鮑捷,代藝偉,陳映羲,梁會(huì)朋,林心萍,張素芳*
(1.大連工業(yè)大學(xué)國(guó)家海洋食品工程技術(shù)研究中心,遼寧大連 116034;2.大連工業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧大連 116034)
大豆作為世界重要糧食作物,富含多種營(yíng)養(yǎng)和人體所需物質(zhì),包括蛋白質(zhì)、油脂[1?2]、維生素[3]常見(jiàn)物質(zhì),以及異黃酮、酚類(lèi)[2,4]、萜類(lèi)[5]等次生代謝產(chǎn)物。大豆中天然存在的異黃酮多為糖苷型異黃酮(soybean isofla?vone glycoside,SIG),人體吸收利用率較差,其可通過(guò)腸道微生物產(chǎn)生的β?葡萄糖苷酶水解為配基型異黃酮(soybean isoflavone aglycones,SIA),能夠被人體更好地吸收利用[6]。有許多研究已經(jīng)證明,通過(guò)添加產(chǎn)β?葡萄糖苷酶的微生物對(duì)豆?jié){進(jìn)行發(fā)酵,可以提高豆?jié){中配基型異黃酮的含量[7]。此外,微生物發(fā)酵作為傳統(tǒng)加工工藝,在實(shí)際發(fā)酵體系中,因?yàn)槲⑸锂a(chǎn)生的酶系復(fù)雜,會(huì)有多種代謝產(chǎn)物生成,對(duì)營(yíng)養(yǎng)提升和有害物質(zhì)的代謝有著極佳處理效果,為發(fā)酵食品提供更高價(jià)值。
為了研究產(chǎn)β?葡萄糖苷酶的菌株在發(fā)酵豆?jié){時(shí)菌株的代謝行為和豆?jié){營(yíng)養(yǎng)成分的變化,本文選取一株前期篩選到的產(chǎn)β?葡萄糖苷酶的植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){,測(cè)定發(fā)酵前后豆?jié){中大豆異黃酮種類(lèi)和含量;并進(jìn)行非靶向代謝組學(xué)分析,利用液相色譜四極桿串聯(lián)飛行時(shí)間質(zhì)譜儀(liquid chromatograph?quadru?pole?time of flight,LC?QTOF),通過(guò)主成分分析(princi?pal component analysis,PCA)、正交偏最小二乘判別分析(orthogonal projections to latent structures?discriminant analysis,OPLS?DA)等方法,分析發(fā)酵前后豆?jié){中SIG 的代謝,并確定主要代謝通路。同時(shí),解析植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){中除異黃酮外,其他營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)或有害物質(zhì)的含量變化,以整體評(píng)價(jià)植物乳植桿菌c4?3 代謝行為。
1.1.1 材料與試劑
產(chǎn)β?葡萄糖苷酶的植物乳植桿菌c4?3(Lactiplan?tibacillusplantarumc4?3):大連工業(yè)大學(xué)中國(guó)海洋食品研發(fā)中心;大豆:市售;MRS 肉湯培養(yǎng)基、瓊脂粉:青島高科技工業(yè)園海博生物技術(shù)有限公司;甲醇(色譜純)、乙腈(色譜純)、甲酸(色譜純)、大豆苷元(≥98%)、大豆苷、金雀異黃酮(≥98%)、染料木素:上海麥克林生化科技有限公司;甲醇(色譜純):斯百全化學(xué)(上海)有限公司;L?2?氯苯丙氨酸(≥98%):上海阿拉丁生化科技股份有限公司;冰乙酸(色譜純):生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.1.2 儀器與設(shè)備
