劉婷 ,王怡 ,李冰輝 ,何碩 ,夏江 ,朱婷 (.哈爾濱商業(yè)大學(xué)藥學(xué)院,哈爾濱 50076;2.哈爾濱醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,黑龍江 大慶 69;.哈爾濱商業(yè)大學(xué)英才學(xué)院,哈爾濱 50028;4.哈爾濱商業(yè)大學(xué)藥學(xué)院藥物工程技術(shù)研究中心,哈爾濱 50076)
腦膠質(zhì)瘤又稱膠質(zhì)細(xì)胞瘤、膠質(zhì)瘤,是發(fā)生于神經(jīng)外胚層的腫瘤,故亦稱神經(jīng)外胚層腫瘤或神經(jīng)上皮腫瘤。腦膠質(zhì)瘤是顱內(nèi)最難治愈的惡性腫瘤之一,發(fā)病率占顱內(nèi)腫瘤的44.69%,其多呈浸潤性生長,手術(shù)不易全切,治療敏感性極差,5年生存率不足5%[1]。替莫唑胺(temozolomide,TMZ)是咪唑并四嗪類衍生物,在體內(nèi)經(jīng)快速非酶催化轉(zhuǎn)變?yōu)榛钚曰衔?-(3-甲基三氮烯-1-)咪唑-4-酰胺[5-(3-methyltriazene-1-)imidazole-4-amide,MTIC];MTIC主要作用于DNA鳥嘌呤的O6和N6位點(diǎn),通過烷基化發(fā)揮細(xì)胞毒性作用[2]。TMZ是目前臨床治療腦膠質(zhì)瘤的一線化療藥物,具有針對性強(qiáng)、特異性高的優(yōu)點(diǎn),療效顯著。然而,TMZ會產(chǎn)生惡心、嘔吐、溶血、過敏等不良反應(yīng)。因此,尋找合適的載體來負(fù)載TMZ,提高藥效、減少副作用成為當(dāng)前研究的熱點(diǎn)。
腫瘤細(xì)胞內(nèi)糖酵解增強(qiáng)和缺氧特征所導(dǎo)致的乳酸、碳酸增多,是腫瘤部位微酸環(huán)境形成的原因之一;另外,腫瘤細(xì)胞內(nèi)的酸性細(xì)胞器,如溶酶體和內(nèi)涵體,具有更低的pH(pH5~6)[3]。因此,pH常作為內(nèi)源性刺激響應(yīng)信號用于腫瘤藥物控制釋放研究[3]。沸石咪唑骨架(zeolite imidazole framework,ZIF)是一種由鋅離子(Zn2+)和咪唑或其衍生物組成的金屬有機(jī)框架,是鋅基金屬有機(jī)骨架材料(Zn-metal-organic frameworks,Zn-MOFs)中應(yīng)用最廣泛的藥物載體。最具代表性的ZIF是ZIF-8,由Zn2+和2-甲基咪唑環(huán)上的N原子配位形成,其特點(diǎn)為高孔隙率、易改性、一定的熱和化學(xué)穩(wěn)定性、低毒性、極大的生物相容性。ZIF-8對酸敏感,具有pH響應(yīng)釋放功能,因此其在藥物控制釋放方面有很好的表現(xiàn)。據(jù)研究報(bào)道,ZIF-8對pH敏感的原因是酸性條件可導(dǎo)致Zn+-咪唑離子配位鍵裂解,從而瓦解ZIF-8的骨架,釋放藥物;而在正常pH條件下(pH7.4),ZIF可以將藥物留置于孔隙內(nèi),從而保護(hù)環(huán)境不受藥物毒副作用的影響[4]。
本研究采用ZIF-8納米粒(nanoparticles,NPs)負(fù)載TMZ(簡稱TMZ@ZIF-8 NPs)構(gòu)建藥物遞送系統(tǒng),借助ZIF-8特有的穩(wěn)定多孔骨架結(jié)構(gòu),高效包裹TMZ并轉(zhuǎn)移至病灶部位,以期提高TMZ對腦膠質(zhì)瘤的治療效果并降低TMZ的毒副作用。
