李 婧,于鈞瀧,趙曉東,左 帥,劉其友,張秀霞,2
(1.中國石油大學(xué)(華東) 化學(xué)化工學(xué)院,山東 青島 266580;2.石油石化污染物控制與處理國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 102206)
作業(yè)年限較長的油田井場或石化污染場地不僅石油烴污染嚴(yán)重,有機(jī)氯化合物也大量存在[1],原油中天然存在的有機(jī)氯化物含量一般較少[2],但在采油、煉油過程中因含氯化學(xué)助劑的使用,使得原油有機(jī)氯含量變高[3]。裴芳等[4]對某煉油廠退役場地監(jiān)測結(jié)果表明,該場地石油和氯苯酚類物質(zhì)污染嚴(yán)重,主要分布在儲油罐所在地;葛鋒等[5]調(diào)查分析了東北4個(gè)石化工業(yè)基地,主要污染物有總石油烴(TPHs)、多環(huán)芳烴(PAHs)、氯代烴等。由于石油烴和有機(jī)氯化合物的復(fù)雜性、持久性和致癌、致畸、致突變的“三致”效應(yīng),若不及時(shí)加以處理,環(huán)境問題便隨之而來,甚至?xí)斐商褐禄?、人類致癌、生物中毒等危害[6]。因此,需要采取合適的方法解決石油烴和有機(jī)氯化合物復(fù)合污染問題。
石油烴和有機(jī)氯化合物復(fù)合污染的去除方法有物理法、化學(xué)法和生物法[7-8]。物理修復(fù)法和化學(xué)修復(fù)法可在短時(shí)間內(nèi)有效去除污染物,但往往需要較高的能源消耗和設(shè)備成本。生物法因成本低及環(huán)境友好的特點(diǎn),被譽(yù)為最具有發(fā)展前景的修復(fù)技術(shù)之一。由于石油烴和有機(jī)氯化合物復(fù)合污染對功能微生物具有較強(qiáng)的毒性或抑制性,單一降解菌的降解能力往往比微生物聯(lián)合體要弱,污染物的降解需要多種酶和微生物的參與來完成,且不同微生物對石油烴和有機(jī)氯化合物各組分耐受性存在一定差異[9-10]。因此,構(gòu)建復(fù)合菌群不僅可在復(fù)雜環(huán)境中提高微生物的降解能力,也可使微生物通過“分工協(xié)作”增強(qiáng)降解底物的廣譜性[11]。已有研究者開展了相關(guān)復(fù)合菌群的效果研究,Steliga等[12]構(gòu)建了復(fù)合物菌群M1,通過生物強(qiáng)化作用可在6個(gè)月時(shí)間內(nèi)對多氯聯(lián)苯實(shí)現(xiàn)降解率84.5%,石油烴的降解率可達(dá)到70.8%;黃霞[13]分離的微生物菌群可有效降解石油烴和氯代烴等有機(jī)混合污染物;Zhao等[14]研究表明,復(fù)合菌群中微生物的協(xié)同作用可以增強(qiáng)菌群的穩(wěn)定性和耐受性?;谏鲜鲅芯浚瑯?gòu)建微生物復(fù)合菌群修復(fù)石油-氯酚污染場地這一科學(xué)問題取得一定進(jìn)展,尚需進(jìn)一步探究。
筆者選取氯酚類化合物2,4-二氯苯酚與石油構(gòu)建復(fù)合污染體系,以實(shí)驗(yàn)室篩選的石油烴降解菌和有機(jī)氯降解菌作為實(shí)驗(yàn)菌株構(gòu)建復(fù)合菌群,強(qiáng)化修復(fù)石油-氯酚模擬污染土壤,考察修復(fù)過程中不同菌群對土壤石油及2,4-二氯苯酚降解率、微生物總數(shù)、脫氫酶活性和土壤群落結(jié)構(gòu)的影響,為石油-氯酚復(fù)合污染場地的修復(fù)提供理論支持。