pH 計(jì)(多參數(shù)測(cè)試儀S400?B):梅特勒?托利多儀器(上海)有限公司;高效液相色譜儀(Agilent 1260 In?finity)、Acquity UPLC HSS T3 色譜柱(1.8μm,2.1 mm×100 mm):安捷倫(美國(guó))科技有限公司;超高效液相色譜儀(ACQUITY UPLC I?Class)、高分辨質(zhì)譜儀(UPLC Xevo G2?XS QTOF):沃特世科技有限公司。
1.2.1 發(fā)酵豆?jié){的制備
挑取植物乳植桿菌c4?3 單菌落接種于MRS 液體培養(yǎng)基,培養(yǎng)至OD600=0.6。取200 g 已浸泡10 h 的大豆,加水至1 000 mL,豆?jié){機(jī)研磨破碎后,采用60 目篩過(guò)濾豆?jié){,121 ℃滅菌15 min,分裝于50 mL 離心管中,每管分裝5 mL。按照1%接種量,將活化好的菌株接種于豆?jié){,37 ℃、200 r/min 培養(yǎng)12 h,得到發(fā)酵豆?jié){。
1.2.2 發(fā)酵豆?jié){的產(chǎn)酸速率測(cè)定
在豆?jié){發(fā)酵2、4、6、8、10、12 h 時(shí),分別用pH 計(jì)和酸堿滴定法測(cè)量pH 值和滴定酸度,表征產(chǎn)酸速率。
1.2.3 發(fā)酵豆?jié){異黃酮含量測(cè)定
取15 mL 發(fā)酵豆?jié){在-80 ℃預(yù)凍12 h,再凍干72 h。參考Rostagno 等[8]的方法提取異黃酮,取0.5 g 凍干豆?jié){,加入15 mL 50%乙醇溶液,超聲2 h 后,8 000 r/min離心30 min,取上清液,0.22μm 濾膜過(guò)濾。
參考Wu 等[9]的高效液相色譜法測(cè)定異黃酮含量。選取常見(jiàn)的4 種異黃酮進(jìn)行測(cè)定,包括屬于SIG 的大豆苷和染料木素,以及屬于SIA 的金雀異黃酮和大豆苷元。通過(guò)添加內(nèi)標(biāo)確定出峰時(shí)間,并根據(jù)標(biāo)品所得回歸方程換算樣品中4 種異黃酮含量。
1.2.4 發(fā)酵豆?jié){的可溶性蛋白含量測(cè)定
參考吳成[10]的方法,繪制可溶性蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線y=2.114x+0.560 7(R2=0.999),并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算豆?jié){中可溶蛋白含量。
1.2.5 發(fā)酵豆?jié){氨基態(tài)氮含量測(cè)定
參考徐鑫等[11]的方法測(cè)定發(fā)酵豆?jié){的氨基態(tài)氮含量。取發(fā)酵豆?jié){1.25 mL,定容于25 mL 容量瓶,測(cè)量用去離子水作空白對(duì)照,甲醛滴定法測(cè)定發(fā)酵豆?jié){的氨基態(tài)氮含量,記錄使用NaOH 標(biāo)準(zhǔn)溶液的體積,氨基態(tài)氮含量計(jì)算公式如下。
式中:X為氨基態(tài)氮含量,g/100 mL;V為樣品滴定消耗氫氧化鈉體積,mL;V0為空白樣品消耗氫氧化鈉體積,mL;N為NaOH 標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度,0.1 mol/L;0.014為氮的毫克當(dāng)量。
1.2.6 發(fā)酵豆?jié){的持水力測(cè)定
參考Wang 等[12]的方法測(cè)定發(fā)酵豆?jié){持水力,計(jì)算公式如下。
式中:W為發(fā)酵豆?jié){持水力,%;W1為離心后樣品的質(zhì)量,g;W2為離心前樣品的質(zhì)量,g。
1.2.7 發(fā)酵豆?jié){的抗氧化能力測(cè)定
抗氧化能力的測(cè)定采用1,1?二苯基?2?三硝基苯肼(1,1?diphenyl?2?picrylhydrazyl,DPPH)法和2,2?聯(lián)氮?二(3?乙基?苯并噻唑?6?磺酸)二銨鹽[2′?azinobis?(3?ethylbenzthiazoline?6?sulphonate),ABTS]法測(cè)定。
1.2.7.1 DPPH 自由基清除率的測(cè)定
