胡麗萍,陸紅,白永恒,王斯璐,洪煒龍,林成成,梁勇,林向陽(yáng)
(溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院,浙江 溫州 325000,1.醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)中心;2.外科實(shí)驗(yàn)室)
近年來(lái),有關(guān)服用中草藥導(dǎo)致的腎臟損害屢見(jiàn)報(bào)道,馬兜鈴酸(aristolochic acid,AA)就是其中之一。在體內(nèi),AA引起損傷的主要病理表現(xiàn)為炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、腎小管上皮細(xì)胞凋亡和壞死以及間質(zhì)纖維化等[1]。目前AA致腎間質(zhì)纖維化的分子機(jī)制尚不明確。我們前期研究顯示,TGF-β1可能在AA誘導(dǎo)腎間質(zhì)纖維化中發(fā)揮重要作用[2-3]。最近研究顯示,GTPase Rho家族某些成員在調(diào)控TGF-β1中具有重要作用[4]。本研究擬通過(guò)體外實(shí)驗(yàn)觀察AA對(duì)腎小管上皮細(xì)胞的損傷作用,同時(shí)探究GTPase Rho的重要成員Rac1蛋白在AA損傷小管上皮細(xì)胞過(guò)程中可能的作用。
1.1 材料 AA(美國(guó)Sigma公司);DMEM細(xì)胞培養(yǎng)液(美國(guó)Hyclone公司);胎牛血清(杭州四季青公司);胰蛋白酶和TRIzol提取液(美國(guó)Gibco公司);WST-1和Hoechst 33258染色液(上海碧云天公司);兔抗鼠Rac1抗體(美國(guó)Santa Cruz公司);兔抗鼠III型膠原抗體(Bioworld公司);Rac1和TGF-β1 ELISA檢測(cè)試劑盒(上海西唐生物);RT-PCR試劑(美國(guó)Promega公司);MYCYCLER梯度PCR儀(美國(guó)BIOROD公司);7500定量PCR儀(美國(guó)Applied Biosystens公司);Varioskan Flash全波長(zhǎng)多功能掃描儀(美國(guó)Thermo Scientific公司);DM4000 B LED熒光正置顯微鏡(德國(guó)Leica公司)。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng):大鼠腎小管上皮細(xì)胞NRK-52E購(gòu)自中科院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞資源中心。NRK-52E細(xì)胞在含5%小牛血清的DMEM培養(yǎng)液中,于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。取細(xì)胞接種于6孔板中,待細(xì)胞70%~80%融合時(shí),在培養(yǎng)液中加入AA,對(duì)照組加入含有等量溶劑的培養(yǎng)液。繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,用倒置相差顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化。
1.2.2 WST-1法檢測(cè)細(xì)胞增殖抑制率:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的NRK-52E細(xì)胞,用胰酶消化,調(diào)整細(xì)胞密度為5×107/L,接種于96孔培養(yǎng)板中,每孔加入100μL培養(yǎng)液。待細(xì)胞貼壁后,實(shí)驗(yàn)組每孔加入濃度為5、10、20、50和100μg/mL的AA,并設(shè)6個(gè)平行孔,作用24 h,對(duì)照組加溶劑;另外,在保持AA作用濃度為10μg/mL的情況下,分別作用24、48和72 h。培養(yǎng)結(jié)束前2 h每孔加入10μL WST-1溶液,培養(yǎng)結(jié)束后于全波長(zhǎng)多功能掃描儀上測(cè)量450 nm主波長(zhǎng)和690 nm副波長(zhǎng)的吸光度值(A值),實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。按公式計(jì)算AA對(duì)NRK-52E細(xì)胞增殖的抑制率:細(xì)胞增殖抑制率(%)=1-(實(shí)驗(yàn)組A450值-空白組A690值)/(對(duì)照組A450值-空白組A690值)×100%。