XS205DU型十萬分之一精密電子天平購自梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;pHS-2C型精密酸度計(jì)購自上海雷磁儀器廠;78-2型雙向磁力攪拌器購自常州國華電器有限公司;KQ-400KDE型高功率數(shù)控超聲波清洗器購自昆山市超聲儀器有限公司;TG16W型微量高速離心機(jī)購自湖南湘儀離心機(jī)廠;Zetasizer Nano ZS90型激光粒度儀購自英國Malvern公司;XW-80A型渦旋振蕩器、SCIENTZ-100FG/A型冷凍干燥機(jī)均購自寧波新芝生物科技股份有限公司;JEM-100CX Ⅱ型透射電子顯微鏡購自日本電子株式會社;UV-1780型紫外可見分光光度計(jì)、SPD-20AV型高效液相色譜儀均購自島津儀器(蘇州)有限公司;8400S型傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)TIR)儀購自北京銀河系醫(yī)療技術(shù)有限公司;HZQ-F160型振蕩培養(yǎng)箱購自江蘇迅迪儀器科技有限公司;XFS-280A型高壓蒸汽滅菌鍋購自上海新豐醫(yī)療器械有限公司;Synergy HTX型多功能酶標(biāo)儀購自上海三申醫(yī)療器械有限公司;DeltaVision型高分辨率活細(xì)胞成像系統(tǒng)購自北京東勝創(chuàng)新生物科技有限公司;AE2000型倒置生物顯微鏡購自上海光學(xué)儀器廠;ESCO型細(xì)胞培養(yǎng)箱購自深圳市賽亞泰科儀器設(shè)備有限公司;SA-100型腦立體定位儀購自上海玉研科學(xué)儀器有限公司;IVIS Lumina LT Series Ⅲ型小動物活體成像系統(tǒng)購自美國Caliper Life Sciences公司。
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大鼠腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞株C6、人膠質(zhì)母細(xì)胞瘤細(xì)胞系U87均購自中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞資源中心;SD大鼠購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動物技術(shù)有限公司,動物生產(chǎn)許可證號為SCXK(京)2020-0011。本實(shí)驗(yàn)通過哈爾濱商業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物倫理委員會審查,倫理編號為HSDYXY-2023053。
采用室溫溶液反應(yīng)法制備ZIF-8 NPs[5]。首先,將148.74 mg六水硝酸鋅溶解于5~20 mL無水甲醇至終濃度為0.025~0.10 mmol/mL。然后,將328.40 mg 2-甲基咪唑溶解于5~20 mL無水甲醇中至終濃度為0.20~0.80 mmol/mL。完全溶解后,將六水硝酸鋅溶液緩慢加入到2-甲基咪唑溶液中,六水硝酸鋅與2-甲基咪唑物質(zhì)的量比為1∶2、1∶4、1∶8。將溶液攪拌30~60 min并以10 000~14 000 r/min離心,收集沉淀物。沉淀物用無水甲醇和超純水洗滌3次以去除未反應(yīng)的試劑。最后,將產(chǎn)物分散到超純水中,得到ZIF-8 NPs。將其水分散溶液冷凍干燥獲得ZIF-8 NPs粉末。研究表明,ZIF-8 NPs的制備過程中影響粒徑的因素有:六水硝酸鋅濃度、2-甲基咪唑濃度、六水硝酸鋅與2-甲基咪唑物質(zhì)的量比、溶液混合時(shí)的加入方式、攪拌時(shí)間、離心速率[5]。本研究以上述6個(gè)影響因素為單因素考察內(nèi)容,以ZIF-8 NPs的粒徑為參考指標(biāo)因素水平(表1)進(jìn)行單因素試驗(yàn)。接著根據(jù)前期預(yù)實(shí)驗(yàn)及單因素考察結(jié)果,確定制備ZIF-8 NPs的溶劑為甲醇,溶液混合時(shí)以液下注入的方式加入,離心速率為12 000 r/min,利用正交試驗(yàn),構(gòu)建以ZIF-8 NPs粒徑大小為指標(biāo),以六水硝酸鋅濃度、2-甲基咪唑濃度、六水硝酸鋅與2-甲基咪唑物質(zhì)的量比和攪拌時(shí)間為因素的因素水平表與L9(34)設(shè)計(jì)表,用以篩選制備ZIF-8 NPs的最優(yōu)處方工藝。
