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    降濁化瘀合劑對2型糖尿病合并非酒精性脂肪肝大鼠糖脂代謝和胰島素敏感性的影響*

    2011-03-01 11:01:58彭繼升楊晉翔高彥彬
    關鍵詞:胰島素血糖血清

    彭繼升,楊晉翔,高彥彬

    胰島素抵抗(IR)在2型糖尿病(T2DM)和非酒精性脂肪肝(NAFLD)的發(fā)病機制中占據(jù)著重要地位,可以說是IR將二者聯(lián)系起來。血糖和血脂的代謝紊亂是糖尿病的重要特征,而NAFLD正是由于脂質(zhì)代謝紊亂而引起的肝臟脂肪變性,血糖的異常也必然影響到脂代謝的紊亂。本實驗觀察了降濁化瘀合劑對T2DM合并NAFLD大鼠糖脂代謝和胰島素敏感指數(shù)(HOMA-IR)的影響。

    1 材料與試劑

    1.1 動物及飼料

    清潔級雄性 SD大鼠40只,體重150g~190g,由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供;動物飼料由北京科澳協(xié)力飼料有限公司提供,改進高脂飼料構(gòu)成比為2%膽固醇,0.5%膽酸鈉,0.2%丙硫氧嘧啶,5%蔗糖,10%豬油,82.3%基礎飼料;普通高脂飼料構(gòu)成比為2%膽固醇,10%豬油,88%基礎飼料。

    1.2 主要試劑

    鏈脲佐菌素(STZ)由美國 Sigma公司提供,臨用時以0.1mol/L檸檬酸鈉-檸檬酸緩沖液 pH 4.4配成1%STZ溶液;馬來酸羅格列酮(文迪雅)由葛蘭素史克(天津)有限公司生產(chǎn),規(guī)格 4mg/片;降濁化瘀合劑(由柴胡、枳實、茵陳、澤瀉、熟軍、全栝樓、丹參等按一定比例組成),由北京中醫(yī)藥大學東方醫(yī)院制劑中心提供,用煎煮法浸提濃縮至稠膏狀,以蒸餾水稀釋成2g生藥/ml的濃度;游離脂肪酸(FFA)酶聯(lián)免疫試劑盒由美國GBD公司提供;胰島素放免檢測試劑盒由解放軍總醫(yī)院科技開發(fā)中心放免研究所提供。

    2 方法

    2.1 造模方法及分組處理

    將40只雄性SD大鼠適應性飼養(yǎng)基礎飼料7d后,按體重隨機分為2組,正常組8只,高脂組32只。正常組喂養(yǎng)基礎飼料,高脂組喂養(yǎng)改進高脂飼料,高脂組大鼠喂養(yǎng)4周后隨機處死2只,取肝臟組織進行HE染色,觀察肝臟組織形態(tài)學改變(見圖1、圖2)。3d后各組大鼠禁食12h,高脂組給予一次性腹腔注射 STZ 30mg/kg,正常組給予同等體積的枸櫞酸緩沖液腹腔注射。注射48h后,各組大鼠禁食12h后斷尾取血,測空腹血糖(FPG)、空腹胰島素水平(FINS)。以空腹血糖高于7.8mmol/L作為T2DM診斷的血糖標準,并計算胰島素敏感指數(shù)(HOMA-IR),以判定胰島素抵抗狀態(tài)誘導成功。高脂組大鼠肝臟形態(tài)學符合NAFLD病理改變(見圖1、圖2),血糖全部符合 T2DM診斷標準,且 FINS、HONA-IR均明顯高于正常組(見表1),全部符合造模要求,至此T2DM合并NAFLD大鼠造模過程結(jié)束。

    將造模成功大鼠按1∶1∶1比例隨機分為模型組、中藥組和西藥組。中藥組給予降濁化瘀合劑10ml/kg/d(生藥20g/kg/d)灌胃,西藥組給予文迪雅2mg/kg/d灌胃,模型組和正常組灌服蒸餾水10ml/kg/d。正常組仍給予基礎飼料喂養(yǎng),模型組、中藥組、西藥組給予高脂飼料喂養(yǎng),連續(xù)給藥觀察8周。末次給藥后空腹過夜,以0.4%水合氯醛腹腔注射進行麻醉,經(jīng)腹主動脈取血,收集血清用于指標的測定,取肝備用,HE染色,進行病理學觀察。

    2.2 檢測方法

    空腹血糖(FPG)、血清三酰甘油(TG)、總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白(LDL-C)和高密度脂蛋白(HDL-C)經(jīng)全自動生化儀(日立7600)檢測;空腹胰島素(FINS)用放免法,F(xiàn)FA采用酶聯(lián)免疫法,均嚴格按試劑盒說明書進行。胰島素抵抗指數(shù)計算(HOMA-IR)=FINS×FBG/22.5。

