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    幽門螺桿菌cagL基因缺失株的建立①

    2012-01-23 12:04:02戴東方管賢偉邵世和江蘇大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院鎮(zhèn)江212013
    中國免疫學(xué)雜志 2012年9期
    關(guān)鍵詞:分泌系統(tǒng)同源質(zhì)粒

    王 華 劉 俊 戴東方 管賢偉 丁 杰 邵世和 (江蘇大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院,鎮(zhèn)江212013)

    幽門螺桿菌(Helicobacter pylori,H.pylori)是人類常見的致病菌之一,是慢性活動性胃炎、消化性潰瘍等胃部疾患的主要病因,并且與胃癌的發(fā)生密切相關(guān),被WHO列為Ⅰ類致癌原。近年來的統(tǒng)計數(shù)字表明胃癌是全球的第四大腫瘤,而且在由癌癥導(dǎo)致的死亡中位居第二[1]。

    已證實,高致病性的H.pylori菌株都含有一長度為40 kb的致病島(Cag-PAI),編碼CagA(細(xì)胞毒素相關(guān)基因A蛋白)在內(nèi)的27~31個與毒素及毒素裝配和分泌功能相關(guān)的蛋白。CagA是H.pylori最主要的致病因子[2],此蛋白是通過致病島編碼的由多個蛋白組成的Ⅳ型分泌系統(tǒng)轉(zhuǎn)運(yùn)進(jìn)入宿主細(xì)胞的[3],之后在細(xì)胞內(nèi)的特定部位被磷酸化,干擾細(xì)胞內(nèi)信號傳導(dǎo)[4,5],誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)的發(fā)生及胃癌的產(chǎn)生[6]。然而,關(guān)于負(fù)責(zé)CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)的分泌系統(tǒng)的研究較少,其轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制也尚未明確。

    本研究選擇H.pyloriⅣ型分泌系統(tǒng)中的cagL基因為研究對象,采用同源重組的方法,構(gòu)建cagL基因缺失的自殺質(zhì)粒,電擊轉(zhuǎn)化H.pylori,通過抗性基因成功地篩選出了目的基因的缺失株,并分析基因缺失前后,CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)功能的變化,為揭示Ⅳ型分泌系統(tǒng)中cagL基因在CagA轉(zhuǎn)運(yùn)中的作用,以及更深入地認(rèn)識H.pylori的致病機(jī)制與完善Ⅳ型分泌系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)都極有必要。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1菌株、質(zhì)粒和細(xì)胞 H.pylori NCTC11637由中國疾病控制中心張建中教授饋贈,大腸埃希菌

    ①本文受鎮(zhèn)江市2008年度第四批科技計劃(社會發(fā)展)項目資助(SH2008031)

    ②江蘇大學(xué)附屬江濱醫(yī)院,鎮(zhèn)江212000

    1.1.2主要試劑及儀器 哥倫比亞培養(yǎng)基、微需氧產(chǎn)氣袋購自O(shè)XOID公司Ex TaqDNA聚合酶、dNTP、限制性核酸內(nèi)切酶 EcoRI、KpnI、BamHI及 XhoI、T4-DNA連接酶、DL2000 DNA marker及蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)(低)購自TaKaRa公司;高糖DMEM培養(yǎng)基及胰蛋白酶購自GibcoBRL公司;小牛血清購自上海華美生物公司;CagA蛋白單克隆抗體、細(xì)胞裂解液RIPA購自 Santa Cruz公司;β-actin內(nèi)參抗體,ECL購自碧云天公司;其他常規(guī)試劑按照分子克隆實驗指南配制。

    1.2自殺質(zhì)粒同源臂的擴(kuò)增 根據(jù)GenBank公布的H.pylori全基因組序列,在cagL基因ORF的上游和下游設(shè)計兩個同源臂F1和F2的引物(如表1)。cagL基因全長739 bp;P1/P2/P3/P4分別為兩同源臂上下游特異性引物,擴(kuò)增后獲得用于構(gòu)建自殺質(zhì)粒的同源臂F1和F2片段。引物由上海英俊生物公司合成。以H.pylori NCTC11637菌株基因組DNA為模板,用ExTap聚合酶進(jìn)行PCR擴(kuò)增:條件為:94℃ 5分鐘,94℃ 45秒、55℃ 45秒、72℃ 50秒,30個循環(huán),72℃ 10分鐘;PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳,EB染色,GeNius凝膠電泳圖像分析系統(tǒng)分析鑒定并用膠回收試劑盒回收PCR產(chǎn)物。