通過浸漬法完成TMZ的負(fù)載[6]。將未負(fù)載藥物的ZIF-8 NPs溶液加入到含有TMZ的甲醇溶液中,TMZ與ZIF-8 NPs物質(zhì)的量比為1∶3?;旌虾蟮娜芤簲嚢?2 h,離心收集產(chǎn)物,用甲醇和超純水多次洗滌。最后,將產(chǎn)物分散到超純水中,經(jīng)冷凍干燥后,得到淺粉色粉末狀的TMZ@ZIF-8 NPs。
采用酸解法檢測TMZ@ZIF-8 NPs的載藥率(drugloading efficiency,LE)[7]。將TMZ@ZIF-8 NPs凍干粉2.0 mg與 0.1 mol/L的HCl溶液1 mL混合,超聲破壞5 min,然后用超純水清洗。采用紫外-可見分光光度法在329 nm波長處檢測從NPs中釋放的藥物濃度[8],計(jì)算TMZ@ZIF-8 NPs中TMZ的LE(We/Wm×100%)。式中,We為包封于TMZ@ZIF-8 NPs內(nèi)的藥量,Wm為藥物遞送系統(tǒng)的總質(zhì)量。
采用動態(tài)膜透析法研究TMZ@ZIF-8 NPs的釋放行為。由于TMZ在pH>7的介質(zhì)中會迅速分解,故在模擬人體正常生理環(huán)境的介質(zhì)中[磷酸鹽緩沖液(PBS),pH7.4],TMZ很難被定量檢測,故采用pH5.0的PBS模擬腫瘤區(qū)域微環(huán)境。將1 mL TMZ@ZIF-8 NPs懸浮液轉(zhuǎn)移至透析袋中(分子量截至3 000 Da),放入含有10 mL PBS(pH5.0)的EP管中,并轉(zhuǎn)移至恒溫振蕩器(37 ℃,110 r/min)模擬體內(nèi)條件的TMZ釋放。然后,在指定的時(shí)間點(diǎn)(1、2、4、8、12、24、36、48、72 h)取出1.0 mL釋放介質(zhì),并將1.0 mL新鮮介質(zhì)加回釋放介質(zhì)中。參考“2.2”項(xiàng)下紫外-可見分光光度法檢測釋放出的藥物濃度,計(jì)算藥物累積溶出速率(cumulative dissolution rate,CDR),繪制累積釋放百分比曲線。CDR(%)=[Cn·V2/L+(Cn-1+……+C2+C1)·V1/L)]×100%。式中,Cn為各時(shí)間點(diǎn)取出后的樣品濃度,L為制劑標(biāo)示量,V1為各時(shí)間點(diǎn)固定取樣體積,V2為溶出介質(zhì)體積。
采用激光粒度儀分析TMZ@ZIF-8 NPs、ZIF-8 NPs的粒徑、Zeta電位和多分散系數(shù)。采用透射電鏡在80 kV分析TMZ@ZIF-8 NPs的結(jié)構(gòu)特征。采用FTIR儀檢測ZIF-8 NPs、TMZ、TMZ@ZIF-8 NPs的官能團(tuán)。
2.5.1 細(xì)胞培養(yǎng)
大鼠腦膠質(zhì)瘤C6細(xì)胞培養(yǎng)于DMEM培養(yǎng)基中,在5% CO2、37 ℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中持續(xù)培養(yǎng)。待細(xì)胞生長至對數(shù)生長期,將C6細(xì)胞接種至細(xì)胞培養(yǎng)板上,輕輕搖動培養(yǎng)板,然后移至培養(yǎng)箱中。
2.5.2 細(xì)胞毒性檢測
采用CCK-8法檢測。取“2.5.1”項(xiàng)下對數(shù)生長期的C6細(xì)胞,按5×103個(gè)/孔接種于96孔板,DMEM高糖培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜。去除培養(yǎng)液,將細(xì)胞分為對照組和不同濃度的處理組,對照組加入200 μL的DMEM高糖培養(yǎng)基,處理組分別加入含不同濃度(5、10、20、50、100、200、400、800 μg/mL)TMZ、ZIF-8 NPs、TMZ@ZIF-8 NPs的新鮮DMEM高糖培養(yǎng)基,孵育24、48、72 h后,去除舊細(xì)胞培養(yǎng)液。每孔加入CCK-8試劑10 μL,37 ℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中再孵育4 h后,在酶標(biāo)儀上檢測450 nm波長處的吸光度,計(jì)算相對細(xì)胞存活率。相對細(xì)胞存活率(%)=處理組吸光度/對照組吸光度×100%。
