除未消化組織塊。用差速貼壁分離法去除成纖維細(xì)胞,將純化心肌細(xì)胞計(jì)數(shù)后,以 5×106cells/cm2接種于培養(yǎng)皿中,37℃、5%CO2條件下孵育培養(yǎng)。隔天換液,取第4天的細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
正常對(duì)照組(Control):細(xì)胞正常培養(yǎng),未施加任何因素,培養(yǎng)時(shí)間同實(shí)驗(yàn)組;模擬缺血/再灌注組(ischemia/reperfusion,I/R):心肌細(xì)胞模擬缺血 3 h,再灌6 h處理。(模擬缺血缺氧液為無血清、無糖培養(yǎng)基,pH=6.8,置于缺氧罐中,通入 95%N2,5%CO2);模擬缺血后處理組(ischemic postconditioning,PC):方法同缺血/再灌注組,在缺血結(jié)束再灌前連續(xù)進(jìn)行3次5 min間隔的再灌注/再缺血處理,繼之恢復(fù)持續(xù)灌注;PC+DR2激動(dòng)劑(Bromocriptine,Bro)組(PC+Bro):同缺血后處理組,在再灌注前10 min加入 Bro,后同 PC組;PC + DR2抑制劑(Haloperidol,Hal)組(PC+Hal):同缺血后處理組,在再灌注前10min加入Hal,后同PC組;PC+DR2抑制劑+DR2激動(dòng)劑組(PC+Hal+Bro):方法同缺血后處理,在再灌注前20 min加入Hal,在再灌注前10min注入 Bro。
取各組心肌細(xì)胞,PBS洗滌后加入全細(xì)胞裂解液,冰浴 40 min,4℃,15 000 r/min離心 15 min,取上清進(jìn)行蛋白質(zhì)定量。取50μg蛋白樣品于10%SDSPAGE凝膠電泳;隨后轉(zhuǎn)印于 PVDF濾膜上,用5%脫脂奶粉,37℃封閉1 h;用封閉液稀釋一抗,4℃震蕩過夜;TBST稀釋二抗(1/2 000的羊抗兔IgG二抗,堿性磷酸酶標(biāo)記),室溫振蕩孵育2 h;最后顯色,凝膠成像系統(tǒng)下拍照,計(jì)算條帶光密度值,蛋白表達(dá)水平以其與GAPDH光密度比值來表示。
取各組細(xì)胞的培養(yǎng)液,用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定蛋白濃度:標(biāo)準(zhǔn)品為牛血清白蛋白;按試劑盒說明書操作;紫外分光光度計(jì)上讀出吸光度(OD)值,計(jì)算細(xì)胞的LDH和SOD活力以及MDA水平。
用0.25%胰酶消化細(xì)胞 4 min,PBS洗滌1次,2 000 r/min離心 10 min后棄上清收集細(xì)胞;4℃,2.5%戊二醛固定;1%鋨酸固定,常規(guī)乙醇、丙酮逐級(jí)脫水,環(huán)氧樹脂包埋,超薄切片,鉛鈾雙重染色,透射電鏡下觀察心肌細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)并攝片。
取各組心肌細(xì)胞,0.25%胰酶消化,PBS洗滌2次后調(diào)整細(xì)胞密度為1×106cells/L,制成單細(xì)胞懸液;加入由100μl Binding Buffer和 FITC標(biāo)記的Annexin-V(20μg/ml)10μl,室溫避光 30min;加入 PI(50 μg/ml)5μl,避光 5 min;加入 400μl Binding Buffer,立即用流式細(xì)胞儀(FACScan)進(jìn)行定量檢測(cè)。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以均值±標(biāo)準(zhǔn)差(ˉx±s)表示,全部數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)采用SPSS 10.1統(tǒng)計(jì)軟件包進(jìn)行,采用方差分析及配對(duì)t檢驗(yàn)判斷其差異顯著性。
(1)DR2蛋白表達(dá)變化用 DR2/GAPDH表示,與Control組(0.49±0.06)相比,I/R組 DR2蛋白表達(dá)增加(0.74±0.11,P<0.01);(2)與 I/R組比較,PC組 DR2蛋白表達(dá)進(jìn)一步增加(1.19±0.10,P<0.01);(3)Bro上調(diào) PC引起的 DR2蛋白表達(dá)增加(1.86±0.07),Hal則可取消 Bro的這種作用(0.77±0.08,圖 1)。
Fig.1 Protein levels of DR2(n=4)I/R:Ischemia/reperfusion;PC:Ischemic postconditioning;PC+Bro:Ischemic postconditioning+Bromocriptine;PC+Hal:Ischemic postconditioning+Haloperidol;PC+Hal+Bro:Ischemic postconditioning+Haloperidol+Bromocriptine**P<0.01 vs controlgroup;##P<0.01 vs I/R group;△△P<0.01 vs PC group;▲▲P<0.01 vs PC+Bro group