    1.3自殺質(zhì)粒pBluescript/△cagL:KMr的構(gòu)建 取cagL F1及F2的PCR膠回收產(chǎn)物分別與pMD18-2T用T4-DNA連接酶4℃連接過夜。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E.coli DH5a感受態(tài)細(xì)胞。轉(zhuǎn)化后的細(xì)菌涂布于含50 μg/ml氨芐青霉素的LB平板上,37℃培養(yǎng)12小時。挑取菌落轉(zhuǎn)種于終濃度為50 μg/ml氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基,37℃振搖10小時,用堿裂解法進(jìn)行質(zhì)粒提取,并進(jìn)行酶切鑒定。膠回收同源臂片段F1、F2,分兩步將F1、F2與載體pBlueKM40連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)菌E.coli DH5a,轉(zhuǎn)化好的細(xì)菌涂布終濃度為100 μg/ml卡那霉素的LB瓊脂培養(yǎng)基上培養(yǎng)12~16小時,挑選單菌落接種于含卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,置37℃搖床振蕩培養(yǎng)10小時,抽提質(zhì)粒,酶切鑒定。

    表1 構(gòu)建cagL基因缺失引物列表Tab.1 Primers designed for the deletion of cagL

    1.4cagL基因缺失株的構(gòu)建與鑒定 從培養(yǎng)18~24小時的哥倫比亞培養(yǎng)基上刮 H.pylori(1010CFUP/ml),10%甘油-蔗糖溶液洗滌,4℃ 5 000 r/min離心5分鐘,沉淀重懸于100 μl甘油-蔗糖溶液,4℃放置10分鐘,加自殺質(zhì)粒25 μg,混勻,移入冰預(yù)冷的電擊杯,冰浴5分鐘后置于電穿孔架上,電擊條件:25F,2.5 kV,200 Ω 5 秒,電擊后用 SOC 緩沖液20倍稀釋H.pylori,涂布于25 mg/L卡那霉素的血平板上,37℃微需氧條件,培養(yǎng)72小時,收取細(xì)菌。

    收獲細(xì)菌經(jīng)尿素酶以及細(xì)菌染色鑒定后,以野生株NCTC 11637為對照,用擴(kuò)增上游片段F1的上游引物P1和下游片段F2的下游引物P4進(jìn)行菌液PCR鑒定,擴(kuò)增條件為:94℃ 10分鐘,94℃ 50秒、55℃ 50秒、72℃ 2.5分鐘,35個循環(huán),72℃ 10分鐘。擴(kuò)增產(chǎn)物送上海英駿生物工程公司測序鑒定無誤后,將突變株命名為ΔhpcagL。

    1.5CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)實驗 胃上皮細(xì)胞GES-1常規(guī)培養(yǎng)2~3天后,按照MOI=300∶1比例加入新鮮培養(yǎng)的野生型和缺失株ΔhpcagL;在5%CO2培養(yǎng)條件下作用4小時;PBS洗滌3次后,收集細(xì)胞重懸于Western blot細(xì)胞裂解液中。

    取裂解后的蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳后,然后4℃電轉(zhuǎn)至PVDF膜上,用含5%脫脂奶粉的封閉液室溫封閉1小時,換新鮮的封閉液,加入一抗(CagA單克隆抗體),4℃孵育過夜。1×TBST洗滌3次,每次10分鐘,于1×TBST中加入辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的抗鼠IgG作為二抗,37℃ 搖床反應(yīng)1小時,最后ECL顯色。同時以β-actin蛋白為內(nèi)參。

    2 結(jié)果

    2.1cagL基因缺失自殺質(zhì)粒的構(gòu)建 將構(gòu)建cagL基因缺失株的自殺質(zhì)粒pBluescript/△cagL::KMr連接好后,進(jìn)行酶切鑒定,結(jié)果顯示:經(jīng)KpnⅠ、XhoⅠ酶切,電泳圖下方出現(xiàn)約為651 bp片段(F1);經(jīng)EcoRⅠ、BamHⅠ 酶切,電泳圖下方出現(xiàn)約666 bp片段(F2);與設(shè)計結(jié)果完全相符(圖1)。

    圖1 自殺質(zhì)粒pBluescript/△cagL::KMr的酶切鑒定Fig.1 Identification of pBluescript/△cagL::KMrby restricted endonuclease enzyme

    2.2cagL基因缺失株的鑒定 用引物P1和P4對篩選獲得的缺失株進(jìn)行PCR鑒定。結(jié)果顯示,野生型經(jīng)PCR擴(kuò)增后獲得了一大小約為2 kb的片段,而cagL基因缺失株,則獲得了一約2.5 kb大小片段,與理論設(shè)計相符(圖2)。測序結(jié)果進(jìn)一步證實cagL基因同源重組的成功。