2.5.3 細(xì)胞攝取檢測
(1)使用Rho代替TMZ加載到ZIF-8 NPs遞送系統(tǒng)中形成Rho@ZIF-8 NPs。取“2.5.1”項(xiàng)下對數(shù)生長期的C6細(xì)胞,按1×105個(gè)/孔接種至玻璃底培養(yǎng)皿中,DMEM高糖培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜。去除培養(yǎng)液,然后用Hoechst染料對細(xì)胞核進(jìn)行染色,避光孵育5 min,用PBS洗滌2次。細(xì)胞膜用Dio染料染色,避光孵育10 min,用PBS洗滌2次。最后,分別加入游離Rho和Rho@ZIF-8 NP(Rho含量相同)。在0.5、2、4 h時(shí),采用高分辨率活細(xì)胞成像系統(tǒng)獲得細(xì)胞熒光強(qiáng)度圖像。
(2)采用流式細(xì)胞術(shù)獲得游離Rho和Rho@ZIF-8 NPs的攝取量。取“2.5.1”項(xiàng)下對數(shù)生長期的C6細(xì)胞,以2×105個(gè)/孔接種至12孔板中,每孔體積1 mL,DMEM高糖培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜。棄去舊的培養(yǎng)液,分別加入游離Rho和Rho@ZIF-8 NPs(Rho含量相同)。孵育不同時(shí)間(0.5、2、4 h)后,PBS洗滌2次,用胰酶進(jìn)行消化,最后得到的單細(xì)胞懸液分別收集到不同的離心管中,以2 000 r/min離心3 min后,去除上清液,沉淀細(xì)胞團(tuán)用PBS重懸并轉(zhuǎn)移至流式管中,使用流式細(xì)胞儀測定其熒光強(qiáng)度,通過熒光強(qiáng)度定量對比觀察細(xì)胞攝取情況。
2.5.4 細(xì)胞凋亡檢測
采用流式細(xì)胞術(shù)檢測。取“2.5.1”項(xiàng)下對數(shù)生長期的C6細(xì)胞,按2×105個(gè)/孔接種至12孔板,每組設(shè)4個(gè)復(fù)孔,DMEM高糖培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜。去除培養(yǎng)液,參考“2.5.2”項(xiàng)下CCK-8法分組情況及其檢測結(jié)果,分別加入含ZIF-8 NPs、TMZ、TMZ@ZIF-8 NPs 25 μg/mL的新鮮DMEM高糖培養(yǎng)基,培養(yǎng)8 h。移出舊培養(yǎng)基并合并,用PBS沖洗,胰蛋白酶消化后,將單細(xì)胞懸液分別收集到不同的離心管中以2 000 r/min離心3 min,去除上清液。將沉淀的細(xì)胞塊重懸于冷PBS中,以2 000 r/min離心3 min,棄上清液。將沉淀重懸于結(jié)合緩沖液后轉(zhuǎn)移至流式細(xì)胞管中。加入Annexin Ⅴ-FITC 5 μL,室溫避光孵育15 min。檢測前5 min加入5 μL碘化丙啶(propidium iodide,PI)染料。采用流式細(xì)胞儀檢測1 h內(nèi)細(xì)胞凋亡情況,細(xì)胞凋亡率(%)=凋亡細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)×100%。
2.6.1 大鼠U87細(xì)胞腦部造模
取密度為80%~90%的U87細(xì)胞,消化細(xì)胞后加入EP管中,以2 000 r/min離心3 min,去除上清液后加入PBS離心,去除上清液后二次加入PBS離心,去除上清液后加入微量PBS,混勻,得細(xì)胞懸液。取10 μL細(xì)胞懸液,以10 μL臺盼藍(lán)+80 μL培養(yǎng)液進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。取10 μL染色的細(xì)胞懸液滴入細(xì)胞計(jì)數(shù)板,進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)。
