中圖分類號:S482.2 文獻標(biāo)志碼:A 文章編號:1002-2910(2025)02-0043-05
Research progress on RNA fungicides
CHEN Min1, ZHANG Wei1,LI Lili2, LIU Weiyun3, LI Ning4,LIU Baoyou1*
(1.Yantai Academy of Agricultural Sciences, Yantai,Shandong 2655oo, China; 2.Shandong Academy of Agricultural Sciences,JinanShandong 250131, China; 3.Shandong InstituteofPomology,Tai'an,Shandong 271000, China; 4.Qingdao Kangqiao Biotechnology Co. Ltd, Qingdao,Shandong , China)
Abstract: RNA fungicides use RNA interference technology to inhibit or kill crop pathogenic bacteria by suppressing the expression of important functional genes. These fungicides have strong targeting and environmentally friendly characteristics, which are beneficial for green and precise prevention and control of crop diseases. The mechanism of RNA interference, dsRNA synthesis technology, research and development of RNA fungicides and their application in disease prevention and control were summarized. And the existing problems of RNA fungicides were analyzed, prospect for their future development trends was presented.
Key words: RNA fungicides; RNA interference; crop diseases; research progress
作物病害的發(fā)生給農(nóng)業(yè)生產(chǎn)造成嚴重的經(jīng)濟損失,目前對農(nóng)作物病害的防控主要是采取化學(xué)農(nóng)藥防控,但化學(xué)農(nóng)藥過量使用導(dǎo)致病害抗藥性增強、農(nóng)藥殘留超標(biāo)、生物多樣性降低和環(huán)境污染等負面問題[1],導(dǎo)致防治成本提高,還嚴重影響農(nóng)產(chǎn)品品質(zhì)和人體健康。據(jù)統(tǒng)計,“十三五”期間全國種植業(yè)農(nóng)藥使用量年均27.03萬t,比“十二五”期間降低了 ,農(nóng)藥品種的持續(xù)優(yōu)化和新型高效環(huán)保農(nóng)藥的研發(fā)使用,為持續(xù)降低農(nóng)藥使用量發(fā)揮了重要作用。生物農(nóng)藥是推進作物病蟲害綠色防控的重要農(nóng)業(yè)投入品,目前常用的生物農(nóng)藥主要有植物源農(nóng)藥(如苦參堿、蛇床子素、印楝素等)、動物源農(nóng)藥(如黃蜂毒素、沙蠶毒素等)、微生物源農(nóng)藥(如蘇云金桿菌、枯草芽孢桿菌等)。