軒晨礒 牛旭東 淳雨婕 王紹清 王顯艷
作者單位:161006 齊齊哈爾 齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院1基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,2病理學(xué)院
近年來,單細(xì)胞測(cè)序技術(shù),尤其是單細(xì)胞RNA 測(cè)序(single-cell RNA sequencing,scRNA-seq)成為揭示腫瘤細(xì)胞異質(zhì)性的有效手段。然而,scRNA-seq 在單細(xì)胞水平上分析細(xì)胞RNA 表達(dá)的前提是需要把組織解離成單個(gè)細(xì)胞狀態(tài),在這一過程中可能會(huì)丟失其原始的空間信息[1]。空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)結(jié)合組織學(xué)成像和RNA 測(cè)序,定量檢測(cè)基因表達(dá)水平的同時(shí)提供相應(yīng)的空間位置信息,這有助于更好地確定腫瘤異質(zhì)性的來源,揭示其致病機(jī)制、潛在的藥物靶點(diǎn)和新的生物標(biāo)志物[2]。在消化系統(tǒng)腫瘤研究中,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)顯示了一定的應(yīng)用前景。本文就空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)及其在消化系統(tǒng)腫瘤研究中的應(yīng)用進(jìn)展作一綜述。
空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)根據(jù)檢測(cè)原理可分為四大類,包括基于原位雜交(in situ hybridization,ISH)、原位測(cè)序(in situ sequencing,ISS)、激光捕獲顯微切割(laser capture microdissection,LCM)和基于原位捕獲的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)。在ISH 中,來自組織內(nèi)各個(gè)部分(或細(xì)胞)的RNA分子通過與特定標(biāo)記的已知序列的探針雜交,從而獲取靶基因的表達(dá)情況。與初始ISH相比,單分子RNA 熒光原位雜交(single-molecule fluorescence in situ hybridization,smFISH)具有更強(qiáng)、更穩(wěn)健的信號(hào)。順序熒光原位雜交技術(shù)(sequential fluorescence in situ hybridization,seqFISH)、多重抗誤差矯正熒光原位雜交技術(shù)(multiplexed erorr-robust fluorescence in situ hybridization,MERFISH)等提高了檢測(cè)的靶通量。在ISS 中,來自細(xì)胞的RNA 分子直接在其組織環(huán)境中進(jìn)行測(cè)序,雖然大多數(shù)基于ISS 的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)都具有亞細(xì)胞分辨率,但是其發(fā)展仍受靶基因數(shù)量與效率限制;基于LCM 技術(shù)是在顯微鏡下利用激光束切割出識(shí)別的特定組織區(qū)域,但并不適用于批量處理樣品?;谠徊东@技術(shù)是通過捕獲RNA 分子進(jìn)行非原位cDNA 測(cè)序,在保留較高通量的同時(shí)還具有亞微米分辨率等優(yōu)勢(shì)。在消化系統(tǒng)腫瘤中,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)可用于識(shí)別其空間異質(zhì)性和基因表達(dá)譜,以揭示腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)移機(jī)制??臻g轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的原理見圖1[3]。
圖1 常見的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)[3]Fig.1 Common spatial transcriptome techniques[3]