    2.3 統(tǒng)計學方法

    應用SAS 8.0統(tǒng)計軟件包進行,計量資料以珋x±s表示;2組間比較用 t檢驗,多組間比較采用方差分析,兩兩比較用q檢驗。治療前后比較采用配對t檢驗,組間比較采用one-way ANOVA檢驗;計數(shù)資料用χ2檢驗,等級資料用Wilcoxon秩和檢驗。

    3 結(jié)果

    3.1 T2DM合并NAFLD大鼠模型的建立

    3.1.1 肝臟組織HE染色 喂養(yǎng)4周后,正常組肝小葉結(jié)構(gòu)清晰完整,肝細胞索以中央靜脈為中心呈放射狀排列,肝細胞形態(tài)正常;肝竇正常,連接成網(wǎng)狀(見圖1)。高脂組肝細胞內(nèi)出現(xiàn)大量大小不一的脂肪空泡,符合NAFLD病理改變(見圖2)。

    圖1 正常組肝組織(HE染色×200)

    圖2 高脂組肝組織(HE染色×200)

    3.1.2 胰島素抵抗情況 表1顯示,大鼠高脂飼料喂養(yǎng)加小劑量STZ注射后,第5周所測血糖結(jié)果全部符合 T2DM診斷標準;其 FBG、FINS明顯高于正常組(P<0.01),HOMA-IR也明顯高于正常組大鼠(P<0.01)。

    表1 FBG、FINS和HOMA-IR的比較(珋x±s)

    3.2 藥物干預后

    3.2.1 對FPG、FINS和HOMA-IR的影響 表2顯示,與正常組大鼠相比較,模型組大鼠 FPG、FINS明顯升高,HOMA-IR也升高(P<0.01)。與模型組大鼠比較,西藥組FBG與HOMA-IR降低(P<0.05),實驗結(jié)果與馬來酸羅格列酮改善IR、降糖的作用相一致;中藥組FPG雖無明顯變化,但HOMAIR低于模型組大鼠(P<0.05),提示中藥降濁化瘀合劑具有改善IR的作用。

    表2 FPG、FINS和HOMA-IR的比較(珋x±s)

    3.2.2 對血脂的影響 表3顯示,與正常組大鼠相比較,模型組大鼠血清 TG、TC、LDL-C、FFA水平均明顯升高(P<0.01)。與模型組大鼠相比較,中藥組、西藥組大鼠的血清TG、TC水平均顯著降低(P<0.01);2組血清LDL-C與模型組比較無差異(P>0.05);中藥組血清FFA顯著低于模型組(P<0.05),西藥組血清FFA與模型組比較無明顯變化(P>0.05)。中藥組血清 TG、FFA水平顯著低于西藥組(P<0.01)。

    表3 結(jié)果血脂水平的比較(珋x±s)

    4 討論

    4.1 T2DM合并NAFLD大鼠模型的建立

    NAFLD是T2DM的常見并發(fā)癥,常與肥胖、高脂血癥等心腦血管病危險因素一起出現(xiàn),且發(fā)病率越來越高。為對T2DM合并NAFLD的發(fā)病機制和治療等進行深入研究,建立一個理想的動物模型尤為重要。

    目前T2DM的動物模型多采用遺傳因素占主導作用或STZ誘導的方法,有學者提出長期高脂飲食加小劑量STZ建立更為符合人類T2DM特點的動物模型;NAFLD最常用的動物模型是通過高脂和/或高膽固醇飼料喂養(yǎng)制備??梢钥闯?,高脂飲食是T2DM、NAFLD動物成模的重要因素。鑒于以上認識并參考文獻[1-2],我們采用改良高脂飼料(在普通高脂飼料中加入少量蔗糖、膽酸鹽和丙基硫氧嘧啶),結(jié)合小劑量STZ處理,建立T2DM合并NAFLD的大鼠模型。

    本法在飼料中加入蔗糖,可增加長鏈脂肪酸的合成而使TG的合成增加,且當血糖升高時,促使由乙酰酶A轉(zhuǎn)變成的膽固醇也增加[3]。飼料中加入少量膽酸鹽和抗甲狀腺藥物丙基硫氧嘧啶,可干擾脂代謝,誘發(fā)高脂血癥,促進脂肪肝的形成。然后以STZ劑量30mg/kg一次性腹腔注射,在一定時間內(nèi)破壞適量的胰島β細胞,引起糖代謝紊亂。本建模方法以肝臟形態(tài)學改變、血糖、胰島素敏感指數(shù)作為大鼠建模成功的觀測指標,成功建立模型時間僅用5周。