隨著分子生物學(xué)研究的不斷深人和RNA十?dāng)_前沿技術(shù)的發(fā)展,RNA生物農(nóng)藥有望成為作物病害防控領(lǐng)域的重要工具。RNA生物農(nóng)藥是“第三次農(nóng)藥革命”的重要產(chǎn)品,其具有較高的特異性和環(huán)境安全性,在防治農(nóng)作物病害中有巨大潛力[。筆者對RNA殺菌劑的研究進展進行綜述,旨在加深農(nóng)藥研究者、生產(chǎn)者和使用者對RNA殺菌劑的認識,為RNA殺菌劑新產(chǎn)品的研發(fā)和農(nóng)作物病害的綠色防控提供參考。
1 RNA干擾的作用機制
RNA干擾(RNAinterference,RNAi)是指在生物進化過程中高度保守的,由雙鏈RNA(Double-strandedRNA,dsRNA)誘發(fā)的,導(dǎo)致信使RNA(MessengerRNA,mRNA)功能喪失的現(xiàn)象,根據(jù)抑制的類型不同,分為轉(zhuǎn)錄水平上的基因沉默(Transcriptional gene silencing,TGS)和轉(zhuǎn)錄后的基因沉默(Post-trans-criptional gene silencing,PTGS),兩種類型分別通過抑制轉(zhuǎn)錄前水平或轉(zhuǎn)錄后水平的基因表達,而誘導(dǎo)表型的缺失或者導(dǎo)致生物體死亡[4]。RNA殺菌劑是一種可以特異性結(jié)合靶標(biāo)病菌中的同源mRNA,沉默相應(yīng)基因的表達,從而干擾靶標(biāo)生物的正常生長,導(dǎo)致病原菌死亡[5],實現(xiàn)對作物病害的綠色防控。
2 dsRNA合成技術(shù)
目前用于dsRNA合成的方法主要有3種,分別為化學(xué)合成法、RNA聚合酶體外合成法和微生物發(fā)酵擴繁dsRNA法[?;瘜W(xué)合成法是通過組裝核糖核苷酸合成兩條互補的單鏈RNA,并使這些互補的單鏈RNA退火形成dsRNA,然而這種方法存在合成周期長,dsRNA長度受限,合成成本高等問題[7],主要適用于實驗室小規(guī)模的基因功能研究;RNA聚合酶體外合成法利用RNA聚合酶和cDNA反轉(zhuǎn)錄技術(shù),在體外合成并純化獲得dsRNA,所得dsRNA具有穩(wěn)定性強,純度高等優(yōu)點[8],但也存在合成過程復(fù)雜和成本高的問題,不適合大規(guī)模、低成本的工業(yè)化生產(chǎn);微生物發(fā)酵擴繁dsRNA法是構(gòu)建微生物工廠,利用微生物體內(nèi)轉(zhuǎn)錄機制合成dsRNA,并借助微生物的快速發(fā)酵能力實現(xiàn)dsRNA的大規(guī)模生產(chǎn)。這種方法具有操作簡便、成本低、穩(wěn)定性好等優(yōu)勢,是目前dsRNA大規(guī)模生產(chǎn)最有效的方法之一[9]。因此,為實現(xiàn)dsRNA在生產(chǎn)實踐和農(nóng)業(yè)領(lǐng)域應(yīng)用,利用微生物發(fā)酵獲得dsRNA已成為研究熱點。Timmons等發(fā)現(xiàn)一種RNAⅢ型酶缺陷型的大腸桿菌變異株HT115,由于該菌株缺乏RNAⅢ型酶,dsRNA在其中能夠穩(wěn)定存在而不易被降解,通過構(gòu)建帶有目的基因片段的dsRNA載體,利用IPTG(異丙基硫代半乳糖苷)誘導(dǎo)大腸桿菌表達dsRNA,實現(xiàn)dsRNA的低成本簡便化大規(guī)模生產(chǎn)[10]。