菌株:實(shí)驗(yàn)所用石油烴降解菌S4(糞產(chǎn)堿菌,AlcaligenesfaecailsY5)和S5(芽孢桿菌,Bacillussp.7614)是以某油田污染土壤為菌源、勝利原油為唯一碳源篩選馴化所得土著菌,菌株S4和S5在原油質(zhì)量濃度為2 g/L的無機(jī)鹽原油培養(yǎng)基中,對石油烴的7 d降解率分別為26.46%和37.54%;有機(jī)氯降解菌L3(馬氏芽孢桿菌,Bacillusmarisflavistrain BCB4-1)和L4(水芽孢桿菌,BacillusaquimarisT 172)是以某污水處理廠二沉池活性污泥為菌源、2,4-二氯苯酚為唯一碳源篩選馴化所得,菌株L3、L4在2,4-二氯苯酚質(zhì)量濃度為50 m g/L的無機(jī)鹽培養(yǎng)基中,對2,4-二氯苯酚7 d的降解率分別達(dá)到68.63%、71.84%。菌株S4和S5按體積比3∶2構(gòu)建石油烴降解菌群,菌株L3和L4按體積比為3∶2構(gòu)建有機(jī)氯降解菌群,S4、S5、L3和L4按體積比1∶2∶2∶1構(gòu)建復(fù)合菌群。
培養(yǎng)基:牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基(1 L)成分為牛肉浸膏5.0 g、胰蛋白胨10.0 g、氯化鈉5.0 g,固體培養(yǎng)基添加15.0 g瓊脂粉;孟加拉紅培養(yǎng)基(36.6 g/L),購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;pH值調(diào)至7.0~7.3,在1×105Pa、121 ℃條件下滅菌20 min。
胰蛋白胨、牛肉浸膏、瓊脂粉、氯化鈉、石油醚(60~90 ℃)、石油醚(30~60 ℃)、正己烷、磷酸二氫鉀、硝酸鈉,均為分析純,購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;甲醇、2,4-二氯苯酚(質(zhì)量分?jǐn)?shù)98%),均為色譜純,購自上海麥克林生化科技有限公司。原油來自勝利油田某采油廠,密度(20 ℃)為891 kg/cm3,運(yùn)動(dòng)黏度(50 ℃)為31.05 mm2/s。供試土壤,取自校園內(nèi)綠植土壤,取樣后去除動(dòng)植物殘?bào)w并在自然環(huán)境下風(fēng)干,經(jīng)破碎研磨,過2 mm篩后備用,主要性質(zhì)見表1。
根據(jù)油田污染井場實(shí)際情況,設(shè)置模擬污染土壤中石油烴質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10 g/kg,2,4-二氯苯酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)為500 g/kg。將原油和石油醚(30~60 ℃)按照體積比1∶4進(jìn)行混合,然后按石油烴質(zhì)量分?jǐn)?shù)10 g/kg均勻摻入供試土壤中,自然風(fēng)干7 d至石油醚揮發(fā)完全;然后用磷酸二氫鉀和硝酸鈉調(diào)節(jié)土壤中元素C、N、P的質(zhì)量比為100∶10∶1[15]得到含油土壤樣品。配制質(zhì)量濃度為4 g/L的2,4-二氯苯酚儲備液,按2,4-二氯苯酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.5 g/kg均勻摻入含油土壤樣品中,置于通風(fēng)櫥中老化平衡2 d后得到石油-2,4-二氯苯酚復(fù)合污染土壤樣品,即為模擬污染土壤樣品。
將500 g模擬污染土壤樣品平均分成4份置于花盆中,4個(gè)花盆對應(yīng)土壤的4種修復(fù)方式:①自然修復(fù)(A);②石油烴降解菌S4、S5修復(fù)(B);③有機(jī)氯降解菌L3和L4修復(fù)(C);④石油與有機(jī)氯降解菌S4、S5、L3、L4修復(fù)(D)。每種處理方式下菌液均按照質(zhì)量分?jǐn)?shù)10%的接種量接種于花盆土壤。在溫度35 ℃、修復(fù)時(shí)間130 d的條件下進(jìn)行模擬污染土壤修復(fù)實(shí)驗(yàn),修復(fù)過程中調(diào)節(jié)土壤含水質(zhì)量分?jǐn)?shù)15%~20%,每7 d翻土一次并進(jìn)行采樣分析。在石油-氯酚模擬污染土壤修復(fù)過程中的第7、14、28、42、56、70、98、130 d取樣,分別測定修復(fù)土壤樣品中的石油烴含量、2,4-二氯苯酚含量、微生物總數(shù)以及土壤脫氫酶活性,并對以上4種修復(fù)方式在不同時(shí)間內(nèi)對土壤微生物群落結(jié)構(gòu)的影響進(jìn)行了檢測。