ISH 技術(shù)主要用于定量檢測(cè)組織切片中的核苷酸序列,而在該技術(shù)的基礎(chǔ)上發(fā)展而來的熒光原位雜交(fluorescence in situ hybridization,F(xiàn)ISH)技術(shù)具有更高的安全性、穩(wěn)定性和定位準(zhǔn)確性,而且可獲得基因的表達(dá)信息,目前被廣泛應(yīng)用于細(xì)胞生物學(xué)和基因組學(xué)的研究以及腫瘤學(xué)的臨床診斷[4-6]。其中,smFISH 是最早嶄露頭角的FISH,它采用多個(gè)單鏈熒光標(biāo)記的短DNA 探針與該探針互補(bǔ)的靶RNA 進(jìn)行雜交,通過數(shù)字顯微鏡成像將細(xì)胞中的單個(gè)基因表達(dá)水平可視化[7]。該技術(shù)雖然具有高靈敏度和高分辨率的優(yōu)勢(shì),但受熒光團(tuán)種類限制,檢測(cè)通量和效率較低[8]。為提高smFISH 的檢測(cè)通量,LUBECK 等[9]開發(fā)了順序熒光原位雜交技術(shù),通過將一系列探針與每個(gè)轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行多輪雜交來實(shí)現(xiàn)大通量分析,增加了FISH 信號(hào)強(qiáng)度。然而,隨著雜交次數(shù)的增加,檢測(cè)轉(zhuǎn)錄本數(shù)量增長(zhǎng),耗時(shí)增加,誤差也逐漸增大。由ENG等[10]開發(fā)的seqFISH 技術(shù)利用順序雜交和標(biāo)準(zhǔn)共聚焦顯微鏡成像,縮短了成像時(shí)間并進(jìn)行多重分析糾錯(cuò),提高了檢測(cè)效率和準(zhǔn)確性??紤]到seqFISH 耗時(shí)過長(zhǎng)和誤差較大,CHEN 等[11]提出了一種高度多路復(fù)用的smFISH 成像方法--MERFISH,該技術(shù)通過使用組合標(biāo)記、順序雜交和成像以及兩種不同的錯(cuò)誤魯棒編碼方案,可以在單個(gè)細(xì)胞中鑒定數(shù)千種RNA 的拷貝數(shù)及進(jìn)行空間定位。MERFISH 不僅可通過錯(cuò)誤魯棒編碼方案降低檢測(cè)誤差,控制檢測(cè)成本,而且還可以使用組合標(biāo)記方法縮短多輪雜交的總時(shí)間??傊贗SH 的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)具備高分辨率、大通量檢測(cè)等優(yōu)勢(shì),但仍存在耗時(shí)長(zhǎng)、誤差大、成本昂貴等局限性。
LCM 是一種在顯微鏡下通過顯微操作系統(tǒng)對(duì)所選取的樣本進(jìn)行切割分離并收集應(yīng)用的技術(shù),其工作原理是將激光與倒置的顯微鏡結(jié)合,并通過計(jì)算機(jī)連接,實(shí)現(xiàn)直接可視化分析[12-13]。LCM最重要的優(yōu)點(diǎn)在于高速、高精度及多功能性。然而,由于LCM 存在分析通量較低等局限性,其應(yīng)用范圍受到一定限制[14]。WU 等[15]提出了一種將LCM 與scRNA-seq 相結(jié)合并使用地理位置測(cè)序(Geo-seq)方法來高通量基因表達(dá)以分析精子發(fā)生過程中的特定生殖細(xì)胞。MOOR等[16]通過優(yōu)化LCM-RNA-seq方法提取小腸絨毛上皮特異性標(biāo)志基因,并利用其進(jìn)行單細(xì)胞空間重建以獲取腸細(xì)胞空間位置信息。此外,EZZOUKHRY等[17]將LCM 與質(zhì)譜分析(MS)結(jié)合使用,能夠在少量樣本條件下分析原始亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)從而實(shí)現(xiàn)亞細(xì)胞蛋白質(zhì)組學(xué)分析。以上研究說明,與單LCM 技術(shù)應(yīng)用相比,多技術(shù)聯(lián)用可提高捕獲單個(gè)細(xì)胞的精確度、減少非目標(biāo)組織沾染等局限性,可作為尋找腫瘤早期診斷、預(yù)后及藥物治療靶標(biāo)的潛在工具[18]。
鎖式探針和滾動(dòng)環(huán)擴(kuò)增(rolling circle amplification,RCA)的ISS 方法已被應(yīng)用于不同來源組織切片中基因轉(zhuǎn)錄本的檢測(cè)。該技術(shù)首先使用掛鎖探針以多重方式識(shí)別組織中的mRNA分子,并將其逆轉(zhuǎn)錄為cDNA;接著利用特定的掛鎖探針與cDNA 雜交,在此基礎(chǔ)上通過RCA 步驟生成滾環(huán)產(chǎn)物(rolling circle product,RCP),再通過連接錨定和檢測(cè)探針進(jìn)行測(cè)序,最終實(shí)現(xiàn)對(duì)特定mRNA 分子的檢測(cè)分析[19]。TANG 等[20]在ISS 技術(shù)基礎(chǔ)上開發(fā)了改進(jìn)版原位測(cè)序(improved in situ sequencing,IISS),該方法采用一種新型探測(cè)和條形碼方法結(jié)合先進(jìn)圖像分析進(jìn)行高分辨率空間基因表達(dá)譜研究。