    2.3cagL基因缺失前后對CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)能力的影響 將野生型和cagL基因缺失株,分別與GES-1細(xì)胞共培養(yǎng);細(xì)胞裂解后進(jìn)行Western blot分析;結(jié)果表明(圖3),H.pylori野生型和 cagL基因缺失株,均未能檢測到CagA蛋白,cagL基因缺失能導(dǎo)致CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)功能喪失。

    3 討論

    H.pylori在世界上分布廣泛,是慢性活動性胃炎的病原體,其感染是消化性潰瘍、胃癌和胃粘膜相關(guān)淋巴組織淋巴瘤的重要危險因素[7,8]。來自世界各地的流行病學(xué)研究證實,幽門螺桿菌感染與胃癌有關(guān),CagA蛋白被認(rèn)為是一種潛在的癌蛋白,在致癌過程中可能發(fā)揮重要作用[9]。該蛋白可借助IV分泌系統(tǒng)直接進(jìn)入胃上皮細(xì)胞,然而,關(guān)于負(fù)責(zé)CagA 蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)的分泌系統(tǒng)及其轉(zhuǎn)運(yùn)裝置相關(guān)基因的報道較少。

    圖2 cagL基因缺失株的鑒定Fig.2 Identification of cagL deletion mutant

    圖3 Western blot法檢測CagA轉(zhuǎn)運(yùn)能力Fig.3 The ability of translocation of CagA via Western blot method

    目前,對 CagF/HP0543、CagD/HP0545等基因的功能作了一些初步的研究?;蛉笔а芯勘砻鰿agZ對于CagA轉(zhuǎn)運(yùn)是必須的,但對于IL-8的誘導(dǎo)并不產(chǎn)生顯著的影響,而CagN、CagG、CagF、CagD對CagA的轉(zhuǎn)運(yùn)與IL-8的誘導(dǎo)都是必須的,可能這幾種蛋白可穩(wěn)定Ⅳ型分泌系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)的功能[10];尚有報道指出 CagI(HP0540)、CagA的 N端及 CagY(HP0527)的 C端,均與整合素 β1具有相互作用[11];CagF可以識別CagA蛋白的C端區(qū)域,輔助其轉(zhuǎn)運(yùn),可能參與CagA蛋白的募集作用[12];CagD蛋白的折疊方式與SycT這種分子伴侶似,SycT是小腸結(jié)腸炎耶爾森菌Ⅲ型分泌系統(tǒng)蛋白[13],因此,CagD可能是一個多功能的Ⅳ型分泌系統(tǒng)蛋白,不僅與CagA轉(zhuǎn)運(yùn)有關(guān),而且也能分泌到細(xì)菌外,促進(jìn)對宿主細(xì)胞的一種附加作用[14]。

    本研究利用同源重組原理,構(gòu)建了cagL基因的缺失株,并比較該基因缺失前后對效應(yīng)蛋白CagA轉(zhuǎn)運(yùn)功能的影響。研究選用克隆質(zhì)粒pBluescript SKⅡ(-)來構(gòu)建載體,該載體在多克隆位點處插入一個卡那霉素抗性基因盒,采用PCR方法擴(kuò)增cagL基因編碼區(qū)(ORF)兩側(cè)區(qū)域的基因片段(F1)(651 bp)和(F2)(666 bp),以二者作為同源重組的同源臂片段。然后采用電穿孔技術(shù)將重組載體轉(zhuǎn)化進(jìn)入野生株NCTC11637菌體內(nèi),載體與野生株染色體之間發(fā)生同源重組,使卡那抗性基因置換野生株的cagL基因,因此,cagL基因敲除的突變株pBluescript/△cagL::KMr得以建立,并用PCR方法鑒定其缺失株,為進(jìn)一步研究cagL基因的功能奠定基礎(chǔ)。最后本文將H.pylori野生型及缺失株,與正常胃上皮細(xì)胞GES-1進(jìn)行共培養(yǎng)后檢測了CagA蛋白的轉(zhuǎn)運(yùn)能力,Western blot的結(jié)果顯示cagL基因敲除后,CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)功能喪失,說明cagL對CagA蛋白的轉(zhuǎn)運(yùn)是必不可少的,是CagA蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)中重要組成成分之一,為深入研究cagL基因的功能奠定基礎(chǔ)。

    1 International agency for research on cancer.The Globocan Project[online],http://globocan.iarc.fr/(2010).

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