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    口蹄疫滅活疫苗中蛋白質(zhì)含量測定方法的比較

    2013-11-23 05:57:06鄒興啟朱元源史蘭廣趙啟祖
    中國獸藥雜志 2013年12期
    關(guān)鍵詞:馬斯亮凱氏定氮法測定

    馬 麗,鄒興啟,朱元源,史蘭廣,趙啟祖*

    (1.中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京100081;2.北京科興生物制品有限公司,北京100085)

    口蹄疫滅活疫苗中主要成分為抗原和佐劑,純化不完全的疫苗中可能會含有細胞碎片、血清、病毒非結(jié)構(gòu)蛋白等雜蛋白,使用過程中會引發(fā)動物副反應(yīng),同時疫苗中病毒非結(jié)構(gòu)蛋白的存在給病毒感染和疫苗免疫的鑒別診斷帶來困難[1-2]。因此,選擇一種適合、簡便、快速、靈敏的蛋白質(zhì)含量測定方法來準確定量口蹄疫滅活疫苗中蛋白質(zhì)對于疫苗的質(zhì)量監(jiān)控意義重大。目前測定蛋白質(zhì)含量的方法有多種,包括凱氏定氮法、雙縮脲法、Lowry法、考馬斯亮藍法、2,2’-聯(lián)喹啉-4,4’-二羧酸法和紫外分光光度法等[3]。本試驗采用凱氏定氮法、改良Lowry法和考馬斯亮藍法這三種較常見的測定方法,測定抽取樣品的蛋白質(zhì)含量,并對之進行比較,最后采用SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)進一步驗證測定結(jié)果,以期為口蹄疫滅活疫苗蛋白質(zhì)含量檢測方法的遴選和標準化提供實驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 儀器 KjeltecTM2300自動定氮儀(FOSS公司產(chǎn)品),紫外分光光度計(Thermo公司產(chǎn)品),蛋白質(zhì)電泳儀,渦旋混合器,離心機(SIGMA公司產(chǎn)品),“U”型96孔板,各量程移液槍。

    1.2 試劑 催化劑片(FOSS公司產(chǎn)品),濃硫酸,雙氧水,12%PAGE膠(invitrogen公司產(chǎn)品),丙酮,改良Lowry法蛋白質(zhì)測定試劑盒(Thermo公司產(chǎn)品),考馬斯亮藍法蛋白質(zhì)測定試劑盒(Thermo公司產(chǎn)品)。

    1.3 檢測樣品 國內(nèi)不同口蹄疫滅活疫苗生產(chǎn)廠家抽取的15批次口蹄疫O型、亞洲1型二價滅活疫苗。

    1.4 方法

    1.4.1 樣品制備 破乳樣品制備:準確量取10 mL疫苗樣品,加1.1 mL正丁醇,充分混勻,4℃靜置過夜,取下層清亮液體,即為破乳樣品。

    檢測樣品制備:準確量取100 μL疫苗樣品,加900 μL丙酮,充分混勻,室溫靜置 10 min,4 ℃,15000 g,離心15 min,棄上清,丙酮洗沉淀兩次,室溫干燥沉淀,用適量去離子水重懸沉淀[4-5]。

    標準牛血清白蛋白系列濃度樣品制備:將試劑盒內(nèi)標準牛血清白蛋白(2 mg/mL),用去離子水稀釋成終濃度為 0、25、125、250、500、750、1000、1500、2000 μg/mL 樣品,備用。

    1.4.2 凱氏定氮法 以生理鹽水為空白對照,按KjeltecTM2300自動定氮儀使用操作規(guī)程對破乳樣品定氮。準確量取1 mL樣品加入消化管,同時加入半片催化劑片、5 mL濃硫酸、2.5 mL雙氧水,置消化爐上,420℃消化1 h,冷卻至室溫,將樣品置全自動凱氏定氮儀上定氮,測定氮含量,乘以蛋白質(zhì)換算系數(shù)6.25,即得1 mL樣品蛋白質(zhì)含量,每一樣品平行測定三次,取平均值。

    1.4.3 改良Lowry法標準曲線繪制 按改良Lowry法蛋白質(zhì)測定試劑盒說明書操作,準確量取標準牛血清白蛋白系列濃度樣品各40 μL,加入“U”型96孔板中,加入試劑盒內(nèi)Lowry試劑200 μL,室溫放置10 min,加入酚試劑 20 μL,室溫放置 30 min,測定各濃度在750 nm吸光值。