分別取2 mL 發(fā)酵后的豆?jié){,在10 000 r/min 條件下離心10 min。取1 mL 離心上清液,超純水稀釋4 倍,參考鄭茵[13]的方法測(cè)定DPPH 自由基清除率,計(jì)算公式如下。
式中:Y為DPPH 自由基清除率,%;Ai為1 mL DPPH+1 mL 樣品的吸光度;Aj為1 mL 蒸餾水+1 mL 樣品的吸光度;Ac為1 mL DPPH+1 mL 蒸餾水的吸光度。
1.2.7.2 ABTS+自由基清除率的測(cè)定
分別取2 mL 豆?jié){,在10 000 r/min 條件下離心10 min,取1 mL 離心上清液,超純水稀釋10 倍,參考鄭茵[13]的方法測(cè)定ABTS+自由基清除率,計(jì)算公式如下。
式中:N為ABTS+自由基清除率,%;AS為樣品的吸光度;AC為對(duì)照品的吸光度。
1.2.8 發(fā)酵豆?jié){的總酚含量測(cè)定
參考李穎等[14]的方法,繪制沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到y(tǒng)=0.250 5x-0.202,并根據(jù)標(biāo)曲計(jì)算發(fā)酵豆?jié){中的總酚含量。
1.2.9 發(fā)酵豆?jié){代謝組測(cè)定
選用L?2?氯苯丙氨酸作為內(nèi)標(biāo),參考Dunn 等[15]、Want 等[16]的方法并稍作修改。量取100 μL 發(fā)酵豆?jié){,加入500 μL 含有內(nèi)標(biāo)的提取液,渦旋混勻30 s。之后置于冰水浴下超聲10 min。采用超高效液相色譜串聯(lián)高分辨質(zhì)譜儀測(cè)定,進(jìn)樣體積為1 μL,其余條件參考Wang 等[17]的方法。
1)β?葡萄糖苷酶及大豆異黃酮的數(shù)據(jù)分析使用Origin 2019b 軟件。GraphPad Prism 9.0.0.121 軟件用于分析差異以計(jì)算p值。采用生物學(xué)重復(fù)進(jìn)行,所有試驗(yàn)完成3 個(gè)平行,數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。使用單因素方差分析和鄧肯多范圍檢驗(yàn)確定平均值的顯著差異。2)代謝組學(xué)試驗(yàn)使用UHPLC/QTOF?MS 進(jìn)行原始數(shù)據(jù)導(dǎo)出及收集。3)代謝組學(xué)數(shù)據(jù)預(yù)處理:將數(shù)據(jù)導(dǎo)入Progenesis QI 軟件做峰提取、峰對(duì)齊等數(shù)據(jù)處理操作,計(jì)算峰強(qiáng)度,精確質(zhì)量和保留時(shí)間,基于Progen?esis QI 軟件在線METLIN 數(shù)據(jù)庫(kù)、公共數(shù)據(jù)庫(kù)以及百邁客自建庫(kù)進(jìn)行鑒定,同時(shí)進(jìn)行理論碎片識(shí)別,母離子質(zhì)量數(shù)偏差100 ppm、碎片離子質(zhì)量數(shù)偏差50 ppm 以內(nèi)[17]。4)將編輯后的代謝組數(shù)據(jù)矩陣導(dǎo)入軟件,進(jìn)行多元統(tǒng)計(jì)分析處理,相關(guān)軟件見(jiàn)表1。
表1 數(shù)據(jù)分析軟件Table 1 Data analysis software
5)尋找差異性表達(dá)代謝物:結(jié)合單變量統(tǒng)計(jì)分析和多元統(tǒng)計(jì)分析的方法,并根據(jù)數(shù)據(jù)特性從多角度分析,最終準(zhǔn)確挖掘差異代謝物?;贠PLS?DA 結(jié)果,使用R2Y 和Q2 兩個(gè)參數(shù)用來(lái)評(píng)價(jià)模型的預(yù)測(cè)能力,獲得的多變量分析OPLS?DA 模型的變量重要性投影(variable importance in projection,VIP),VIP>1 且p<0.05 的化合物進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。6)通路分析:將這些潛在生物標(biāo)記物輸入KEGG 數(shù)據(jù)庫(kù)(http://www.kegg.com/)進(jìn)行匹配,運(yùn)用通路富集分析并計(jì)算富集因子,尋找顯著性代謝通路。