模擬污染土壤的石油烴降解率(η1,%)按式(1)進(jìn)行計(jì)算。
(1)
式(1)中:ws,0為模擬污染土壤中石油烴質(zhì)量分?jǐn)?shù),mg/kg;ws,t為模擬污染土壤經(jīng)過不同時(shí)間t修復(fù)后土壤中石油烴的質(zhì)量分?jǐn)?shù),mg/kg。
模擬污染土壤的2,4-二氯苯酚降解率(η2,%)按式(2)進(jìn)行計(jì)算。
(2)
式(2)中:wd,0為模擬污染土壤中2,4-二氯苯酚質(zhì)量分?jǐn)?shù),mg/kg;wd,t為模擬污染土壤經(jīng)過不同時(shí)間t修復(fù)后土壤中2,4-二氯苯酚質(zhì)量分?jǐn)?shù),mg/kg。
取模擬污染土壤經(jīng)過4種修復(fù)方式(A、B、C、D)處理修復(fù)7 d(修復(fù)平衡的第一周)后的土壤樣品作為初始樣品,分別記作A1、B1、C1、D1,修復(fù)130 d后的土壤樣品記作A2、B2、C2、D2,委托上海美吉生物醫(yī)藥有限公司對土壤樣品進(jìn)行高通量測序,對土壤修復(fù)過程中微生物群落結(jié)構(gòu)變化分析進(jìn)行補(bǔ)充[16]。高通量測序方法流程:利用土壤DNA提取試劑盒提取土壤樣品的總DNA,然后利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA的完整性與純度,放入-20 ℃冰箱備用,利用V3-V4區(qū)的通用引物進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增和產(chǎn)物純化,接著對PCR產(chǎn)物定量與均一化,然后構(gòu)建PE文庫,最終進(jìn)行Illumina測序。
采用上海元析儀器公司生產(chǎn)的UV-6000P型紫外可見分光光度計(jì),利用超聲萃取-紫外分光光度法測定土壤樣品中石油含量[17]。采用《土壤和沉積物石油烴(C10~C40)的測定——?dú)庀嗌V法》(HJ 1021—2019)對土壤石油烴(C10~C40)組分進(jìn)行定性分析,選用索式提取法進(jìn)行提取,經(jīng)濃縮、凈化后測試,使用安捷倫科技有限公司生產(chǎn)的7890B-5977C型氣相色譜儀進(jìn)行檢測,氣相色譜測試條件:載氣為高純氦氣,流量1.0 mL/min,進(jìn)樣口溫度320 ℃,進(jìn)樣量1.0 μL,進(jìn)樣方式為分流進(jìn)樣,分流比10∶1,HP-5MS色譜柱,程序升溫,初始溫度60 ℃,保留2 min,以15 ℃/min升至320 ℃,保留2 min。采用高效液相色譜法測定2,4-二氯苯酚濃度,土壤中2,4-二氯苯酚用甲醇提取[18],使用日本島津公司生產(chǎn)的LC-20A型高效液相色譜儀進(jìn)行檢測,測定條件為:檢測波長284 nm,V(甲醇)∶V(純水)=50∶50,進(jìn)樣量10 μL,色譜柱為Shim-pack GIST-HP C18,流速0.5 mL/min。采用稀釋涂布平板法測定土壤可培養(yǎng)細(xì)菌、真菌的數(shù)量[19-20]。采用2,3,5-三苯基氯化四氮唑(TTC)還原法測定土壤脫氫酶活性[21]。
采用4種修復(fù)方式(A、B、C、D)對模擬污染土壤進(jìn)行修復(fù)實(shí)驗(yàn),不同修復(fù)時(shí)間下模擬污染土壤中石油烴降解率的變化結(jié)果見圖1。
A—Natural remediation;B—Petroleum hydrocarbon degrading bacteria;C—2,4-Dichlorophenol degrading bacteria;D—Petroleum hydrocarbon and 2,4-dichlorophenol degrading bacteria