IISS 編碼策略雖然可提高信號(hào)強(qiáng)度和原位測(cè)序特異性并保持靶向空間轉(zhuǎn)錄組簡(jiǎn)化分析管道,但是仍可能受熒光團(tuán)數(shù)量及顯微鏡光學(xué)衍射極限等限制。LEE等[21]進(jìn)一步提出了熒光原位測(cè)序(fluorescent in situ sequencing,F(xiàn)ISSEQ)技術(shù),該方法在固定細(xì)胞時(shí)利用脫氧尿嘧啶(dUTP)將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,并經(jīng)過RCA 和測(cè)序處理來實(shí)現(xiàn)對(duì)多種RNA 定位模式非破壞性比較。與LCM 和FISH 相比,F(xiàn)ISSEQ 可以不受所需探針數(shù)量限制且具有更好的靈活性,但存在測(cè)序深度低,會(huì)丟失一些豐度的轉(zhuǎn)錄本,不能提供單個(gè)細(xì)胞RNA完整信息等局限性[22]。GYLLBORG等[23]優(yōu)化了鎖式探針并開發(fā)了基于雜交的技術(shù)(hybridizationbased in situ sequencing,HybISS),相較于鎖式探針,HybISS 方法采用一種新的組合條形碼方法,不僅能更穩(wěn)定地對(duì)樣本進(jìn)行分子檢測(cè),而且其原位空間解析基因表達(dá)的能力也得到了提升,能支持容納更多的基因數(shù)量。LEE等[24]開發(fā)了直接RNA 靶向原位測(cè)序(dRNA-hybridization-based in situ sequencing,dRNA-HybISS)技術(shù),該技術(shù)可直接檢測(cè)RNA 獲取基因序列,從而避免了基于cDNA 的原位測(cè)序所需的逆轉(zhuǎn)錄過程,極大提高其檢測(cè)效率。近年來,利用dRNA-HybISS 的實(shí)驗(yàn)研究仍較少,可能與各實(shí)驗(yàn)室缺乏“即插即用”的儀器和軟件解決方案相關(guān),但其高效優(yōu)勢(shì)可能使其成為未來具有巨大潛力的細(xì)胞分類技術(shù)。
原位捕獲技術(shù)是在原位捕獲轉(zhuǎn)錄本的基礎(chǔ)上進(jìn)行異位測(cè)序,并允許對(duì)完整的轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行無偏分析的一項(xiàng)技術(shù)。2016 年,ST?HL 等[25]開發(fā)了能夠利用引物微陣列對(duì)原位RNA 進(jìn)行分析的基于原位捕獲的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù),通過將組織學(xué)切片定位到具有獨(dú)特位置的引物微陣列芯片的條形碼上,再利用二代測(cè)序技術(shù)對(duì)組織中的RNA 進(jìn)行測(cè)序,可提供具有完整二維位置信息的高質(zhì)量全轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。盡管該法提供了空間分辨率的全轉(zhuǎn)錄組信息,其中每個(gè)捕獲區(qū)域直徑為100μm,含有1 007 個(gè)捕獲點(diǎn),但只能檢測(cè)到10~40 個(gè)細(xì)胞,分辨率仍然較低。10×Genomics 公司收購該技術(shù)并進(jìn)一步改進(jìn)為10×Visium 技術(shù),該技術(shù)的流程主要包括樣本制備、文庫構(gòu)建和測(cè)序三大部分[3]。與ST?HL 等[25]開發(fā)的原位捕獲空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)相比,10×Visium技術(shù)的每個(gè)捕獲區(qū)域直徑雖減小為55μm,但卻含有5 000 個(gè)捕獲點(diǎn),這意味可以檢測(cè)到更多的細(xì)胞,大大提高了空間分辨率和檢測(cè)靈敏度[26]。Slide-seq 是繼ST?HL 等后發(fā)布的第二個(gè)基于原位捕獲和測(cè)序的高通量空間轉(zhuǎn)錄組學(xué)技術(shù)[27]。在該技術(shù)中,RODRIQUES 等[27]將組織切片貼附于直徑為10μm 的磁珠表面,并通過芯片上的磁珠捕獲組織切片中的mRNA,然后再逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,并進(jìn)行建庫和測(cè)序以推斷出RNA 的空間位置信息,從而獲得組織的空間基因表達(dá)圖譜,其靈敏度和分辨率較10×Visium技術(shù)得到很大提高。2019 年,VICKOVIC 等[28]開發(fā)了高清空間轉(zhuǎn)錄組(high definition spatial transcriptomics,HDST),它可以從直徑僅為2 μm 磁珠陣列上的組織切片中捕獲RNA,與Slide-seq技術(shù)相比,HDST具有更高的分辨率和靈敏度,可用于空間分辨基因表達(dá)分析。