發(fā)酵豆?jié){產(chǎn)酸及異黃酮變化見(jiàn)圖1。
圖1 發(fā)酵豆?jié){產(chǎn)酸及異黃酮變化Fig.1 Changes in acid production and isoflavones in fermented soymilk
由圖1a 可知,在產(chǎn)酸方面,未發(fā)酵豆?jié){在12 h內(nèi),pH 值與滴定酸度基本不變,pH 值保持在6.5 左右,滴定酸度保持在2.0°T 左右。發(fā)酵后pH 值明顯降低,在發(fā)酵12 h 時(shí)降至4.4;滴定酸度明顯升高,在發(fā)酵10 h 時(shí)增加至4.6°T,不過(guò)在10~12 h 時(shí)略有下降,下降至4.3°T。pH 值的降低與滴定酸度的升高,是因?yàn)榫暝诎l(fā)酵豆?jié){時(shí)產(chǎn)生大量有機(jī)酸,且隨著時(shí)間延長(zhǎng),含量逐漸增加。但發(fā)酵后期滴定酸度的下降,是因?yàn)殡S著發(fā)酵時(shí)間延長(zhǎng),乳酸菌活力降低、產(chǎn)酸速率降低,有機(jī)酸被代謝。
由圖1b 可知,在異黃酮含量變化方面,豆?jié){經(jīng)植物乳植桿菌c4?3 發(fā)酵后SIG(大豆苷、染料木素)的含量明顯下降,大豆苷含量從41.86 mg/L 減少至2.10 mg/L,轉(zhuǎn)化率為94.98%;染料木苷含量從100.35 mg/L 減少至3.17 mg/L,轉(zhuǎn)化率為96.84%。SIA(大豆苷元、金雀異黃酮)含量明顯上升,金雀異黃酮從9.68 mg/L 增加至26.61 mg/L;大豆苷元從13.93 mg/L 增加至68.43 mg/L。這是因?yàn)橹参锶橹矖U菌c4?3 在發(fā)酵時(shí)能夠產(chǎn)生β?葡萄糖苷酶,能夠?qū)l(fā)酵豆?jié){中的SIG 水解為SIA。Das等[7]發(fā)現(xiàn)鼠李糖乳桿菌也可將發(fā)酵豆?jié){中的SIG 轉(zhuǎn)化為SIA,其中大豆苷轉(zhuǎn)化率為55.43%,染料木苷轉(zhuǎn)化率為72.30%;Feng 等[18]采用植物乳植桿菌處理豆?jié){,發(fā)現(xiàn)處理后的豆?jié){大豆苷轉(zhuǎn)化率為64.58%,染料木苷轉(zhuǎn)化率為74.43%,低于本研究的植物乳植桿菌c4?3。
豆?jié){發(fā)酵后理化性質(zhì)變化見(jiàn)表2。
表2 豆?jié){發(fā)酵前后理化性質(zhì)Table 2 Physical and chemical properties of soymilk before and after fermentation
由表2 可知,豆?jié){發(fā)酵后可溶性蛋白含量顯著下降,影響可溶性蛋白含量的因素包括蛋白質(zhì)的變性和蛋白的水解。氨基態(tài)氮是判斷蛋白水解度的重要指標(biāo)。氨基態(tài)氮含量在發(fā)酵前后無(wú)顯著差異,說(shuō)明可溶性蛋白含量的下降不是蛋白水解導(dǎo)致的。
持水力是決定發(fā)酵豆?jié){品質(zhì)的重要指標(biāo),影響發(fā)酵豆?jié){持水力的因素包括發(fā)酵豆?jié){的氨基酸組成、蛋白質(zhì)構(gòu)象、類(lèi)型和數(shù)量、發(fā)酵產(chǎn)酸量、發(fā)酵代謝物等。隨著豆?jié){發(fā)酵,酸大量積累,大豆蛋白變性,發(fā)生沉淀,可溶蛋白的含量顯著減少,持水力顯著增加。