在此基礎(chǔ)上,馬中正等進一步開發(fā)了一種基于BL21工程菌的高效合成dsRNA的方法,他們通過基因編輯敲除RNAⅢ編碼基因,從而實現(xiàn)dsRNA穩(wěn)定表達,且表達效率顯著高于HT115菌株[11]。Park 等對蘇云金芽孢桿菌進行改造,使其合成具有抑制囊狀幼蟲病毒(Sacbroodvirus,SBV)活性的dsRNA,通過飼喂的方式,這種dsRNA能夠抑制鱗翅目昆蟲體內(nèi)囊狀幼蟲病毒的復(fù)制[12]。Leonard 等對蜜蜂腸細菌(Snodgrassellaalvi)進行改造,使其能夠在蜜蜂腸道中穩(wěn)定定殖并產(chǎn)生dsRNA,提高蜜蜂對病毒的抵抗力[13]。簡便、低成本dsRNA合成技術(shù)的成功研發(fā)和應(yīng)用,加快了RNA農(nóng)藥的發(fā)展速度。
3RNA殺菌劑的研發(fā)及防治作物病害
3.1 可噴灑型dsRNA
可噴灑型dsRNA是通過外源噴施靶向病原菌基因dsRNA,使病原菌相關(guān)基因沉默,達到防治植物病害的自的。直接噴灑具有使用簡便、易于推廣等優(yōu)點。噴施在植物表面的dsRNA通過兩種方式進入致病菌體內(nèi),一種是植物細胞吸收dsRNA,再運輸?shù)街虏【w內(nèi);另一種是致病菌直接吸收dsRNA。Koch等在植物表面噴灑含有熒光標(biāo)記的dsRNA,在植物的木質(zhì)部和韌皮部及篩管部細胞中檢測到dsRNA,證明植物細胞可以吸收外源的dsRNA[14]。在植物表面噴施dsRNA后,dsRNA分子能夠通過氣孔或者傷口進入植物體內(nèi),并且可以在植物體內(nèi)傳導(dǎo)[15],這為可噴灑型dsRNA進入植物體內(nèi)來抵御有害生物的危害奠定了基礎(chǔ)。據(jù)研究報道,不同致病菌對dsRNA的吸收率不同,灰霉病菌、核盤菌、立枯絲核菌、黑曲霉菌和大麗輪枝菌能夠有效吸收dsRNA,致病疫霉、有益真菌綠木霉菌吸收dsRNA的效率較低,膠孢炭疽菌不能吸收dsRNA[16]。如何提高植物及致病菌對dsRNA的吸收率,提高抑菌效果,是當(dāng)前研究的熱點。Wang等制備了可靶向疫霉菌羧酸酰胺類(CAAs)殺菌劑靶標(biāo)蛋白纖維素合酶3(CesA3)和氟噻唑吡乙酮的靶標(biāo)氧化固醇結(jié)合蛋白1(OSBP1)關(guān)鍵區(qū)域的CesA3-/OSBP1-dsRNAs,將其直接噴施于離體葉片或辣椒幼苗根莖部,能有效防治辣椒疫病[17]。Mcrae等研發(fā)出防治葡萄白粉病的可噴灑型dsRNA,合成的靶向基因dsRNA使病菌孢子產(chǎn)量降低了 5 3 % ~ 6 4 % ,并且顯著抑制葡萄白粉病的發(fā)生[18]。Ding等創(chuàng)制了一種智能響應(yīng)酸性釋放的納米核酸抗病毒藥物,能夠有效降低HSP70基因的表達水平,有效抑制煙草花葉病毒(TMV)和馬鈴薯Y病毒(PVY)的發(fā)生[9]。由于dsRNA在環(huán)境中的穩(wěn)定性相對低,dsRNA直接噴灑后可能因環(huán)境中的RNA酶、紫外線輻射等發(fā)生變性或降解,存在RNA干擾持效期較短、效果不穩(wěn)定等問題,因此需要借助助劑提高dsRNA對病害的防治效果。此外,植物及植物病原菌對dsRNA的吸收效率也是影響RNA殺菌劑效果的重要原因之一。
3.2 納米材料遞送dsRNA