然而HDST和Slide-seq技術(shù)的分辨率仍比具有亞微米分辨率的光學(xué)顯微鏡低,且需要scRNA-seq 數(shù)據(jù)協(xié)助空間定位細(xì)胞類型[26]??臻g條形碼技術(shù)(spatial barcoding sequencing,Seq-Scope)是基于Illumina 測(cè)序平臺(tái)的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)。該技術(shù)流程主要分為兩輪測(cè)序,首先對(duì)帶有不同條形碼的引物片段固相擴(kuò)增形成簇后,進(jìn)行第一次測(cè)序和成像以獲得引物簇的序列和空間位置信息,然后利用引物簇捕獲組織中的mRNA并進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄后,進(jìn)行第二次測(cè)序得到不同條形碼對(duì)應(yīng)的cDNA 序列信息,最后與第一次得到的位置信息結(jié)合從而獲得組織不同部位細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄組信息。該技術(shù)捕獲的RNA條形碼間的距離為0.5~0.8μm,可實(shí)現(xiàn)亞微米分辨率。Seq-Scope 具有快速、直接、精確且易于實(shí)施等優(yōu)點(diǎn),但其研究只關(guān)注于含有poly-A 的轉(zhuǎn)錄組,尚處于需進(jìn)一步研發(fā)和完善階段[29]。
空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)在識(shí)別肝癌及其微環(huán)境的異質(zhì)性方面發(fā)揮了重要作用,對(duì)其診斷、治療、預(yù)后及分子生物標(biāo)志物分析具有深遠(yuǎn)意義[30]。WU等[31]采用10×Genomics Visium 技術(shù)比較了肝細(xì)胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)患者非腫瘤區(qū)域、邊界區(qū)域及腫瘤區(qū)域的空間腫瘤微環(huán)境特征,發(fā)現(xiàn)具有纖維包膜的腫瘤細(xì)胞在正常組織側(cè)的免疫細(xì)胞富集程度高于腫瘤組織側(cè),而無包膜的腫瘤細(xì)胞邊界兩側(cè)組織內(nèi)的免疫細(xì)胞分布更趨于復(fù)雜多變,這揭示了腫瘤纖維包膜與免疫微環(huán)境的異質(zhì)性關(guān)系。同時(shí),該團(tuán)隊(duì)還發(fā)現(xiàn)了CD47+和PROM1+的腫瘤干細(xì)胞(cancer stem cells,CSC)在HCC 中高度富集并與腫瘤的侵襲和遷移能力增強(qiáng)相關(guān);三級(jí)淋巴結(jié)構(gòu)(tertiary lymphoid structures,TLS)參與抗腫瘤免疫反應(yīng)和潛在的免疫治療反應(yīng),與腫瘤預(yù)后相關(guān)[32]。該團(tuán)隊(duì)將HCC-5的cluster-6中表達(dá)最高的前50 個(gè)基因當(dāng)做一個(gè)新鑒別TLS 的基因集(命名為TLS-50),證實(shí)了TLS-50鑒定的TLS 結(jié)構(gòu)在形態(tài)學(xué)與細(xì)胞構(gòu)成上均與TLS 相符合。為探索TLS-50在HCC 中的臨床意義,該團(tuán)隊(duì)還對(duì)TLS-50 評(píng)分與臨床數(shù)據(jù)進(jìn)行了相關(guān)性分析,發(fā)現(xiàn)TLS-50 的高評(píng)分與腫瘤直徑和巴塞羅那臨床肝癌分期相關(guān),這意味著TLS-50 有望成為預(yù)測(cè)患者預(yù)后的新指標(biāo)。該研究詳細(xì)描述了HCC的空間異質(zhì)性,為臨床肝臟CSC靶向治療提供新的研究方向,以及為在臨床中評(píng)估患者預(yù)后提供了新的指標(biāo)。