豆?jié){發(fā)酵前后總酚含量和抗氧化活性無(wú)顯著變化,總黃酮含量減少,這與Asmaa 等[19]的研究結(jié)果類(lèi)似。目前關(guān)于發(fā)酵前后豆?jié){抗氧化活性的變化結(jié)論有兩種,一些研究發(fā)現(xiàn)豆?jié){發(fā)酵后總酚含量、總黃酮含量、抗氧化能力均增加,并認(rèn)為大豆的抗氧化活性大多與酚類(lèi)物質(zhì)呈正相關(guān)[20];而一些研究發(fā)現(xiàn),發(fā)酵后黃酮、總酚含量降低,抗氧化能力依舊顯著增加[21]。這是因?yàn)榇蠖怪械亩喾宇?lèi)抗氧化劑主要有異黃酮、綠原酸異構(gòu)體、咖啡酸和阿魏酸,這些化合物主要以糖苷的形式出現(xiàn)。而抗氧化能力與抗氧化物質(zhì)羥基化程度和羥基位置有關(guān)[22],SIA 的抗氧化活性高于SIG。因此,本文雖因微生物生物轉(zhuǎn)化導(dǎo)致總黃酮減少,但因?yàn)镾IA含量升高,抗氧化活性并未發(fā)生顯著變化。
將植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){與未發(fā)酵豆?jié){進(jìn)行PCA 分析和OPLS?DA 分析,結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 發(fā)酵豆?jié){PCA 及OPLS?DA 分析Fig.2 Principal component analysis and orthogonal partial least squares?discriminant analysis of fermented soymilk
R2Y 和Q2Y 越接近于1 時(shí)表示模型越穩(wěn)定可靠,由圖2 可知,所建模型均可靠。
為進(jìn)一步討論豆?jié){發(fā)酵前后代謝組的差異,利用clusterProfiler 選用超幾何檢驗(yàn)的方法對(duì)差異代謝物京都基因與基因組百科全書(shū)(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)的注釋結(jié)果進(jìn)行富集分析,富集后選取通路中注釋到差異代謝物最多的前20條代謝通路,繪制富集柱形圖。計(jì)算20 條通路上的富集因子,繪制差異代謝物KEGG 富集因子氣泡圖,其中富集因子越大,表示差異代謝物在該通路的富集顯著性越可靠。根據(jù)富集因子確定5條主要代謝途徑,并繪制差異代謝物KEGG 富集網(wǎng)絡(luò)圖,具體結(jié)果見(jiàn)圖3~圖4。豆?jié){發(fā)酵前后代謝物變化見(jiàn)表3。
圖3 豆?jié){發(fā)酵前后差異代謝物分析Fig.3 Differential metabolites in soymilk before and after fermentation
圖4 發(fā)酵豆?jié){主要代謝途徑Fig.4 Main metabolic pathway of fermented soymilk
表3 豆?jié){發(fā)酵前后代謝物變化Table 3 Changes of metabolite in soymilk before and after fer?mentation
莽草酸代謝途徑廣泛存在于植物、真菌和微生物中,主要用于合成芳香化合物,為許多代謝途徑提供前體物質(zhì),與類(lèi)黃酮生物合成有關(guān)。由表3 可知,豆?jié){經(jīng)過(guò)發(fā)酵,莽草酸含量由2 697.57 mg/L 減少至2 254.68 mg/L。這可能是發(fā)酵時(shí)微生物產(chǎn)生復(fù)雜酶系,使莽草酸轉(zhuǎn)變?yōu)榉种幔蠼?jīng)預(yù)苯酸進(jìn)一步生成苯丙氨酸和酪氨酸。苯丙氨酸脫氨后可形成肉桂酸,進(jìn)而轉(zhuǎn)化為咖啡酸和查爾酮類(lèi)物質(zhì),再通過(guò)類(lèi)黃酮生物合成途徑生成黃酮類(lèi)物質(zhì)。