(1)與 Control比較,I/R顯著增加 LDH活性和MDA含量,降低 SOD活性(P<0.01);(2)與 I/R組比較,PC顯著降低LDH活性、MDA含量,升高SOD活性(P<0.01);(3)與 PC組比較,Bro進(jìn)一步降低LDH活性、MDA含量,升高 SOD活性(P<0.01),Hal則可取消Bro的這種作用(表1)。
Control組:核膜清楚,染色質(zhì)均勻分布,線粒體結(jié)構(gòu)完好;I/R組:線粒體腫脹和空泡化,肌絲溶解,脊斷裂,細(xì)胞核固縮,染色質(zhì)高度凝聚、邊緣化;PC組:核膜結(jié)構(gòu)較完好,染色質(zhì)部分凝聚,少量線粒體空泡化;PC+Bro組:細(xì)胞損傷程度較PC組減輕;PC+Hal和PC+Hal+Bro組:細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)變化同PC組相似(圖 2)。
Tab.1 Changes of LDH and SOD activity and MDA content in cellmedium(ˉx±s,n=8)
Fig.2 The ultrastructure of cardiomyocytes using transmission electronmicroscopy(×8 000)A:Control;B:Ischemia/reperfusion(I/R);C:Ischemic postconditioning(PC); D: Ischemic postconditioning+Bromocriptine(PC+Bro);E:Ischemic postconditioning+Haloperidol(PC+Hal);F:Ischemic postconditioning+Haloperidol+Bromocriptine
(1)正常組心肌細(xì)胞凋亡率僅為 6.53%±0.57%;(2)I/R組心肌細(xì)胞凋亡率為 65.63% ±2.89%,明顯高于正常對(duì)照組(P<0.01);(3)與 I/R組比較,PC組心肌細(xì)胞凋亡率明顯減少(54.50%±1.72%,P<0.01);(4)與 PC組比較,Bro進(jìn)一步降低細(xì)胞凋亡率(30.71%±2.41%,P<0.01);Hal則取消 Bro的這種作用(41.81%±2.63%,圖 3)。
Fig.3 Detection the apoptosis rate of cardiomyocytes by FCM(n=6)I/R:Ischemia/reperfusion;PC:Ischemic postconditioning;PC+Bro:Ischemic postconditioning+Bromocriptine;PC+Hal:Ischemic postconditioning+ Haloperidol;PC+Hal+Bro:Ischemic postconditioning+Haloperidol+Bromocriptine**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs I/R group;△△P<0.01 vs PC group;▲▲P<0.01 vs PC+Bro group
(1)與正常組相比,I/R增加 p-p38和 p-JNK的活性(P<0.01);(2)與 I/R組比較,PC降低 p-p38和p-JNK的活性(P<0.01);(3)與 PC組比較,Bro進(jìn)一步降低p-p38和p-JNK的活性,Hal則可取消Bro的這種作用(圖 4,表 2)。
Fig.4 The changes of p-p38 and p-JNK activities in defferent groups(n=4)C:Control;I/R:Ischemia/reperfusion;PC:Ischemic postconditioning; PC + Bro: Ischemic postconditioning +Bromocriptine; PC+ Hal: Ischemic postconditioning +Haloperidol;PC+Hal+Bro:Ischemic postconditioning+Haloperidol+Bromocriptine
Tab.2 Results analysis of p-p38 and p-JNK expressions in cardiomyocytes from different groups(ˉx±s,n=4)