大鼠麻醉后將其固定在腦立體定位儀上,剪去頭顱上皮,劃掉緊挨頭顱的薄膜,橫平豎直固定進(jìn)樣針,接著安裝微量進(jìn)樣泵及進(jìn)樣針,下針深度2.5 mm,靜置5 min,開始按壓微量注射泵,進(jìn)U87細(xì)胞懸液20 min,再次靜置10 min。觀察大鼠大腦腫瘤位置、大小、顏色、生長情況等,待腫瘤體積生長至150~200 mm3時(shí),視為造模成功[9],可進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
2.6.2 大鼠體內(nèi)TMZ@ZIF-8 NPs富集的觀察
將造模成功的大鼠隨機(jī)分為3組,分別為TMZ組、ZIF-8 NPs組、TMZ@ZIF-8 NPs組,每組10只。參考文獻(xiàn)[10―12]的方法,在制備ZIF-8 NPs過程中,加入熒光染料1,1′-二十八烷基-3,3,3′,3′-四甲基吲哚三碳花青碘(1,1′-dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindotricarbocyanine,DiR)甲醇溶液即得ZIF-8 NPs-DiR、TMZ@ZIF-8 NPs-DiR;取TMZ溶解在適量甲醇中,加入DiR(DiR母液揮干后加入等體積甲醇),攪拌24 h,以12 000 r/min離心15 min,揮干,分散在0.9%生理鹽水中即得TMZDiR。其中TMZ-DiR組、TMZ@ZIF-8 NPs-DiR組注射TMZ含量為2.5 mg/kg,注射24 h后,將大鼠處死,采用小動物活體成像系統(tǒng)觀察藥物在大鼠體內(nèi)的富集情況。所有實(shí)驗(yàn)至少重復(fù)3次。
采用SPSS 23.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)量資料滿足正態(tài)分布以±s表示,多組間比較采用方差分析,進(jìn)一步兩兩比較使用SNK-q檢驗(yàn)。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
單因素和正交試驗(yàn)確定的ZIF-8 NPs的制備條件:六水硝酸鋅濃度為0.05 mmol/mL,2-甲基咪唑濃度為0.40 mmol/mL,六水硝酸鋅與2-甲基咪唑物質(zhì)的量比為1∶8,溶液混合時(shí)的加入方式為液下注入,攪拌時(shí)間為45 min,離心速率為12 000 r/min。最終制備出形態(tài)規(guī)整、分散均勻、粒徑大小適宜(約110 nm)的ZIF-8 NPs作為藥物遞送系統(tǒng)。成功合成的ZIF-8 NPs溶液為白色并伴有藍(lán)色乳光;TMZ@ZIF-8 NPs溶液為粉紅色。ZIF-8 NPs和TMZ@ZIF-8 NPs分散在溶液中均呈現(xiàn)均勻澄清的穩(wěn)定狀態(tài),無渾濁、無分層、無沉降;材料由白色變?yōu)榉奂t色,表明TMZ負(fù)載成功。結(jié)果見圖1。
圖1 ZIF-8 NPs、TMZ@ZIF-8 NPs外觀圖片
采用酸解法測得TMZ@ZIF-8 NPs的LE為(28.79±1.26)%。
動態(tài)膜透析法結(jié)果顯示,TMZ@ZIF-8 NPs于酸性介質(zhì)中,前12 h,附著在ZIF-8 NPs表面的TMZ快速釋放;12 h后,ZIF-8 NPs的納米結(jié)構(gòu)逐漸崩解、溶蝕,內(nèi)部包裹的TMZ得以緩慢釋放。當(dāng)釋放48 h時(shí),TMZ的CDR為(71.57±3.27)%;當(dāng)釋放72 h時(shí),CDR為(72.36±3.62)%。結(jié)果見圖2。
圖2 TMZ@ZIF-8 NPs中TMZ的累積釋放曲線圖(n=3)