納米材料與dsRNA結(jié)合,不僅能保護dsRNA免受降解,還能增強dsRNA的傳遞能力,通過納米材料載體遞送dsRNA防治作物病害能夠顯著提高RNA殺菌劑的防治效果,為新型RNA殺菌劑的研發(fā)應(yīng)用提供了新的突破口。由疫霉菌引起的晚疫病,對馬鈴薯生產(chǎn)造成了毀滅性的危害,Wang等利用納米材料星型陽離子聚合物SPc,研發(fā)出了一種基于dsRNA和植物免疫誘抗劑的自組裝多元納米新型生物制劑,通過納米材料載體SPc高效結(jié)合和遞送dsRNA,可實現(xiàn)對馬鈴薯晚疫病的防治[20]。Mitter等研發(fā)出一種有效防治黃瓜花葉病毒病的RNA農(nóng)藥,其通過納米材料層狀雙氫氧化物L(fēng)HD,通過靜電作用結(jié)合dsRNA,實現(xiàn)dsRNA的緩慢釋放和對黃瓜花葉病毒病的有效防控[21]。Ouyang等同時以PpAE1、PpAE2和 P p A E 3 為靶標(biāo),合成了防治大豆銹病菌的dsRNA,使用納米材料殼聚糖進行裝載遞送,顯著抑制了大豆銹病的發(fā)生[22]。Qiao等使用納米囊泡(AVs)包裹和遞送dsRNA,形成AV-dsRNA復(fù)合體,AV-dsRNA通過增加dsRNA的穩(wěn)定性和持久性,AV-dsRNA處理可延長對番茄、葡萄和葡萄葉片的抗灰霉菌的水平,并且延長了dsRNA對作物果實和葉片的保護期[23]。Hao等將沉默玉米感病基因ZmFd3的dsRNA負載到CLPs和ALPs兩種脂質(zhì)體中,降低了因外界環(huán)境因素等引起的dsRNA降解,dsRNA-CLPs/ALPs復(fù)合體可通過葉片和根部進入玉米體內(nèi),抑制玉米褪綠斑駁病毒和甘蔗花葉病毒對玉米的侵染[24]。Sharma等使用納米粘土作為馬鈴薯晚疫病靶向基因dsRNA的載體,通過生物活性測定、離葉測定和葉面噴霧法進行抑菌效果評估,結(jié)果顯示疫霉菌的生長、孢子形成和發(fā)病癥狀顯著降低,與dsRNA單用噴霧相比,以納米粘土作為載體的dsRNA噴霧處理后,抑菌效果顯著增加[25]。通過納米材料載體遞送dsRNA 顯著提高了dsRNA的穩(wěn)定性和對dsRNA的轉(zhuǎn)運效率,若將納米材料作為RNA殺菌劑的助劑使用,會極大提高dsRNA對致病菌的干擾效率,提升RNA殺菌劑的防治效果和持效期。
3.3在作物中表達靶向病原菌dsRNA
通過轉(zhuǎn)基因技術(shù),研究人員能夠在寄主作物中表達靶向病原菌dsRNA,從而啟動RNA干擾機制,有效殺死或抑制病原菌生長繁殖,提高作物對病害的抗性。Zhang等在棉花中表達了靶向大麗輪枝菌VdHI基因的dsRNA,獲得了抗黃萎病棉花株系35S-VdHli,提高了植株對棉花黃萎病的抗性[2。通過干擾SsGlcP基因的表達可有效降低甘蔗鞭黑粉菌的致病力,降低甘蔗黑穗病的發(fā)生,Wu等基于農(nóng)桿菌介導(dǎo)的甘蔗遺傳轉(zhuǎn)化體系,以甘蔗ROC22品種為底盤,成功構(gòu)建了以SsGlcP基因為靶標(biāo)的宿主誘導(dǎo)的基因沉默轉(zhuǎn)基因甘蔗,在轉(zhuǎn)基因株系中成功干擾SsGlcP基因,使黑穗病發(fā)生率明顯下降,與對照相比,轉(zhuǎn)基因株系中黑粉菌的生物量顯著下降[27]。Zhu等構(gòu)建了以合成MAP激酶基因PsFUZ7為靶標(biāo)基因dsRNA的轉(zhuǎn)基因小麥品系,該品系通過穩(wěn)定表達dsRNA,降解PsFUZ7基因轉(zhuǎn)錄物,從而對小麥條銹病產(chǎn)生良好的抗病性,來抵御小麥條銹病的危害[28]。Nowara等將表達靶向白粉病菌Blumeriagraminis葡聚糖轉(zhuǎn)移酶基因Avral0的dsRNA轉(zhuǎn)入大麥中,構(gòu)建了轉(zhuǎn)基因大麥品系,顯著增強了大麥對白粉病的抗性,有利于白粉病的綠色防控[29]。