HCC 預(yù)后與其病理分型密切相關(guān),其中粗梁-團(tuán)塊型HCC 預(yù)后極差[33]。FENG 等[34]通過單細(xì)胞測(cè)序結(jié)合空間轉(zhuǎn)錄組等技術(shù)手段發(fā)現(xiàn)粗梁-團(tuán)塊型HCC與B 細(xì)胞浸潤(rùn)和免疫球蛋白合成的體液免疫失調(diào)有關(guān)。該研究結(jié)果為基于病理分型的肝癌精準(zhǔn)診療模式的發(fā)展奠定了堅(jiān)實(shí)的理論基礎(chǔ),并為HCC 的臨床診治提供了新思路,具有重要而深遠(yuǎn)的臨床意義。SAVIANO等[35]通過scRNA-seq 和空間轉(zhuǎn)錄組對(duì)小鼠的肝臟分區(qū)進(jìn)行研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)Notch信號(hào)通路是參與人肝纖維化生態(tài)位中細(xì)胞相互作用的中心途徑,進(jìn)一步闡明了腫瘤上皮細(xì)胞與腫瘤微環(huán)境(tumor microenvironment,TME)之間的相互作用。癌癥免疫治療的主要難題之一就是腫瘤免疫微環(huán)境的空間異質(zhì)性。XUE等[36]應(yīng)用10×單細(xì)胞,空間轉(zhuǎn)錄組以及超多色免疫熒光等技術(shù)揭示了肝癌免疫微環(huán)境亞型和中性粒細(xì)胞的異質(zhì)性。該研究利用單細(xì)胞測(cè)序闡明了5 種免疫微環(huán)境亞型的空間分布,結(jié)果提示2 個(gè)中性粒細(xì)胞亞群CCL4+TAN 通過招募腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞和PD-L1+TAN 抑制CD8+T 的免疫功能從而促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng),該研究結(jié)果有望為肝癌的免疫治療提供新的策略??臻g轉(zhuǎn)錄組技術(shù)深度挖掘了肝腫瘤細(xì)胞及其纖維包膜、上皮細(xì)胞與不同免疫細(xì)胞亞群之間的關(guān)系,進(jìn)一步揭示了肝癌及其微環(huán)境的異質(zhì)性,為肝癌的病理分型、靶向治療及預(yù)后評(píng)估提供新的研究方向。
胃癌是我國腫瘤相關(guān)死亡的第三大常見原因[37],術(shù)后高復(fù)發(fā)率是導(dǎo)致其高死亡率的重要原因[38]。胃癌微環(huán)境異質(zhì)性對(duì)晚期患者的預(yù)后和治療起著關(guān)鍵作用[39]??臻g轉(zhuǎn)錄組技術(shù)可保留胃癌細(xì)胞空間信息,進(jìn)一步揭示腫瘤內(nèi)部的微環(huán)境異質(zhì)性,可為其個(gè)體化精準(zhǔn)醫(yī)療和預(yù)后分析提供新的見解。KUMAR等[40]運(yùn)用scRNA-Seq與DSP技術(shù),初步揭示在彌漫型胃癌中,Kruppel樣轉(zhuǎn)錄因子(KLF2)表達(dá)水平上升,且KLF2 的表達(dá)和調(diào)節(jié)與漿細(xì)胞群的塑造密切相關(guān),這為胃癌細(xì)胞亞群的鑒定提供了新的數(shù)據(jù)。此外,該研究還發(fā)現(xiàn)腫瘤成纖維細(xì)胞(CAFs)中INHBA 表達(dá)上調(diào),且CAFs的標(biāo)志物FAP表達(dá)增加;隨著胃癌臨床分期的升高,表達(dá)INHBA 和FAP 的CAFs 亞群數(shù)量也逐步增加,提示在不同CAFs 中INHBA-FAP 的高表達(dá)可能是預(yù)測(cè)胃癌預(yù)后不良的因子。在過去,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的研究主要集中在腫瘤本身,近年來在藥物開發(fā)領(lǐng)域,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的應(yīng)用更直觀地揭示了新型藥物對(duì)胃癌的作用靶點(diǎn)機(jī)制。AKIYAMA等[41]利用Visium空間基因表達(dá)平臺(tái)發(fā)現(xiàn)PDGFRα/β 雙重阻斷可通過靶向逆轉(zhuǎn)免疫抑制微環(huán)境,提高免疫檢查點(diǎn)抑制劑在纖維化胃癌中的療效??臻g轉(zhuǎn)錄組技術(shù)雖在藥物開發(fā)領(lǐng)域報(bào)道較少,但具有可識(shí)別腫瘤細(xì)胞和免疫細(xì)胞基因表達(dá)特征的優(yōu)勢(shì),能為開發(fā)更有效的新型免疫治療藥物提供指導(dǎo)[2]。
空間轉(zhuǎn)錄技術(shù)可保留空間信息,而多技術(shù)聯(lián)合可多維度深入探討腫瘤細(xì)胞及其微環(huán)境的異質(zhì)性[42]。DU等[43]應(yīng)用空間轉(zhuǎn)錄組和scRNA-seq技術(shù)揭示了非萎縮性胃炎(non-atrophic gastritis,NAG)、萎縮性胃炎(atrophic gastritis,AG)到早期胃癌(early gastric cancer,EGC)的免疫微環(huán)境特征。該研究發(fā)現(xiàn),NAG 中的淋巴細(xì)胞聚集面積最大,而AG 和EGC 中的淋巴細(xì)胞聚集面積減小,這表明NAG 的免疫防御功能最強(qiáng)。在此過程中,不同胃狀態(tài)階段的淋巴T 細(xì)胞和B 細(xì)胞的組成和比例也呈現(xiàn)出不同特點(diǎn)。有研究發(fā)現(xiàn),在AG和EGC 階段發(fā)現(xiàn)了NAG 階段中未出現(xiàn)的細(xì)胞毒性T細(xì)胞和耗竭性T 細(xì)胞,說明早期腫瘤進(jìn)展伴隨著免疫反應(yīng)的發(fā)生;而對(duì)于B 細(xì)胞,其數(shù)量和多樣性較少主要與SOX5 的轉(zhuǎn)錄抑制有關(guān)[44]。該研究通過多組學(xué)技術(shù)深入探究了不同胃狀態(tài)免疫微環(huán)境特征,有助于臨床醫(yī)師更好地認(rèn)識(shí)并干預(yù)ECG的進(jìn)展,對(duì)制定個(gè)性化治療方案具有重要意義。