由圖1可以看出,D組模擬污染土壤第130 d時(shí)的石油烴降解率達(dá)到77.68%,此時(shí)土壤樣品中石油質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2353.82 mg/kg,符合第二類建設(shè)用地土壤污染風(fēng)險(xiǎn)篩選值(4500 mg/kg)的標(biāo)準(zhǔn),比相同條件下B、C組土壤中石油烴降解率分別提高18.14和19.78百分點(diǎn),這可能是石油烴降解菌群和有機(jī)氯降解菌群之間具有協(xié)同作用促進(jìn)了菌群對石油烴的降解。加入的有機(jī)氯降解菌可以降解2,4-二氯苯酚,證明菌株體內(nèi)含有相關(guān)的雙加氧酶、脫鹵酶及脫氫酶基因[22]。有機(jī)氯降解菌也可降解部分石油烴中含有的芳香烴,因此復(fù)合菌群擴(kuò)大了不同微生物降解石油烴的范圍,多種菌混合后可實(shí)現(xiàn)降解能力的互補(bǔ)[23-24]。
為進(jìn)一步考察石油-有機(jī)氯復(fù)合菌群對土壤石油烴(C10~C40)組分強(qiáng)化降解作用,對4種修復(fù)方式(A、B、C、D)處理模擬污染土壤130 d后的土壤中提取出的石油烴進(jìn)行氣相色譜法分析,以石油烴類峰強(qiáng)的高低代表石油烴的降解程度,結(jié)果見圖2。
A—Natural remediation;B—Petroleum hydrocarbon degrading bacteria;C—2,4-Dichlorophenol degrading bacteria;D—Petroleum hydrocarbon and 2,4-dichlorophenol degrading bacteria
由圖2可知,B、D組模擬污染土壤在第130 d時(shí),石油烴中C27-所有烴類峰的強(qiáng)度均顯著降低,且D組土壤樣品的效果更明顯,與Schink[25]得出的石油烴中C4~C20中更易被微生物降解的結(jié)論一致,復(fù)合菌群的添加更好地利用并降解短鏈烴。而C27+烴類由于其碳鏈長、相對分子質(zhì)量大等原因,使得土壤微生物對這部分烴類利用度較低[26-27]。而C組土壤中碳數(shù)烴類的峰降低幅度都比較小,表明該菌群對石油烴的降解率低,這可能是單一的有機(jī)氯降解菌具有降解底物的專一性,對石油烴不敏感所致。
采用4種修復(fù)方式(A、B、C、D)對模擬污染土壤進(jìn)行修復(fù)實(shí)驗(yàn),不同修復(fù)時(shí)間下模擬污染土壤中2,4-二氯苯酚降解率的結(jié)果見圖3。
A—Natural remediation;B—Petroleum hydrocarbon degrading bacteria;C—2,4-Dichlorophenol degrading bacteria;D—Petroleum hydrocarbon and 2,4-dichlorophenol degrading bacteria
由圖3可知:修復(fù)時(shí)間在130 d時(shí),A組模擬污染土壤中2,4-二氯苯酚降解率為46.74%,可見土壤中2,4-二氯苯酚揮發(fā)性較強(qiáng)。D組土壤中2,4-二氯苯酚降解率持續(xù)上升,在第70 d時(shí)達(dá)到100%;C組土壤中2,4-二氯苯酚的降解速率略低于D組,其降解率在第100 d時(shí)達(dá)到100%。修復(fù)過程中前60 d,C和D組土壤的降解率無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,而60 d后D組降解率繼續(xù)升高,這是由于復(fù)合菌群對土壤環(huán)境適應(yīng)性更強(qiáng),更利于維持2,4-二氯苯酚的穩(wěn)定降解[28-30]。第130 d時(shí),B組土壤中降解率為69.74%,測得此時(shí)2,4-二氯苯酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)為150.54 mg/kg,符合第一類建設(shè)用地土壤污染風(fēng)險(xiǎn)管制值(234 mg/kg)的標(biāo)準(zhǔn)。綜上,向石油-氯酚復(fù)合污染土壤中添加復(fù)合菌群,在促進(jìn)2,4-二氯苯酚降解的同時(shí)保證了菌群降解能力的穩(wěn)定性。