1.2.3 Hoechst 33258染色觀察細(xì)胞凋亡:將預(yù)處理的潔凈蓋玻片置于6孔板內(nèi),接種細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)夜,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到70%~80%時(shí),分別加入AA藥物1μg/mL和10μg/mL作用24 h,移去培養(yǎng)液,4%多聚甲醛固定10 min,棄固定液,PBS洗兩次,Hoechst 33258染液染色5 min,去染色液,PBS洗兩次,吸盡液體。滴加抗熒光淬滅封片液于載玻片上,蓋上貼有細(xì)胞的蓋玻片,熒光顯微鏡觀察,并隨機(jī)選取位置拍照。
1.2.4 real-time RT-PCR檢測(cè)TGF-β1 mRNA的表達(dá):采用Trizol試劑提取已處理細(xì)胞中的RNA,于260/280 nm測(cè)定吸光度值以確定樣本純度和濃度。根據(jù)試劑說(shuō)明書(shū)將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA。應(yīng)用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)TGF-β1 mRNA的特異性引物,以β-actin作為內(nèi)參,引物由上海生工公司合成。引物序列為T(mén)GF-β1:5’-AGGCGGTGCTCGCTTTGT-3’(正向)和5’-GATTGCGTTGTTGCGGTCC-3’(反向);β-actin:5’-CCCATCTATGAGGGTTACGC-3’(正向)和5’-TTTAATGT CACGCACGATTTC-3’(反向)。PCR擴(kuò)增體系:5μL 2×SYBR Green熒光定量試劑、2μL引物(上、下游各1μL,終濃度200 nmol/L)、2μL反應(yīng)緩沖液、1 μL cDNA。PCR程序?yàn)椋?5 ℃ 3 min預(yù)變性,1個(gè)循環(huán);95 ℃ 5 s,60 ℃ 35 s,40個(gè)循環(huán)。采用相對(duì)定量法計(jì)算獲得結(jié)果,溶解曲線(xiàn)分析結(jié)果的可靠性。相對(duì)表達(dá)量=2-△△Ct,ΔΔCt=[Ct目的基因(待測(cè)樣品)-Ct內(nèi)參照(待測(cè)樣品)]-[Ct目的基因(校正樣品)-Ct內(nèi)參照(校正樣品)]。
1.2.5 ELISA法檢測(cè)Rac1和TGF-β1蛋白含量:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的NRK-52E細(xì)胞,分別以1、5、10μg/mL AA作用24 h,收集培養(yǎng)液。Rac1和TGF-β1含量檢測(cè)采用雙抗體夾心ABC-ELISA法,嚴(yán)格按照Rac1和TGF-β1 ELISA檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。采用BCA法進(jìn)行蛋白定量,根據(jù)與總蛋白比值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。
1.2.6 細(xì)胞免疫熒光檢測(cè)III型膠原和Rac1含量:將預(yù)處理的潔凈蓋玻片置于6孔板內(nèi),接種細(xì)胞培養(yǎng),待細(xì)胞貼壁后,加入AA藥物10μg/mL作用24 h。輕輕取出細(xì)胞爬片放到用過(guò)的細(xì)胞培養(yǎng)皿里,PBS洗3次,4%冷的多聚甲醛固定20 min,棄固定液,PBS洗3次;0.2% Triton X-100通透10 min,PBS洗3次;血清封閉30 min,PBS洗3次;加一抗,4 ℃濕盒內(nèi)過(guò)夜,PBS洗3次;加二抗,37 ℃濕盒內(nèi)1 h,PBS洗3次,甘油封片,照熒光片。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法 采用SPSS13.0軟件包進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。結(jié)果以 ±s表示,兩樣本比較采用成組t檢驗(yàn),相關(guān)分析采用pearson分析法。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 WST-1法檢測(cè)AA對(duì)NRK-52E細(xì)胞的增殖抑制率