許銀彪等[23]對(duì)莽草酸途徑代謝節(jié)點(diǎn)進(jìn)行挖掘,證明其與酪氨酸的合成有關(guān),在發(fā)酵時(shí)添加5 g/L 莽草酸,可將菌株HGPA 與HGPAK 的酪氨酸合成量從1 200 mg/L,分別提升至1 311 mg/L 和1 490 mg/L。張妍等[24]在用乳酸菌發(fā)酵玉米汁時(shí),同樣發(fā)現(xiàn)苯丙類(lèi)化合物和黃酮類(lèi)化合物發(fā)生了變化??Х纫虼x與嘌呤代謝有關(guān),咖啡因在酶的作用下可轉(zhuǎn)化為可可堿,豆?jié){中可可堿含量在發(fā)酵后從1 524.58 mg/L 增加至1 732.17 mg/L;可可堿可進(jìn)一步轉(zhuǎn)化為甲基嘌呤,豆?jié){中甲基嘌呤含量在發(fā)酵后從2 075.42 mg/L 增加至2 662.90 mg/L;最終甲基嘌呤生成黃嘌呤,進(jìn)入嘌呤代謝。豆?jié){發(fā)酵后黃嘌呤的前體物質(zhì)均上升,但黃嘌呤含量反而下降,含量從2 441.26 mg/L 減少至1 547.69 mg/L,這可能是植物乳植桿菌c4?3 在發(fā)酵時(shí)產(chǎn)生有關(guān)嘌呤降解的酶所致(圖4b)。
根據(jù)OPLS?DA 得分圖,取VIP>1 且p<0.05 的化合物作為差異代謝物,從營(yíng)養(yǎng)方面考慮,選取與黃酮、氨基酸、嘌呤、維生素有關(guān)的差異代謝物進(jìn)行分析,并與數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì),作為潛在生物標(biāo)記物,并參考KEGG Pathway map 繪制代謝通路圖,具體結(jié)果見(jiàn)圖5。
圖5 植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){代謝Fig.5 Metabolism of soymilk fermented with Lactiplantibacillus plantarum c4?3
由圖5a 可知,植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){與未發(fā)酵豆?jié){相比,在β?葡萄糖苷酶的影響下,兒茶素的含量從72.69 mg/L 增加至1 389.50 mg/L。此外,通路上一些代謝差異物的含量變化,可能不是β?葡萄糖苷酶作用的結(jié)果,如高良姜素的含量從9 224.13 mg/L 增加至18 716.58 mg/L;槲皮素?3?硫酸鹽和二氫山奈酚分別從66.58、465.25 mg/L 增加至561.43、892.81 mg/L。
嘌呤的代謝可以總結(jié)為兩個(gè)關(guān)鍵步驟,首先是次黃嘌呤核苷酸(inosine monophosphate,IMP)的合成,合成的IMP 不會(huì)在細(xì)胞內(nèi)堆積,會(huì)迅速進(jìn)行下一步轉(zhuǎn)換,轉(zhuǎn)換為腺嘌呤核苷酸(adenosine monophosphate,AMP)和鳥(niǎo)嘌呤核苷酸(guanosine monophosphate,GMP)。AMP 和GMP 進(jìn)一步反應(yīng),變?yōu)榇蠖怪泻枯^高的4 種嘌呤。在人體內(nèi),4 種嘌呤會(huì)代謝為尿酸,危害人體健康。豆?jié){發(fā)酵后,IMP 合成通路上的中間物質(zhì)均有升高,但4 種嘌呤總量反而減少了836.08 mg/L,且嘌呤代謝產(chǎn)物尿囊素和尿囊酸的含量增加,分別從77.63 mg/L和876.07 mg/L 變?yōu)?48.54 mg/L 和1 025.81 mg/L。這或許是因?yàn)橹参锶橹矖U菌c4?3 能夠產(chǎn)生尿酸氧化酶,在尿酸氧化酶的作用下尿酸能夠分解成尿囊素,尿囊素進(jìn)一步水解生成尿囊酸(圖5b)。與尿酸不同,尿囊素和尿囊酸在水中溶解度高,很容易排除出。谷巍等[25]也發(fā)現(xiàn)能夠產(chǎn)尿酸氧化酶的乳酸菌,并將其應(yīng)用于畜牧業(yè)。
發(fā)酵豆?jié){有關(guān)氨基酸代謝主要涉及18 種氨基酸代謝變化,這些代謝離不開(kāi)酶的產(chǎn)生,說(shuō)明植物乳植桿菌c4?3 在發(fā)酵豆?jié){時(shí)產(chǎn)生了復(fù)雜的酶系。在有關(guān)氨基酸代謝的差異通路中,發(fā)現(xiàn)γ?氨基丁酸(γ?aminobu?tyric acid,GABA)和高肌肽(homocarnosine)的存在。其中,γ?氨基丁酸從220.88 mg/L 上升至318.14 mg/L,而高肌肽從1 069.94 mg/L 上升至1 568.42 mg/L。γ?