研究表明,胃癌可在營養(yǎng)匱乏的環(huán)境中仍能滿足其生長(zhǎng)和增殖的需求,且其可通過調(diào)控新陳代謝相關(guān)通路實(shí)現(xiàn)免疫逃逸[45]。CHAPMAN 等[46]利用scRNAseq技術(shù)發(fā)現(xiàn)了胃癌TME中基質(zhì)細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄重編程產(chǎn)物腫瘤特異性細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM),而ECM 促進(jìn)癌細(xì)胞的增殖。該研究雖然有助于深入了解胃癌相關(guān)的細(xì)胞轉(zhuǎn)錄調(diào)控重編程,但是無法提供胃癌微環(huán)境中特定細(xì)胞代謝物和脂質(zhì)的空間分布及變化?;诖?,SUN 等[47]利用空間分辨代謝組學(xué)和空間分辨脂質(zhì)組學(xué)以及10×Genomics 的空間轉(zhuǎn)錄組測(cè)序?qū)ξ赴┙M織冷凍切片進(jìn)行分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)精氨酸和脯氨酸在胃癌組織中均表現(xiàn)出高度異質(zhì)性的空間分布,通過下調(diào)精氨酸和脯氨酸合成的ASS1、ALDH18A1 和PYCR 可抑制癌細(xì)胞生長(zhǎng),這為抗癌藥物的開發(fā)提供了新的見解。脂質(zhì)代謝的重編程被認(rèn)為是腫瘤細(xì)胞增殖的標(biāo)志[48]。膽固醇是脂質(zhì)的重要代謝產(chǎn)物。有研究發(fā)現(xiàn)膽固醇合成酶基因HMGCS1和HMGCR以及調(diào)控膽固醇合成途徑的SREBF2基因在腫瘤和淋巴組織中均升高并促進(jìn)膽固醇的合成,而膽固醇在腫瘤微環(huán)境中富集可抑制T 細(xì)胞分化,誘導(dǎo)T細(xì)胞功能衰竭[49]。膽固醇合成在轉(zhuǎn)錄水平上調(diào)可能是免疫細(xì)胞不能有效抑制胃癌生長(zhǎng)的原因之一。該研究通過代謝組學(xué)和脂質(zhì)組學(xué)以及空間轉(zhuǎn)錄組學(xué)等多組學(xué)技術(shù)全面而系統(tǒng)地描繪了胃癌細(xì)胞內(nèi)代謝產(chǎn)物和脂質(zhì)成分在腫瘤微環(huán)境中的空間分布情況,為深入理解腫瘤形成機(jī)制提供了新視角,也為未來開展相關(guān)臨床應(yīng)用奠定了堅(jiān)實(shí)基礎(chǔ)。
腫瘤微環(huán)境中腸道菌群、炎癥及缺氧與結(jié)直腸癌發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[50]??臻g轉(zhuǎn)錄組技術(shù)通過檢測(cè)不同基因標(biāo)志物的表達(dá)以及不同結(jié)直腸癌結(jié)構(gòu)的免疫微環(huán)境,進(jìn)一步闡釋其惡變機(jī)制,能為結(jié)直腸癌靶向藥物開發(fā)與臨床用藥提供新見解。OZATO 等[51]整合單細(xì)胞與空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù),對(duì)結(jié)直腸癌組織的TMEs中各免疫細(xì)胞功能進(jìn)行探索,結(jié)果發(fā)現(xiàn)具有轉(zhuǎn)移性的結(jié)直腸癌細(xì)胞可通過分泌人白細(xì)胞抗原G(HLA-G)將巨噬細(xì)胞轉(zhuǎn)化為分泌型磷蛋白SPP1+巨噬細(xì)胞,而SPP1+巨噬細(xì)胞則通過細(xì)胞因子如IL-10 抑制CD8+T細(xì)胞的免疫活性,進(jìn)而發(fā)揮抑制腫瘤免疫作用,提示腫瘤免疫微環(huán)境參與調(diào)節(jié)結(jié)直腸癌生長(zhǎng)并影響其進(jìn)展。同時(shí),該研究還發(fā)現(xiàn)HLA-G基因敲除可促進(jìn)體內(nèi)腫瘤免疫,SPP1+巨噬細(xì)胞和分泌高水平HLA-G 的癌細(xì)胞可能是治療結(jié)直腸癌的潛在靶點(diǎn)。另一項(xiàng)研究結(jié)合空間DSP 與成像質(zhì)譜流式(IMC)進(jìn)一步揭示CD47-SIRPα 軸可能是結(jié)直腸癌的一個(gè)潛在免疫治療靶點(diǎn)[52]。QI 等[53]利用Visiun 技術(shù)發(fā)現(xiàn)腫瘤特異性FAP+成纖維細(xì)胞和SPP1+巨噬細(xì)胞共表達(dá),其相互作用可能有助于細(xì)胞外基質(zhì)重塑并促成纖維增生微環(huán)境,提示對(duì)共表達(dá)免疫因子進(jìn)行評(píng)估具有積極意義。