    從實驗結(jié)果看,本造模方法成模率高、死亡率低、造模周期短,且模型符合人類 T2DM合并NAFLD的發(fā)病特點,是研究T2DM并NAFLD比較理想的動物模型。

    4.2 降濁化瘀合劑對T2DM合并NAFLD大鼠的影響

    T2DM患者常易并發(fā)NAFLD。流行病學資料顯示,21%~78%的2型糖尿病患者中存在脂肪肝。目前對于二者的發(fā)病機制尚未完全明確,但一致認為IR是二者共同的發(fā)病基礎,且糖脂代謝紊亂在發(fā)病中發(fā)揮著重要作用。在T2DM患者中,高血糖合并脂質(zhì)代謝紊亂頗為常見,其典型的脂譜表現(xiàn)為血清TC、TG、FFA及 LDL-C增高,其機制主要為 IR和高血糖對脂代謝的影響,促進TC的沉積和高TC血癥的形成[4]。肝臟是脂類物質(zhì)消化、吸收、代謝等過程中的重要器官,當肝臟中脂質(zhì)的生成超過肝臟的轉(zhuǎn)運能力時,便造成肝臟中脂質(zhì)的累積和脂肪肝的形成。

    隨著研究的深入,發(fā)現(xiàn)脂質(zhì)代謝紊亂對細胞存在著毒性作用,即所謂“脂毒性”,其與T2DM及并發(fā)癥的發(fā)生和發(fā)展密切相關[5]。本次實驗采用高脂飼料誘導IR和NAFLD的產(chǎn)生,即可看作是“脂毒性”的作用。注射STZ使T2DM模型建立后,IR及INS分泌不足的狀況又進一步加重了脂代謝紊亂的程度。而血液中過高濃度的FFA所產(chǎn)生的“脂毒性”,又可使β細胞功能進一步下降,IR進一步加劇,加重了T2DM,如此形成惡性循環(huán)。因此,T2DM合并NAFLD的治療打破這種惡性循環(huán)尤為重要。

    降濁化瘀合劑是導師楊晉翔和高彥彬教授治療T2DM合并NAFLD的有效方劑。我們認為,T2DM合并NAFLD的發(fā)生,多由先天不足、飲食不節(jié)、嗜食肥甘厚味,加之嗜臥少動,日久導致脾失運化、精微不化、釀濕生痰、郁于肝中而成,日久可由實致虛、臟腑失調(diào)、變證百出,故倡導早期治療。病變早期以肝脾為中心,肝氣郁滯、痰瘀阻絡為主要證候,治療以疏肝理氣、化痰通絡為法。降濁化瘀合劑中柴胡、枳實疏肝理氣,茵陳、澤瀉、熟大黃、全栝樓化痰降濁,丹參活血通絡,共奏疏肝理氣、化痰通絡之效,臨床應用取得良好療效。

    從本實驗中可以看出,模型組大鼠血清 TC、TG、LDL-C和 FFA明顯高于正常組,且 FBG、FINS升高,HOMA-IR顯著升高,證實 T2DN合并非酒精性脂肪肝大鼠血脂代謝紊亂和 IR的存在;模型組HDL-C較正常組升高,可能是高 TC血癥所引起。與模型組比較,中藥治療組TG、TC、FFA明顯改善,且TG、FFA改善程度優(yōu)于西藥組。中藥組FBG較模型組雖無變化,但HOMA-IR降低,證實降濁化瘀合劑有改善IR的作用。

    綜上所述,我們成功建立了T2DM并NAFLD的大鼠模型,降濁化瘀合劑治療T2DM合并NAFLD有改善IR和脂代謝的作用,有利于改變IR與脂代謝紊亂相互影響的惡性循環(huán)。

    [1] 王 倩,管小琴.大鼠非酒精性脂肪肝造模方法的改進[J].世界華人消化雜志,2007,15(11):1219-1224.

    [2] 胡愛民,肖鳳英,鄭 云.2型糖尿病并脂肪肝實驗性大鼠模型的建立及評價[J].中國中西醫(yī)結(jié)合消化雜志,2006,14(3):156-159.

    [3] Li z,Soloski MJ,Diehl AM.Dietary factors alter hePatic innate immune system in mice with nonaicoholic fatty liver disease[J].Hepatology 2005,42:880-885.

    [4] Samuel VT,Liu ZX,Qu X,et al.Mechanism of hepatic insulin resistance in non-alcoholic fatty liver disease[J].J Biol Chem,2004,279:32345-32353.

    [5] Ginsberg HN,Zhang YL,Hemandez-Ono A.Regulation of plasma triglycerides in insulin resistance and diabetes[J].Arch Med Res,2005,36:232-240.

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