(1)激光粒度儀分析結(jié)果顯示,ZIF-8 NPs的粒徑為(110.47±3.60) nm,多分散系數(shù)為0.12±0.02,Zeta電位為(20.93±2.05) mV。TMZ@ZIF-8 NPs的粒徑為(126.23±7.92) nm,多分散系數(shù)為0.13±0.03,Zeta電位為(28.46±1.94) mV。與ZIF-8 NPs相比,由于TMZ@ZIF-8 NPs負(fù)載了TMZ,粒徑增加,同時(shí)由于TMZ帶正電,使得負(fù)載后TMZ@ZIF-8 NPs的電位有所升高。結(jié)果見圖3A、B。(2)透射電鏡分析結(jié)果顯示,TMZ@ZIF-8 NPs呈正多邊形,尺寸較為均一,分散均勻,棱角較ZIF-8 NPs圓滑,表面附著顆粒感,進(jìn)一步表明ZIF-8 NPs對TMZ負(fù)載成功。結(jié)果見圖3C。(3)TMZ、ZIF-8 NPs、TMZ@ZIF-8 NPs的FTIR分析結(jié)果顯示,3 415 cm-1處吸收峰為TMZ中游離-NH2的特征吸收峰,3 195 cm-1處吸收峰為締合-NH2的特征吸收峰,2 933 cm-1處吸收峰為咪唑環(huán)中C-H的特征吸收峰,1 671 cm-1處吸收峰為TMZ中C=O的伸縮振動吸收峰,1 145 cm-1和990 cm-1處吸收峰為C-N的伸縮振動吸收峰,420 cm-1處吸收峰為Zn-N的伸縮振動吸收峰。與ZIF-8 NPs相比,TMZ@ZIF-8 NPs的FTIR顯示,3 195 cm-1處吸收峰為締合-NH2特征吸收峰、1 671 cm-1處C=O伸縮振動吸收峰、1 145 cm-1和990 cm-1處C-N伸縮振動吸收峰的振動強(qiáng)度增加,可以佐證TMZ成功負(fù)載于ZIF-8 NPs中。結(jié)果見圖3D。
圖3 3種材料的表征圖
3.5.1 細(xì)胞毒性檢測結(jié)果
CCK-8法檢測結(jié)果顯示,ZIF-8 NPs組的細(xì)胞活性值一直保持在90%以上,此結(jié)果表明空白ZIF-8 NPs對細(xì)胞無毒性,是生物相容性良好的納米藥物遞送載體。TMZ與TMZ@ZIF-8 NPs均有良好的抑制C6細(xì)胞增殖的作用。TMZ@ZIF-8 NPs對C6細(xì)胞的增殖抑制作用較TMZ更強(qiáng)。結(jié)果見表2。
表2 不同濃度ZIF-8 NPs、TMZ、TMZ@ZIF-8 NPs的相對細(xì)胞存活率結(jié)果(±s,n=3,%)
表2 不同濃度ZIF-8 NPs、TMZ、TMZ@ZIF-8 NPs的相對細(xì)胞存活率結(jié)果(±s,n=3,%)
濃度/(μg/mL)0 10 25 50 100 150 250 500 ZIF-8 NPs 99.73±1.95 97.67±6.43 97.04±2.49 94.48±3.06 93.49±1.43 92.86±1.34 92.04±3.76 91.86±2.45 TMZ 99.84±3.46 98.13±2.76 96.16±7.65 93.46±6.49 89.16±5.19 86.65±6.18 80.43±6.18 69.46±5.18 TMZ@ZIF-8 NPs 100±8.07 97.53±3.29 94.21±2.62 90.79±4.31 87.98±2.28 85.30±7.41 78.46±8.08 56.59±8.98
3.5.2 細(xì)胞攝取分析結(jié)果
(1)高分辨率活細(xì)胞顯微成像結(jié)果顯示,游離Rho與Rho@ZIF-8 NPs分別與C6細(xì)胞孵育0.5、2、4 h后,熒光強(qiáng)度均增強(qiáng);但同等孵育時(shí)間下,Rho@ZIF-8 NPs顯示的熒光強(qiáng)度更強(qiáng)。這說明C6細(xì)胞對ZIF-8 NPs具有較高的攝取能力,在負(fù)載TMZ的情況下,能夠?qū)⒏嗟腡MZ攝取進(jìn)入細(xì)胞,提高TMZ的抗腫瘤效果。結(jié)果見圖4。
圖4 C6細(xì)胞與游離Rho、Rho@ZIF-8 NPs孵育不同時(shí)間的顯微圖(Dio染色,×200)