結(jié)直腸癌患者長(zhǎng)期生存的主要障礙仍然是肝轉(zhuǎn)移,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)可通過鑒定結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移周邊的TME,進(jìn)而對(duì)腫瘤分期、預(yù)后及抗癌策略進(jìn)行評(píng)價(jià)。WU 等[54]對(duì)24 個(gè)結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移樣本進(jìn)行Visium 和scRNA-seq 測(cè)序,在結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移的空間圖譜基礎(chǔ)上,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)移部位存在高代謝活化的MRC1、CCL18、M2 樣巨噬細(xì)胞,提示這些可能是潛在的靶向治療分子。此外,F(xiàn)AP+成纖維細(xì)胞和SPP1+巨噬細(xì)胞的高浸潤(rùn)也提示與預(yù)后有關(guān)[53]。 WOOD 等[55]發(fā)現(xiàn),相較于預(yù)后不良患者,在長(zhǎng)期幸存的結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移瘤患者中,侵襲組織邊緣主要富集Ⅱ型IFN 信號(hào)傳導(dǎo)和MHC-Ⅱ類抗原呈遞的免疫細(xì)胞群,提示轉(zhuǎn)移瘤的高免疫浸潤(rùn)可能與改善癌癥特異性生存率有關(guān)。WANG 等[56]利用scRNA-seq 和Visium 測(cè)序技術(shù)也發(fā)現(xiàn)CXCL13 T細(xì)胞高浸潤(rùn)的結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移患者預(yù)后良好,與上述研究結(jié)果一致。在結(jié)直腸癌治療領(lǐng)域,WU 等[54]通過觀察NAC 治療后的ECM 重塑,發(fā)現(xiàn)病變進(jìn)展/病變穩(wěn)定(PD/SD)腫瘤和部分緩解(PR)腫瘤NAC后免疫細(xì)胞變化不同。另一項(xiàng)研究[57]借助ST相關(guān)技術(shù)發(fā)現(xiàn),TAM中M0和M1表型參與結(jié)直腸癌炎癥反應(yīng),TAM重分化為M1 表型可作為一種有效的抗癌策略,該研究同時(shí)提出Wnt信號(hào)通路可調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞的促炎或抗炎表型改變。這提示靶向某些TAM 亞群與重編程相結(jié)合可能有益于結(jié)直腸癌治療,為其臨床治療策略提供新思路。
食管癌是源自食管上皮的惡性腫瘤,主要分為食管鱗狀細(xì)胞癌和食管腺癌兩個(gè)亞型。食管鱗狀上皮細(xì)胞癌前病變是食管鱗狀細(xì)胞癌的前體,但由于缺乏相關(guān)分子標(biāo)志物,其是否發(fā)展為食管鱗狀細(xì)胞癌尚不清楚??臻g轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的應(yīng)用有效揭示了食管鱗狀上皮細(xì)胞癌前病變的相關(guān)風(fēng)險(xiǎn)預(yù)測(cè)因子,為食管鱗狀細(xì)胞癌的早期診斷與治療提供便利。LIU 等[58]對(duì)19個(gè)患者樣本進(jìn)行了空間轉(zhuǎn)錄組分析,發(fā)現(xiàn)隨著食管鱗狀細(xì)胞癌的發(fā)展,TAGLN2基因表達(dá)水平顯著增加,而CRNN(Cornulin)通過調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖抑制TAGLN2基因表達(dá),在食管鱗狀上皮細(xì)胞癌前病變中,TAGLN2和CRNN 可作為評(píng)估食管鱗狀細(xì)胞癌發(fā)展的風(fēng)險(xiǎn)候選指標(biāo)。