結(jié)果顯示,保持AA作用24 h情況下,隨著AA濃度增加,細(xì)胞增殖抑制率明顯增加;保持AA 10μg/mL作用濃度不變的情況下,隨著作用時(shí)間的延長(zhǎng),AA對(duì)細(xì)胞的增殖抑制率明顯增加,提示AA抑制NRK-52E細(xì)胞增殖具有濃度和時(shí)間的依賴(lài)性,見(jiàn)圖1。
圖1 AA對(duì)NRK-52E細(xì)胞增殖的抑制情況
2.2 Hoechst 33258染色觀察AA對(duì)NRK-52E細(xì)胞凋亡的作用 與對(duì)照組細(xì)胞相比,AA 1μg/mL干預(yù)組的細(xì)胞出現(xiàn)凋亡小體,AA 10μg/mL干預(yù)組的細(xì)胞凋亡特征更明顯,且細(xì)胞數(shù)量明顯減少,提示AA能誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞凋亡,且在作用時(shí)間相同的情況下,高濃度AA誘導(dǎo)凋亡的作用更顯著,見(jiàn)圖2。
圖2 Hoechst 33258染色檢測(cè)AA誘導(dǎo)大鼠NRK-52E細(xì)胞凋亡(×400)
2.3 AA對(duì)腎小管上皮細(xì)胞膠原累積的影響 細(xì)胞免疫熒光及其相對(duì)定量結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,10μg/mL AA作用NRK-52E細(xì)胞后,細(xì)胞外基質(zhì)成分III型膠原的表達(dá)明顯增多(P<0.05),提示腎小管上皮細(xì)胞出現(xiàn)纖維化樣改變,見(jiàn)圖3。
圖3 細(xì)胞免疫熒光檢測(cè)AA誘導(dǎo)大鼠NRK-52E細(xì)胞表達(dá)III型膠原情況
2.4 AA促進(jìn)促纖維化因子TGF-β1 mRNA和蛋白的表達(dá) ELISA法檢測(cè)結(jié)果顯示,5μg/mL和10μg/mL AA作用24 h后,TGF-β1的表達(dá)量較對(duì)照組明顯升高(P<0.05);real-time RT-PCR結(jié)果也顯示,10 μg/mL AA干預(yù)組中TGF-β1 mRNA的表達(dá)量較對(duì)照組明顯升高(P<0.05)。見(jiàn)表1。
表1 各組間TGF-β1蛋白和mRNA以及Rac1蛋白表達(dá)量比較( ±s)
2.5 AA影響腎小管上皮細(xì)胞分泌Rac1蛋白 ELISA法檢測(cè)結(jié)果顯示,不同濃度AA作用NRK-52E細(xì)胞后,Rac1蛋白的表達(dá)均升高;細(xì)胞免疫熒光染色結(jié)果也顯示AA促進(jìn)了小管上皮細(xì)胞分泌Rac1蛋白,見(jiàn)表1和圖4。
圖4 Rac1在AA損傷腎小管上皮細(xì)胞過(guò)程中的表達(dá)改變
2.6 Rac1蛋白與TGF-β1的相關(guān)性分析 采用Pearson法分析上清液中Rac1和TGF-β1蛋白含量的相關(guān)性,結(jié)果發(fā)現(xiàn),Rac1和TGF-β1含量存在明顯正相關(guān)關(guān)系(r=0.967,P=0.007)。