Wang等在番茄中利用RNA干擾沉默灰葡萄孢Botrytiscinerea的DCL基因,降低了灰葡萄孢的致病性[30]。這些研究充分表明,在作物中表達針對病原菌的dsRNA是一種有效的病害防控策略。然而,轉(zhuǎn)基因作物的研發(fā)周期長、成本高及民眾接受度差等問題仍然不容忽視,與殺菌劑的研發(fā)相比,轉(zhuǎn)基因作物的開發(fā)周期通常更長。因此,從商業(yè)化應(yīng)用的可行性和社會接受度等角度考慮,高效殺菌劑的研發(fā)是更高效、經(jīng)濟的病害防控方案。
4小結(jié)與展望
隨著化學(xué)農(nóng)藥長期使用產(chǎn)生的病蟲抗藥性、農(nóng)藥殘留和環(huán)境污染等問題,急需研發(fā)新型生物農(nóng)藥來部分替代化學(xué)農(nóng)藥,以在保護環(huán)境的基礎(chǔ)上,實現(xiàn)對病蟲害的有效防控。RNA農(nóng)藥是一類可以特異性結(jié)合靶標(biāo)生物中特定基因,沉默靶標(biāo)生物體內(nèi)相應(yīng)基因的表達[31.32],從而干擾靶標(biāo)生物的正常生長及其對寄主植物的危害,具有靶標(biāo)專一性和環(huán)境友好性等特點。隨著納米技術(shù)、生物信息技術(shù)和現(xiàn)代農(nóng)業(yè)技術(shù)的交叉融合,為dsRNA的合成、可噴灑型RNA殺菌劑的研發(fā)應(yīng)用提供了載體[33.34],有利于新型RNA殺菌劑的開發(fā)。
篩選合成能夠高效沉默作物病原菌靶向基因的dsRNA是RNA殺菌劑研發(fā)的基本條件。由于RNA配對有一定的“容錯率”[35],RNA殺菌劑dsRNA不僅能與靶向基因的信使RNA結(jié)合,也存在與序列相似但不完全相同的其他信使RNA結(jié)合的可能性,導(dǎo)致其它基因發(fā)生沉默,從而降低了對靶向基因的沉默效率。因此,為了防止dsRNA的“脫靶效應(yīng)”,確保dsRNA的特異性,必須篩選合成高效的作物病原菌靶向基因的dsRNA。
RNA殺菌劑和其他化學(xué)農(nóng)藥、生物農(nóng)藥一樣,存在其特有的優(yōu)勢,但也存在著特有的弊端,最明顯的就是不易維持其環(huán)境穩(wěn)定性[3。dsRNA作為雙鏈核糖核酸分子,農(nóng)田環(huán)境中的高溫、紫外線、風(fēng)雨吹刷等和生物體內(nèi)的核酸酶均能破壞其穩(wěn)定性。如何使用納米材料等包裹和遞送dsRNA提高其環(huán)境穩(wěn)定性,是今后研究的重點方向。此外,不同作物、不同病原菌對dsRNA的吸收效率也不同,如何提高dsRNA進人植物和病原菌體內(nèi)的效率,是實現(xiàn)商業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)RNA殺菌劑的關(guān)鍵。
《“十四五”全國農(nóng)藥產(chǎn)業(yè)發(fā)展規(guī)劃》中指出優(yōu)先發(fā)展RNA及小肽類生物農(nóng)藥,為RNA農(nóng)藥的發(fā)展提供了政策保障。但RNA殺菌劑目前還處于室內(nèi)研究階段,尚缺少上市的RNA殺菌劑產(chǎn)品和在田間大面積應(yīng)用防治作物病害的報道,迫切需要加大對RNA農(nóng)藥的研發(fā)力度,突破技術(shù)壁壘,加快商品化進程。
參考文獻:
[1]楊普云,王凱,厲建萌,等.以農(nóng)藥減量控害助力農(nóng)業(yè)綠色發(fā)展[J]植物保護,2018,44(5):95-100.