胰腺癌被稱為“癌中之王”,其中胰腺導(dǎo)管癌是最常見的惡變類型。目前,胰腺癌的診治仍是巨大挑戰(zhàn),雖然免疫療法在多實(shí)體瘤中取得顯著成就,但對(duì)胰腺癌患者尚未取得明顯效果[59]。近年來,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)對(duì)不同條件下的胰腺導(dǎo)管癌中的TME 進(jìn)行了深入探索,為其診療提供了新思路,例如MONCADA等[60]結(jié)合微陣列的空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)和scRNA-seq 技術(shù),對(duì)胰腺不同組織區(qū)域的細(xì)胞亞群進(jìn)行鑒定,發(fā)現(xiàn)胰腺導(dǎo)管癌患者存在4 個(gè)導(dǎo)管細(xì)胞亞群,其中MHC Ⅱ類基因的抗原提呈細(xì)胞通過促進(jìn)T 細(xì)胞活化進(jìn)而對(duì)TME 中的炎癥反應(yīng)進(jìn)行調(diào)節(jié)以緩解胰腺導(dǎo)管癌的應(yīng)激反應(yīng),這可能是延緩胰腺導(dǎo)管癌病程發(fā)展的有效策略之一。缺氧是胰腺導(dǎo)管癌等實(shí)體腫瘤的重要特征,它與腫瘤侵襲、轉(zhuǎn)移和耐藥性有關(guān)[61]。SUN等[62]利用10×Visium 空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)首次闡述了缺氧微環(huán)境誘導(dǎo)胰腺導(dǎo)管癌空間轉(zhuǎn)錄組變化,結(jié)果顯示,相較于對(duì)照組,缺氧組的腫瘤細(xì)胞亞組相應(yīng)減少且在第6亞組的細(xì)胞表現(xiàn)出高增殖力與高侵襲力的特點(diǎn),此外,缺氧基因LDHA表達(dá)增加可激活P13K信號(hào)通路,從而調(diào)節(jié)胰腺導(dǎo)管癌在缺氧條件下的分化、增殖、代謝和應(yīng)激以促進(jìn)其侵襲和轉(zhuǎn)移,這提示P13K抑制劑為治療胰腺癌提供了新的候選藥物,但尚未有驗(yàn)證研究報(bào)道。
空間轉(zhuǎn)錄組學(xué)是用于研究腫瘤及其微環(huán)境異質(zhì)性的前沿技術(shù),在消化系統(tǒng)腫瘤中,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的應(yīng)用不僅可獲取基因表達(dá)的空間特征,揭示腫瘤細(xì)胞異質(zhì)性起源和發(fā)生發(fā)展中的致病機(jī)制、潛在藥物靶點(diǎn)及新的生物標(biāo)志物,還可以探索腫瘤微環(huán)境中不同類型的腫瘤細(xì)胞與免疫細(xì)胞、間質(zhì)成分等相互作用關(guān)系,并準(zhǔn)確定位及鑒別具有特定功能和表型特征的亞群體細(xì)胞,可能是探索腫瘤微環(huán)境異質(zhì)性核心藥物靶點(diǎn)的潛在工具。但是,空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)也存在一些局限性,如空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)在空間分辨率上無法達(dá)到單細(xì)胞水平;獲得的樣本數(shù)據(jù)集可能不夠全面,可能是因?yàn)椴煌较蚝蛯用鎭碓吹那衅嬖诓町?,測(cè)序過程中所選切片中空間轉(zhuǎn)錄組圖譜能否全面覆蓋多種器官及其變化仍有待明確;經(jīng)濟(jì)成本和操作復(fù)雜性等也限制了空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的廣泛應(yīng)用。目前,多組學(xué)技術(shù)聯(lián)合應(yīng)用成為應(yīng)對(duì)空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)局限性的策略,包括空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)與代謝組學(xué)相結(jié)合,以更全面了解腫瘤異常代謝與特定基因表達(dá)程序的關(guān)聯(lián)性;空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)結(jié)合蛋白質(zhì)組學(xué),能了解腫瘤細(xì)胞中基因表達(dá)程序變化,觀察基因編碼蛋白質(zhì)在細(xì)胞內(nèi)部及周圍環(huán)境中分布情況,在涉及腫瘤信號(hào)通路、代謝途徑以及其他重要生物過程等方面也具有顯著優(yōu)勢(shì)。總體而言,目前空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)主要應(yīng)用于基礎(chǔ)研究,在臨床實(shí)踐中尚未推廣,但隨著空間轉(zhuǎn)錄組技術(shù)不斷完善與優(yōu)化,相信其將在腫瘤醫(yī)學(xué)領(lǐng)域方面提供更多的防治手段,發(fā)揮更大作用。