AA是硝基菲類(lèi)有機(jī)酸化合物,在中藥馬兜鈴、廣防己、關(guān)木通和中成藥龍膽瀉肝丸、當(dāng)歸四逆丸、大黃清胃丸等中均有檢出。使用AA類(lèi)藥物能引起廣泛的腎間質(zhì)纖維化,進(jìn)而引起急慢性腎功能衰竭,即馬兜鈴酸腎病。然而,目前對(duì)AA誘發(fā)腎間質(zhì)纖維化機(jī)制的認(rèn)識(shí)尚不清楚,大致涉及以下幾方面[5]:胞質(zhì)毒學(xué)說(shuō)、腎缺血學(xué)說(shuō)、細(xì)胞凋亡學(xué)說(shuō)、腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化學(xué)說(shuō)。我們的研究顯示,AA作用于腎小管上皮細(xì)胞,可抑制細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡??赡艿臋C(jī)制之一為AA導(dǎo)致DNA損傷和細(xì)胞周期阻滯于G2/M期,從而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[6]。除了誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞凋亡外,我們還發(fā)現(xiàn)AA可促進(jìn)III型膠原的表達(dá),引起纖維化樣改變。對(duì)于這種現(xiàn)象,Yang等[6]認(rèn)為AA刺激JNK信號(hào)通路的活化,進(jìn)而誘發(fā)TGF-β1的表達(dá)是主要因素。而我們的研究顯示,AA損傷腎小管上皮細(xì)胞不僅表現(xiàn)為T(mén)GF-β1表達(dá)的上調(diào),同時(shí)還伴有Rac1蛋白的高表達(dá),提示Rac1蛋白很可能也是AA引起纖維化樣改變的一個(gè)重要分子機(jī)制。
Rho蛋白為小分子鳥(niǎo)苷酸結(jié)合蛋白(又稱(chēng)小G蛋白),是Ras蛋白超家族成員。Rac蛋白是Rho家族小G蛋白的成員之一,有Rac1、Rac2、Rac3三種同工形式。Rac1和Rac3在體內(nèi)廣泛分布,而Rac2是一種造血細(xì)胞特異的小G蛋白[7]。TGF-β1是一種多功能細(xì)胞因子,可通過(guò)其蛋白激酶受體介導(dǎo)包括形態(tài)發(fā)生、胚胎發(fā)育、干細(xì)胞分化、炎癥調(diào)節(jié)及傷口愈合在內(nèi)的一系列生物過(guò)程,同時(shí)還能促進(jìn)膠原累積,參與纖維化進(jìn)程[2,8]。TGF-β1參與纖維化形成主要是與其受體結(jié)合,激活下游Smad復(fù)合體,調(diào)節(jié)相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄,即通過(guò)經(jīng)典的Smad信號(hào)通路發(fā)揮作用[9]。除此之外,TGF-β1還可通過(guò)ERK-MAPK信號(hào)通路、GTPase Rho等發(fā)揮促纖維化功能[4,10]。Rac1作為GTPase Rho家族成員之一,也可能參與TGF-β1促腎纖維化的進(jìn)程。已有研究表明,TGF-β1的高表達(dá)能活化Rac1介導(dǎo)的ERK通路,從而導(dǎo)致腎纖維化[10]。
但是,不同的Rho亞型在膠原累積過(guò)程中的作用可能不一樣[11]。那么本研究中,Rac1蛋白在腎纖維化進(jìn)程中到底發(fā)揮著怎樣的作用?我們同時(shí)檢測(cè)了Rac1蛋白和促纖維化因子TGF-β1的表達(dá),并分析兩者相關(guān)性。發(fā)現(xiàn)AA作用腎小管上皮細(xì)胞后,促纖維化因子TGF-β1和III型膠原表達(dá)明顯增加,Rac1蛋白表達(dá)也增加,且與TGF-β1存在明顯正相關(guān)關(guān)系,提示Rac1在AA所致腎間質(zhì)纖維化中發(fā)揮正調(diào)控作用。可能的機(jī)制是AA損傷腎小管上皮細(xì)胞的情況下,Rac1及其介導(dǎo)的下游通路如ERK等,被TGF-β1表達(dá)和釋放的增加所活化,進(jìn)一步促進(jìn)小管上皮細(xì)胞分泌表達(dá)膠原蛋白,出現(xiàn)纖維化反應(yīng)。
綜上所述,AA誘導(dǎo)膠原累積過(guò)程中,伴有Rac1蛋白的高表達(dá),說(shuō)明Rac1蛋白可能參與了纖維化過(guò)程。然而,Rac1蛋白及其相關(guān)信號(hào)通路在AA所致纖維化病變中的具體功能和定位,還需進(jìn)一步的研究加以闡釋。干預(yù)Rac1蛋白的表達(dá)可能成為AA致腎間質(zhì)纖維化治療的新途徑。
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