[2]秦萌,任宗杰,張帥,等.從“農(nóng)藥零增長行動”看“農(nóng)藥減量化”發(fā)展[J].中國植保導(dǎo)刊,2021,41(11):89-94.
[3]關(guān)梅,晁子健,閆碩,等.RNA農(nóng)藥的研究現(xiàn)狀和發(fā)展前景[J].現(xiàn)代農(nóng)藥,2023,22(2):11-18.
[4]解昆侖,郭珍,古勤生.“RNAi農(nóng)藥”防治植物病毒病的研究進展[J].中國植保導(dǎo)刊,2020,40(1):29-34+54.
[5]宋修仕,高靜,周明國.基于RNA干擾的殺菌劑開發(fā)及其對化學(xué)殺菌劑的影響[J].農(nóng)藥學(xué)學(xué)報,2023,25(1):1-11.
[6]崔錦程,崔潔,卞小瑩.生產(chǎn)雙鏈RNA工程菌的研究進展[J/OL]生物工程學(xué)報,2025,1-14.
[7]GUANRB,CHUDD,HANXY,etal. Advances in the developmentof microbial double-stranded RNA production systems for applicationofRNA interference inagricultural pestcontrol[J].FrontiersinBioengineering and Biotechnology,2021(9):753790.
[8]張建珍,柴林,史學(xué)凱,等.RNA干擾技術(shù)與害蟲防治[J].山西大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2021,44(5):980-987.
[9]YANGL,TIANY,PENGYY,etal.Expression dynamics of coreRNAimachinery genes in pea aphids upon exposure to artificially synthesizeddsRNAandmiRNAs[J].Insects,2020,11(2):70.
[10]TIMMONSL,COURTDL,F(xiàn)IREA. Ingestion of bacterially expresseddsRNAs can produce specific and potent genetic interference inCaenorhabditiseleganss[J].Gene,2001,263(1-2):103.
[11]馬中正,閆碩,沈杰.基于工程菌高效合成靶向昆蟲基因的dsRNA的方法[J].應(yīng)用昆蟲學(xué)報,2019,56(2):342-347.
[12]PARKMG,KIMWJ,CHOIJY,etal.Development ofa Bacillusthuringiensisbased dsRNA production platform tocontrol sacbroodvirus inApis cerana[J].PestManagement Science,202o,76(5):1699 -1704.
[13]LEONARDSP,POWELLJE,PERUTKAJ,etal.Engineeredsymbiontsactivate honey bee immunityand limit pathogens[J].Science,2020,367(6477):573-576.
[14]KOCHA,BIEDENKOPF D,F(xiàn)URCHA,et al. An RNAi- Basedcontrol of Fusarium graminearum infections through spraying of longdsRNAs involves a plant passage and iscontrolled by the fungalsilencing machinery[J].PLoS Pathogens,2016,12(10): e1005901.
[15]。KENNELLY MM, GADOURYD M, WILCOX WF, etal. Primaryinfection,lesionproductivitynduivalofsporangiainteainedowny mildew pathogen Plasmopara viticola.Phytopathology,2007,97 (4): 512-522.
[16]QIAOLL,CHIL,LUCAC,et al. Spray-induced gene silencing fordisease control is dependent on the efficiency of pathogen RNA uptake[J].PlantBiotechnology Journal,2021,19(9):1756-1768.
[17]WANG ZW,LIY, ZHANGB,GAOX,et al. Functionalized carbondot -delivered RNA nano fungicides as superior tools to controlPhytophthora pathogensthrough plant RdRPl mediated spray-induced gene silencing[J].Advanced Functional Materials,2023,33 (22): 2213143.
[18]MCRAE AG,TANEJAJ,YEE K,et al. Spray- induced genesilencing to identify powdery mildew gene targets and proceses forpowdery mildew control[J].Molecular Plant Pathology,2023,24(9): 1168- 1183.