    1.4.4 考馬斯亮藍法標準曲線繪制 按考馬斯亮藍法蛋白質(zhì)測定試劑盒說明書操作,準確量取標準牛血清白蛋白系列濃度樣品各取10 μL,加入“U”型96孔板中,加入試劑盒內(nèi)考馬斯亮藍溶液300 μL,室溫放置10 min,測定各濃度在595 nm吸光值。

    1.4.5 改良Lowry法和考馬斯亮藍法比較試驗改良Lowry法和考馬斯亮藍法檢測范圍分別為1~1500 μg/mL 和100 ~1500 μg/mL,為了驗證樣品中蛋白質(zhì)含量對測定結(jié)果影響,從15批疫苗中選取6批疫苗:1號、2號、6號、7號、8號、14號,這6批疫苗分別來自6個口蹄疫滅活疫苗生產(chǎn)廠,分別測定其原倍、5倍和10倍稀釋后蛋白質(zhì)含量。

    1.4.6 SDS-PAGE 按純化樣品制備方法得15批疫苗沉淀,再用20 μL上樣緩沖液重懸沉淀,參照《蛋白質(zhì)技術(shù)手冊》[4]進行 SDS-PAGE:使用12%PAGE膠,恒壓120 V,直至溴酚藍前沿至膠前沿約1 cm處停止電泳。用考馬斯亮藍染色,觀察電泳圖譜,并與上述三種蛋白質(zhì)含量測定方法檢測的15批疫苗樣品總蛋白質(zhì)含量進行比對。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 標準曲線

    2.1.1 改良Lowry法標準曲線 以牛血清白蛋白濃度為縱坐標,以其各濃度在750 nm處吸光值為橫坐標,繪制標準曲線圖1。得回歸方程為 y=379.57x2+300.63x-21.749,線性相關(guān)系數(shù) R2=0.9993(0.98-1),顯著相關(guān)。

    圖1 改良Lowry法標準曲線圖

    2.1.2 考馬斯亮藍法標準曲線 以牛血清白蛋白濃度為縱坐標,以其各濃度在595 nm處吸光值為橫坐標,繪制標準曲線圖2。得回歸方程為 y=1324.1x2-958.85x+216.79,線性相關(guān)系數(shù) R2=0.994(0.98-1),顯著相關(guān)。

    圖2 考馬斯亮藍法標準曲線圖

    2.2 蛋白質(zhì)含量測定結(jié)果及分析

    2.2.1 凱氏定氮法測定結(jié)果 按破乳樣品制備方法對9批疫苗破乳,按1.4.2項方法測定其總蛋白質(zhì)含量,測定結(jié)果見表1。

    2.2.2 改良Lowry法測定結(jié)果 按檢測樣品制備方法對15批疫苗樣品進行處理,最后用50 μL去離子水重懸沉淀,按1.4.3項方法測定其在750 nm吸光值,根據(jù)標準曲線得出每一樣品總蛋白質(zhì)含量,每一樣品重復3次,取其平均值,測定結(jié)果見表1。

    表1 三種蛋白質(zhì)測定方法三次測定結(jié)果平均值(μg/mL)

    2.2.3 考馬斯亮藍法測定結(jié)果 按檢測樣品制備方法對15批疫苗樣品進行處理,最后用50 μL去離子水重懸沉淀,按1.4.4項方法測定其在595 nm吸光值,根據(jù)標準曲線得出每一樣品總蛋白質(zhì)含量,每一樣品平行測定3次,取其平均值,測定結(jié)果見表1。

    2.2.4 與經(jīng)典方法比較結(jié)果 凱氏定氮法是一種蛋白質(zhì)測定的經(jīng)典方法。因此,將部分樣品改良Lowry法和考馬斯亮藍法測定結(jié)果同凱氏定氮法測定結(jié)果進行了比較,結(jié)果見圖3。

    由表1可見,同一批疫苗樣品,不同測定方法測定蛋白質(zhì)含量差異較大,其中凱氏定氮法測定結(jié)果最高,改良Lowry法測定結(jié)果適中,考馬斯亮藍法測定結(jié)果最低。圖3可見不同批次疫苗兩種方法測定結(jié)果所占凱氏定氮法測定結(jié)果百分比各不相同,差異也比較大,其中考馬斯亮藍法測定結(jié)果最低的僅占3.1%。5號和6號總蛋白質(zhì)含量較低,凱氏定氮法未能準確測定其蛋白質(zhì)含量,改良Lowry法和考馬斯亮藍法測定結(jié)果一致。