(2)流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果顯示,圖5A、B中熒光強(qiáng)度波峰向右移,表明隨著孵育時(shí)間的延長,C6細(xì)胞對游離Rho與Rho@ZIF-8 NPs的攝取均增強(qiáng),與高分辨率活細(xì)胞顯微成像結(jié)果一致。從圖5C可知,ZIF-8 NPs具有高攝取的特點(diǎn),并且隨著作用時(shí)間的延長,攝取能力增強(qiáng)更加明顯。
圖5 游離Rho與Rho@ZIF-8 NPs在C6細(xì)胞中不同時(shí)間的熒光強(qiáng)度(n=3)
3.5.3 細(xì)胞凋亡檢測結(jié)果
流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果顯示,對照細(xì)胞凋亡率為4.79%,其中早期凋亡占1.97%;經(jīng)過ZIF-8 NPs處理后的細(xì)胞凋亡率為4.31%,其中早期凋亡占1.72%;經(jīng)過TMZ處理的細(xì)胞凋亡率為6.57%,其中早期凋亡占2.27%;經(jīng)過TMZ@ZIF-8 NPs處理后的細(xì)胞凋亡率為21.00%,其中早期凋亡占10.36%??梢钥闯?,經(jīng)過ZIF-8 NPs處理后的細(xì)胞凋亡情況與對照組無較大差別,表明ZIF-8 NPs具有生物安全性。經(jīng)過TMZ@ZIF-8 NPs處理后細(xì)胞凋亡明顯增加。早期凋亡比例顯示,TMZ@ZIF-8 NPs較TMZ的致凋亡作用更顯著,ZIF-8 NPs負(fù)載TMZ后,TMZ@ZIF-8 NPs由于能夠通過內(nèi)吞作用進(jìn)入C6細(xì)胞,隨后釋放TMZ,二者作用機(jī)制可能不同。結(jié)果見圖6。
圖6 C6細(xì)胞凋亡情況流式細(xì)胞分析結(jié)果
小動物活體成像系統(tǒng)結(jié)果顯示,單獨(dú)的ZIF-8 NPs在大鼠腦部不富集,TMZ在腦部富集效果并不顯著,而TMZ@ZIF-8 NPs腦部富集效果顯著。觀察大鼠其他主要臟器熒光成像可以看出,TMZ在各主要臟器中富集濃度較大,而TMZ@ZIF-8 NPs在各臟器中富集并不顯著。結(jié)果見圖7。
圖7 大鼠腦部和其他主要臟器活體成像
ZIF-8 NPs為近年來藥物(尤其是腫瘤藥物)載體的研究熱點(diǎn)。ZIF-8 NPs的合成方法可采用純水體系合成、有機(jī)體系合成甚至無溶劑合成[13―15]。本研究中,ZIF-8 NPs的合成溶劑采用的是無水甲醇。盡管這在溶劑殘留和環(huán)境保護(hù)方面存在風(fēng)險(xiǎn),但是ZIF-8 NPs在有機(jī)溶劑體系中更容易形成,且載體的尺寸也更易于調(diào)控,在制備過程中也將甲醇完全揮發(fā)。雖然有研究報(bào)道了一種在水溶液中合成的ZIF材料的案例,較非水系統(tǒng),這種方式的合成周期更短,所獲得的ZIF-8 NPs晶體尺寸為85 nm,并表現(xiàn)出良好的熱穩(wěn)定性[13]。但是,本課題組在純水體系中合成ZIF-8 NPs時(shí),發(fā)現(xiàn)其合成路徑較為繁瑣,制得的載體也不符合藥物傳輸?shù)男阅芤蟆?/p>
根據(jù)文獻(xiàn)記載,TMZ@ZIF-8 NPs可采用“一鍋攪拌法”或“分步合成法”?!耙诲仈嚢璺ā笔窃谛纬蒢IF-8 NPs的同時(shí)將藥物包裹其中,這種方法操作簡單、方便、快速,更適用于包封大于ZIF-8 NPs孔徑的藥物[16]。但是課題組在實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),該方法存在不可避免的結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定、尺寸大小不可控等問題。所以本研究最終采用質(zhì)量更可控的“分步合成法”作為合成方法[17]。