[19]DINGC,JIAOY,LI Y,et al.Anovel pH-responsive multi -component nanodelivery system with siRNA for plant diseasemanagement[J]. Chemical Engineering Joumal,2024(497):155001.
[20]WANGY,LIM, YINGJ,et al. High-efficiency green managementof potato late blight by a self -assembled multicomponent nano-bioprotectant[J].Nature Communications,2023,14(1):5622.
[21]MITTERN,WORRALLEA,Robinson KE,etal. Clay nanosheetsfor topical delivery of RNAi for sustained protection against plantviruses[J].Nature plants,2017,3(2):1-10.
[22]OUYANG HB,SUN G Z,LI K,et al. Profiling of phakopsorapachyrhizi transcriptome revealed co-expressed virulence effectors asprospective RNA interference targets for soybean rust management[J].Joumal of Integrative Plant Biology.2024,66(11):2543- 2560.
[23]QIAO L,NINO - SANCHEZ J,HAMBY R,et al.Artificialnanovesicles for dsRNA delivery in spray- induced gene silencing forcrop protection[J].Plant Biotechnology Journal,2023,21(4):854-865.
[24]HAO K Q,GAO X R,YANG M,etal. Ananomaterial for the deliveryof dsRNA asa strategy toalleviate viral infectionsinmaizet[J].Chemical Engineering Journal,2024,488:150923.
[25]SHARMA S, BAIRWAA, TOMAR M,et al. Spraying of dsRNAmolecules derived fromPhytophthora infestans,alongwith nanoclaycarrers asa proof of concept for developing novel protection strategyfor potato late blight[J].Pest Management Science,2022,78(7):3183.
[26]ZHANGT,JINY, ZHAO JH,et al. Host- induced gene silencingofthe target gene in fungal cells confers effective resistance to thecotton wilt disease pathogen Verticilliumdahliae[J].Molecular plant,2016,9(6):939-942.
[27]WUH,QIU J,ZHANGP,LU S,et al. Host-induced gene silencingofSporisoriumscitamineum enhancesresistance tosmut in sugarcane[J].Plant Biotechnology Journal,2025:1-3.
[28]ZHUX,QIT,YANGQ,etal.Host-induced gene silencingof theMAPKK gene PsFUZ7 confers stable resistance to wheatstripe rust[J].Plant Physiology,2017,175(4):1853-1863.
[29]NOWARAD,GAYA,LACOMMEC,etal.HIGS:host-inducedgene silencing in the obligate biotrophic fungal pathogen Blumeriagraminis[J].ThePlantCell,2010,22(9):3130-3141.
[30]WANGM,WEIBERGA,LINFM,et al.Bidirectional cross -kingdom RNAi and fungal uptake of external RNAs confer plantprotection[J].NaturePlants,2016,19(2):16151.
[31] 何承帥,張輝,吳順凡,等.核酸農(nóng)藥納米遞送系統(tǒng)研究進展[J]農(nóng)藥學(xué)學(xué)報,2023,25(6):1179-1197.
[32] 程偉,李和平,何水林,等.寄主誘導(dǎo)的基因沉默提高植物真菌病害抗性研究進展[J].作物學(xué)報,2017,43(8):1115-1121.
[33]關(guān)梅,尹佳茗,閆碩,等.納米遞送系統(tǒng)在植物病蟲害防控領(lǐng)域的應(yīng)用與展望[J].仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院學(xué)報,2024,37(1):59-66.
[34]閆碩,蔣沁宏,沈杰.納米農(nóng)藥及載體材料的增效機理研究現(xiàn)狀[J].植物保護學(xué)報,2022,49(1):366-373.
[35] 薛珊,王淑雅,劉麗,等.基于CRISPR/Cas9 的精準基因編輯技術(shù)研究進展[J].生物工程學(xué)報,2023,39(7):2566-2578.
[36]李爽,閆更軒,田緣,等.RNA干擾技術(shù)防控作物真菌病害研究進展[J].北方園藝,2024(3):127-136.