    圖3 改良Lowry法和考馬斯亮藍法測定結(jié)果同凱氏定氮法測定結(jié)果比較

    2.2.5 改良Lowry法和考馬斯亮藍法比較試驗結(jié)果 在上述測定基礎(chǔ)上,按檢測樣品制備方法處理選取的6批疫苗樣品,最后分別用50、250、500 μL去離子水重懸,采用這兩種方法測定其蛋白質(zhì)含量,每一樣品每一稀釋度做3次平行測定。測定結(jié)果見表2,ˉx為3次測定結(jié)果平均值,s為標準差,并使用SPSS軟件分析每一方法對疫苗不同稀釋倍數(shù)之間的測定結(jié)果差異性。

    表2 兩種方法測定疫苗不同稀釋度蛋白質(zhì)含量結(jié)果(蛋白質(zhì)濃度μg/mL:±s)

    表2 兩種方法測定疫苗不同稀釋度蛋白質(zhì)含量結(jié)果(蛋白質(zhì)濃度μg/mL:±s)

    測定方法 稀釋 1號 2號 6號 7號 8號 14號原倍 332±44.1 1572±135.7 67±5.88 653±18.36 2009±改良Lowry法171.22 477±64.49 5倍 346±14.1 1587±103.45 252±8.79 716±16.06 1908±8.87 454±16.15 10倍 859±39.03 1776±31.41 164±3.94 744±53.87 1766±105.04 457±38.07考馬斯亮藍法原倍 126±3.41 156±1.30 64±0.32 79±2.45 700±21.05 137±6.28 5倍 328±1.17 341±1.63 321±0.79 329±4.35 473±6.17 329±0.79 10倍 640±2.54 645±2.45 656±3.27 635±0.64 784±23.32 650±10.25

    由表2可見,樣品中蛋白質(zhì)含量對改良Lowry法和考馬斯亮藍法測定結(jié)果有一定影響。用SPSS軟件分析6批次疫苗不同稀釋倍數(shù)結(jié)果之間的差異性(結(jié)果未列出),其中改良Lowry法測定原倍和5倍稀釋測定結(jié)果差異不顯著,個別樣品原倍、5倍和10倍稀釋差異均不顯著,僅6號疫苗差異顯著,分析原因為蛋白質(zhì)含量過低,稀釋后超出改良Lowry法測定范圍;考馬斯亮藍法測定的大部分疫苗樣品不同稀釋倍數(shù)測定結(jié)果差異較顯著。

    2.3 SDS-PAGE結(jié)果及分析 按照1.4.6項對15批疫苗進行SDS-PAGE電泳,結(jié)果見表1和圖4。

    圖4 疫苗SDS-PAGE電泳圖

    SDS-PAGE電泳為定性試驗,其圖譜顏色的深淺與蛋白質(zhì)的量是成正比的。圖4明顯可見部分疫苗SDS-PAGE電泳圖譜差異較大,如5號、10號、7號、2號、8號圖譜顏色依次變深,其改良Lowry法測定蛋白質(zhì)含量分別為 67、443、653、1572、2009 μg/mL,含量依次增加,兩者一致;而考馬斯亮藍法測定5號、10號、7號蛋白質(zhì)含量依次為64、74、79 μg/mL,與圖譜顏色不一致;凱氏定氮法測定蛋白質(zhì)含量與圖譜顏色是基本一致的。

    3 討論

    凱氏定氮法是一種蛋白質(zhì)測定的經(jīng)典方法,適用樣品廣泛,其依據(jù)蛋白質(zhì)為含氮的有機化合物,通過測定樣品中氮含量,乘以換算系數(shù)轉(zhuǎn)化為蛋白質(zhì)的含量,本法靈敏度較低,適用于0.2~2.0 mg氮的測定[3]。本研究采用全自動凱氏定氮法測定,檢測氮含量下限為100 μg(蛋白質(zhì)含量檢測下限為625 μg),靈敏性更高。但是,我國官方發(fā)布了關(guān)于控制口蹄疫滅活疫苗純度的相關(guān)文件[6],文件規(guī)定2015年1月1日起,總蛋白含量為每mL疫苗不高于500 μg,顯然超出其檢測范圍。并且此方法操作復雜費時,試劑消耗量大[7],試驗過程涉及到濃硫酸、雙氧水等危險溶劑的使用。表1中凱氏定氮法測定7批疫苗蛋白質(zhì)含量均明顯高于改良Lowry法和考馬斯亮藍法測定結(jié)果。究其原因,可能是由于生產(chǎn)工藝過程純化不完全,疫苗樣品中氨基酸、核酸等成分中的非蛋白氮也會被換算成蛋白質(zhì),使得測定結(jié)果要比實際值高。