氨基丁酸是哺乳動(dòng)物中樞神經(jīng)系統(tǒng)中的重要抑制性神經(jīng)遞質(zhì),在自然界中分布廣泛,且微生物是目前γ?氨基丁酸的主要來(lái)源。谷氨酸脫羧酶(glutamate decarbox?ylase,GAD)是γ?氨基丁酸合成的關(guān)鍵酶,Liu 等[26]發(fā)現(xiàn)了幾株高產(chǎn)γ?氨基丁酸的乳酸菌,并研究在不同條件下,谷氨酸脫羧酶對(duì)γ?氨基丁酸轉(zhuǎn)化率的影響。高肌肽是γ?氨基丁酸和組氨酸的二肽,具有抗驚厥作用,還可以抗氧化、抗炎、防止DNA 損傷和抑制晚期糖基化的終產(chǎn)物形成[27]。
除了對(duì)上述比較完整的代謝通路進(jìn)行關(guān)注外,還發(fā)現(xiàn)磷酸吡哆醇(pyridoxine phosphate)、吡哆醇(pyri?doxal)的含量明顯增加,分別從152.97 mg/L 和無(wú)信號(hào)峰增加至310.12 mg/L 和127.62 mg/L,這兩種物質(zhì)都是維生素B6(vitamin B6)的存在形式。維生素B6在醫(yī)療健康領(lǐng)域有極大貢獻(xiàn),如預(yù)防骨質(zhì)疏松、預(yù)防心血管疾病等[28]。當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)攝入量較高時(shí),維生素B6的需求量可能會(huì)增加,這是因?yàn)榫S生素B6是人體內(nèi)某些輔酶的組成成分,參與多種代謝反應(yīng),尤其與氨基酸代謝有密切關(guān)系[29]。例如在γ?氨基丁酸生產(chǎn)中,維生素B6會(huì)作為輔酶,發(fā)揮重要作用[30]。
本文對(duì)植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){的產(chǎn)酸速率、基礎(chǔ)理化性質(zhì)、發(fā)酵前后異黃酮組分及含量變化、其它營(yíng)養(yǎng)成分進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)經(jīng)豆?jié){發(fā)酵后pH 值明顯下降,在發(fā)酵12 h 時(shí)降至4.4;滴定酸度明顯升高,在發(fā)酵10 h 時(shí)達(dá)到峰值4.6°T,這主要是由發(fā)酵產(chǎn)生的乳酸所致,有助于豆?jié){的儲(chǔ)存。在植物乳植桿菌c4?3 作用下,發(fā)酵豆?jié){中的SIG 被大量轉(zhuǎn)化,其中大豆苷轉(zhuǎn)化率為94.98%,染料木素轉(zhuǎn)化率為96.84%;SIA 含量明顯增加,金雀異黃酮含量提升了1.75 倍,大豆苷元含量提升了3.91 倍,說(shuō)明植物乳植桿菌c4?3 產(chǎn)生的β?葡萄糖苷酶能夠有效水解SIG,使其轉(zhuǎn)化為人體吸收利用率更好的SIA。
通過(guò)對(duì)植物乳植桿菌c4?3發(fā)酵豆?jié){的非靶向代謝組學(xué)分析發(fā)現(xiàn),發(fā)酵涉及5 條主要代謝通路,分別為莽草酸途徑、咖啡因代謝、類(lèi)黃酮生物合成、嘌呤代謝和產(chǎn)熱作用。豆?jié){發(fā)酵后不止異黃酮含量發(fā)生變化,γ?氨基丁酸的含量也上調(diào)了44.03%,兒茶素、磷酸吡哆醇的含量分別上調(diào)了18.12 倍和1.03 倍。且植物乳植桿菌c4?3 在發(fā)酵時(shí)可能產(chǎn)生了有關(guān)嘌呤代謝的酶系,在嘌呤前體物增加的情況下,嘌呤總量反而減少了33.07%,主要是代謝生成了尿囊素和尿囊酸,這將降低因嘌呤攝入過(guò)多發(fā)生痛風(fēng)的風(fēng)險(xiǎn)。
上述研究結(jié)果表明,植物乳植桿菌c4?3 是發(fā)酵豆?jié){的優(yōu)良菌株,能夠有效提升豆?jié){的營(yíng)養(yǎng)。本研究對(duì)發(fā)酵豆?jié){的生產(chǎn)具有重要理論與實(shí)踐意義,也為植物乳植桿菌c4?3 的后續(xù)開(kāi)發(fā)利用奠定了基礎(chǔ)。