在TMZ@ZIF-8 NPs載藥量的測量方法上,有文獻(xiàn)報(bào)道采用投入TMZ含量去掉離心上清液中TMZ的方法計(jì)算載藥量,但該方法無論是在轉(zhuǎn)移、離心等制備過程中,還是冷凍干燥粉末回收的損失中,均存在大量誤差[18]。因此,本實(shí)驗(yàn)選用酸解破壞ZIF-8 NPs的方式釋放TMZ,檢測TMZ含量并計(jì)算LE[19]。本研究中TMZ@ZIF-8 NPs的LE并不算高,這可能與有機(jī)金屬框架的空間占位和載體孔徑與藥物的匹配度有關(guān),其他藥物也表現(xiàn)出相似的LE情況,如合成的NZIF-8 NPs對慶大霉素的LE為19%[5],布洛芬的LE為30%[20]等。
在評價(jià)TMZ@ZIF-8 NPs的體外累積釋放行為時(shí),盡管因?yàn)門MZ在pH>7時(shí)分解,無法模擬TMZ@ZIF-8 NPs在生理?xiàng)l件下的釋放行為。但有研究表明,ZIF-NPs在酸性條件下能夠以高度可控的方式釋放藥物,這是由于酸性環(huán)境會減弱骨架對藥物的限制,所以藥物釋放速度會隨著pH的降低而增加[21]。另有報(bào)道稱,負(fù)載在ZIF-8外殼上的藥物在腫瘤的酸性環(huán)境中被分解,引起藥物的爆發(fā)性釋放效應(yīng);然后處于ZIF-8核心的藥物連續(xù)釋放,表現(xiàn)出序貫給藥的特征[22]。本研究的釋放行為符合這種特征,實(shí)驗(yàn)結(jié)果的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均在5.00%內(nèi),故該研究顯示了良好的重復(fù)性,清楚地表明在體外條件下TMZ@ZIF-8 NPs中TMZ的釋放行為。
單獨(dú)服用TMZ后,可能會出現(xiàn)皮膚不良反應(yīng)、骨髓毒性及生殖毒性[23],通過ZIF-8 NPs搭載TMZ,利用ZIF-8 NPs對pH敏感,在腫瘤微酸環(huán)境中ZIF-8 NPs骨架瓦解,釋放TMZ,而在正常組織中ZIF-8 NPs置留藥物,以此提高TMZ的靶向功能,增加其在病灶的富集率,提高其有效利用率,減少對其他臟器的毒性。盡管TMZ@ZIF-8 NPs沒有獲得一個(gè)高載藥的效果,但是從細(xì)胞攝取實(shí)驗(yàn)可看出TMZ@ZIF-8 NPs通過其他方式進(jìn)行了藥效補(bǔ)償和提高,即游離的TMZ是通過被動擴(kuò)散進(jìn)入細(xì)胞中的,而ZIF-8 NPs可通過吞噬作用使更多的藥物進(jìn)入靶細(xì)胞內(nèi)[24]。進(jìn)入途徑推測為C6細(xì)胞的胞飲作用,這與文獻(xiàn)記載一致[25]。TMZ@ZIF-8 NPs屬于極性分子,不能通過細(xì)胞膜擴(kuò)散進(jìn)入細(xì)胞,而是通過細(xì)胞吞噬途徑進(jìn)入細(xì)胞[26]。吞噬又分為胞吞作用和胞飲作用。與胞吞作用相比,胞飲作用更為普遍,更傾向于攝取小尺寸物質(zhì),如100 nm及以下的納米載體[27]。TMZ@ZIF-8 NPs通過C6細(xì)胞的胞飲作用被攝取進(jìn)入細(xì)胞后,與溶酶體融合,在酸性條件下分解,從而釋放藥物。相對地,在生理?xiàng)l件下ZIF-8 NPs作為屏蔽層使藥物免受機(jī)體分解,因此還可以彌補(bǔ)TMZ半衰期短的自身缺陷。
據(jù)報(bào)道,有研究員將抗癌藥物D-α-生育酚琥珀酸酯(D-α-tocopherol succinate,α-TOS)裝載入ZIF-8,然后將透明質(zhì)酸(hyaluronic acid ,HA)與ZIF-8耦合,得到HA/α-TOS@ZIF-8藥物遞送系統(tǒng),HA/α-TOS@ZIF-8被癌細(xì)胞吞噬,在腫瘤微環(huán)境中的HA可以分解其外層,然后暴露的α-TOS@ZIF-8會在酸性條件下迅速降解,釋放出藥物α-TOS用于治療腫瘤[28]。因此,將TMZ負(fù)載于ZIF-8 NPs上形成TMZ@ZIF-8 NPs,有望成為一種有效的抗癌劑。
綜上所述,ZIF-8 NPs可有效負(fù)載TMZ,制備成功的TMZ@ZIF-8可提高TMZ攝取能力及抗腦膠質(zhì)瘤效果。