    Lowry法是依據(jù)蛋白質(zhì)分子中含有的肽鍵在堿性溶液中與Cu2+螯合形成蛋白質(zhì)-銅復合物,此復合物使酚試劑的磷鉬酸還原,產(chǎn)生藍色化合物,化合物在745~750 nm處有最大吸光值,在此范圍內(nèi)其顏色深淺與蛋白質(zhì)濃度呈正比,因此可檢測750 nm 光吸收值的大小計算蛋白質(zhì)含量[3-4,5],本研究采用改良Lowry法測定蛋白質(zhì)含量,其檢測范圍為1~1500 μg/mL,滿足官方規(guī)定蛋白質(zhì)含量要求,幾乎所有疫苗樣品中蛋白質(zhì)含量均在此范圍內(nèi)。此外,本方法直接檢測蛋白質(zhì)含量,排除了凱氏定氮法中非蛋白氮影響,測定蛋白質(zhì)含量相對準確,對同一批樣品多次重復實驗,結(jié)果平行性較好。

    考馬斯亮藍法是依據(jù)在酸性溶液中考馬斯亮藍G250與蛋白質(zhì)分子中的堿性氨基酸(精氨酸)和芳香族氨基酸結(jié)合形成藍色復合物,復合物在465~595 nm處有最大吸光值,在此范圍內(nèi)其顏色深淺與蛋白質(zhì)濃度呈正比,因此可檢測595 nm光吸收值的大小計算蛋白質(zhì)含量[3-4,8]。本研究使用的試劑盒檢測范圍為100~1500 μg/mL,部分樣品超出其檢測范圍,需要做濃縮或稀釋處理。

    與凱氏定氮法相比,改良Lowry法和考馬斯亮藍法則操作過程簡單、迅速、試劑消耗量小,可以通過準確配取標準蛋白溶液,直接測定樣品中蛋白質(zhì)含量,排除凱氏定氮法中非蛋白氮對測定結(jié)果影響。表1結(jié)果顯示考馬斯亮藍法測定值明顯低于改良Lowry法測定值。與本實驗結(jié)果相似,1976年,Bradford M M[9]指出BSA溶液酶解后考馬斯亮藍法測定其蛋白質(zhì)含量結(jié)果要比酶解前低。馬志鵬等[10]比較了改良Lowry法和考馬斯亮藍法測定標準牛血清白蛋白(BSA)水溶液在堿性蛋白酶水解前與后的蛋白質(zhì)含量,其結(jié)果表明未進行酶解的BSA水溶液,兩種方法測定的蛋白質(zhì)含量相當;BSA水溶液酶解后,使用改良Lowry法測定的蛋白質(zhì)含量與酶解前的值相近;使用考馬斯亮藍法測定蛋白質(zhì)含量值較酶解前出現(xiàn)大幅下降。馬志鵬等[10]比較了改良Lowry法和考馬斯亮藍法對O型口蹄疫病毒滅活抗原總蛋白含量測定,結(jié)果表明改良Lowry法能夠更加精確、真實地反映O型口蹄疫病毒滅活抗原總蛋白含量。因此,改良Lowry法能較真實的反映口蹄疫滅活疫苗中蛋白質(zhì)含量,與凱氏定氮法相比,此方法操作簡單,工作效率高,而且低耗。

    [1]Doel T R.Optimisation of the immune response to foot-andmouth disease vaccines[J].Vaccine,1999,17(13/14):1767-1771.

    [2]薛景山.口蹄疫防疫問題解析[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2008.

    [3]中國藥典委員會.中華人民共和國藥典二○一○年版[S].

    [4]汪家政,范 明.蛋白質(zhì)技術(shù)手冊[M].北京:科學出版社,2000:77-100.

    [5]Waterborg J H.The protein protocols handbook[M].Germany:Springer-Verlag,2009:7-10.

    [6]中華人民共和國農(nóng)業(yè)部.農(nóng)辦醫(yī)[2013]32號文件[S].

    [7]郭穎娜,孫 衛(wèi).蛋白質(zhì)含量測定方法的比較[J].河北化工,2008,31(4):36-37.

    [8]Kruger N J.The protein protocols handbook[M].Germany:Springer-Verlag,2009:17-24.

    [9]Bradford M M.A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of proteindye binding[J].Analytical biochemistry,1976,72(1):248-254.

    [10]馬志鵬,潘 倩,韋雪玲,等.改良Lowry法和 Bradford法測定O型口蹄疫病毒滅活抗原總蛋白含量的比較[J].甘肅科技,2012,28(2):142-143.

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