缺血性心臟病嚴(yán)重危害人類健康,盡早恢復(fù)血流是減輕缺血心肌損傷的關(guān)鍵,但是再灌注療法受缺血組織血管再通時(shí)間的限制,并存在再灌注損傷等問題。因此,減輕再灌注損傷成為醫(yī)學(xué)界亟待解決的重大問題[10,11]。2003年,Zhao等在犬心肌缺血后再灌注前進(jìn)行3次30 s的再灌注,保護(hù)冠狀動(dòng)脈內(nèi)皮功能,限制心肌梗死范圍,稱為缺血后處理[1]。目前已在多種屬動(dòng)物模型上證實(shí)缺血后處理是在缺血后實(shí)施的強(qiáng)有力的內(nèi)源性心臟保護(hù)現(xiàn)象,但機(jī)制不詳。本實(shí)驗(yàn)利用乳鼠心肌細(xì)胞建立缺血后處理模型,觀察DR2激活在心肌缺血后處理中的作用并探討其機(jī)制。
透射電鏡結(jié)果顯示:在I/R后乳鼠心肌細(xì)胞出現(xiàn)線粒體腫脹和空泡化,肌絲溶解,脊斷裂,細(xì)胞核固縮,染色質(zhì)高度凝聚、邊緣化;同時(shí),細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH漏出增多。這些結(jié)果均表明I/R導(dǎo)致心肌細(xì)胞發(fā)生明顯的損傷。LDH外漏程度可反映細(xì)胞損傷程度;SOD活性可反映機(jī)體清除自由基和抗脂質(zhì)過氧化的能力;MDA含量可反映氧自由基產(chǎn)生和組織的受損程度。本研究結(jié)果顯示:與Control組相比,I/R組培養(yǎng)液中MDA含量顯著增加、SOD活性明顯降低,這表明I/R性心肌損傷與自由基生成增多有關(guān)。與I/R組比較,PC組LDH活性和MDA含量顯著降低,SOD活性明顯升高;并且透射電鏡結(jié)果顯示:核膜結(jié)構(gòu)較完好,染色質(zhì)部分凝聚,少量線粒體空泡化;這說明PC可減輕心肌細(xì)胞I/R損傷,其機(jī)制與清除自由基相關(guān)。
大量動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床研究證明,PC可誘導(dǎo)觸發(fā)因子釋放,經(jīng)多條細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的介導(dǎo),作用于多種效應(yīng)器,影響氧自由基產(chǎn)生、鈣超載等I/R損傷的關(guān)鍵環(huán)節(jié)而發(fā)揮心肌細(xì)胞保護(hù)作用[11]。主要的信號(hào)通路包括磷脂酰肌醇3激酶(phosphoinositide-3 kinase,PI3K)、絲裂素活化蛋白激酶(mitogenactivated protein kinases,MAPKs)、蛋白激酶 C(protein kinase C,PKC)、蛋白激酶 G(protein kinase G,PKG)、蛋白激酶A(protein kinase A,PKA)、酪氨酸激酶和JAK/STAT等[11]。
MAPKs通路是生物體內(nèi)重要的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)之一,參與細(xì)胞生長(zhǎng)、分裂、分化、增殖、凋亡等多種生理過程[7],其主要包括 ERK、p38和 JNK三條途徑,其中,ERK被激活后主要與細(xì)胞增殖與分化相關(guān),p38與 JNK被激活后主要與細(xì)胞凋亡相關(guān)[12]。本研究結(jié)果顯示:I/R組心肌細(xì)胞凋亡率顯著升高,p-p38和p-JNK活性均明顯上調(diào),而PC降低細(xì)胞凋亡率,下調(diào)p-p38、p-JNK的活性,這表明 PC通過抑制p-p38和p-JNK的活性減輕心肌細(xì)胞I/R損傷誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果還顯示:Bro(DR2的激動(dòng)劑)可進(jìn)一步增加PC減輕心肌I/R誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷和凋亡以及增強(qiáng)機(jī)體的抗氧化能力;另外,Bro也可增強(qiáng)PC抑制p-p38和p-JNK活性的能力。
本實(shí)驗(yàn)過程中,PC處理的各組比Control和I/R組所用時(shí)間延長(zhǎng)15 min,但是眾所周知,PC對(duì) I/R損傷具有保護(hù)作用,因此,與I/R組相比,PC處理的各組的心肌損傷是減輕的。
綜上所述,DR2激活參與PC減輕心肌I/R誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷和凋亡,其機(jī)制與下調(diào)p-p38和p-JNK的活性有關(guān)。結(jié)合我們前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果,激活心肌DR2有望為缺血性心臟病的防治提供新靶點(diǎn)。
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