微生物數(shù)量反映土壤微生物群落大小,是土壤生物活性的重要組成部分,微生物的增殖、選擇和競爭過程實(shí)際上就是土壤中石油烴和2,4-二氯苯酚的降解過程。在模擬污染土壤修復(fù)過程中分別對A、B、C、D組土壤樣品在第7、14、28、42、56、70、98、130 d取樣,測定這4組土壤樣品中的細(xì)菌總數(shù)和真菌總數(shù),實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖4。
A—Natural remediation;B—Petroleum hydrocarbon degrading bacteria;C—2,4-Dichlorophenol degrading bacteria;D—Petroleum hydrocarbon and 2,4-dichlorophenol degrading bacteria
由圖4(a)可知:在前28 d中,A組模擬污染土壤中細(xì)菌總數(shù)小幅增加,這是由于土壤中土著菌也會以石油烴和2,4-二氯苯酚作為碳源,促進(jìn)了土著菌群的繁殖;D組土壤中細(xì)菌總數(shù)增長最快,其細(xì)菌總數(shù)在第28 d時(shí)達(dá)到最大值(9.2×107CFU/g soil),表明復(fù)合菌群在石油-氯酚復(fù)合污染土壤中對環(huán)境的適應(yīng)能力最強(qiáng)[31]。而B、C組土壤中細(xì)菌總數(shù)較少,這是由于單一種類微生物對污染物更加敏感。4組土壤中的微生物數(shù)量達(dá)到最大值后便有下降趨勢,與陳凱麗等[32]的研究結(jié)果類似,同時(shí)結(jié)合圖2中第130 d時(shí)碳數(shù)在27以上的烴類殘留量較高,表明復(fù)合菌群難以利用相對分子質(zhì)量較大的污染物作為碳源,導(dǎo)致其生長受到抑制。因此修復(fù)130 d后,B、C、D組土壤中的細(xì)菌總數(shù)基本恢復(fù)到修復(fù)前水平。圖4(b)顯示了4組土壤中真菌總數(shù)的變化,其變化趨勢與細(xì)菌總數(shù)類似。D組土壤中真菌數(shù)量最多,其最大值為6.5×105CFU/g soil,B、C組土壤中真菌數(shù)量無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,表明向石油烴-氯酚復(fù)合污染土壤中加入復(fù)合菌群可以促進(jìn)真菌的生長。有研究表明,部分真菌含有利于芳環(huán)類化合物開環(huán)的酶[33],由此可推測真菌在修復(fù)污染土壤的過程中也發(fā)揮了作用。
脫氫酶可促進(jìn)石油的脫氫,菌株可以通過脫氫酶作用于石油中的氫原子,使之激活并將其轉(zhuǎn)移至受氫體[34],2,4-二氯苯酚的降解也離不開脫氫酶的催化作用。不同修復(fù)方式處理模擬污染土壤修復(fù)過程中土壤脫氫酶活性隨時(shí)間的變化結(jié)果見圖5。
A—Natural remediation;B—Petroleum hydrocarbon degrading bacteria;C—2,4-Dichlorophenol degrading bacteria;D—Petroleum hydrocarbon and 2,4-dichlorophenol degrading bacteria
由圖5可知,隨著修復(fù)時(shí)間的延長,4組土壤中脫氫酶活性均呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢,與圖4的變化趨勢相一致。D組土壤中脫氫酶活性始終高于其余組,其最高值可達(dá)到0.79 mg TPF/(g soil·h-1),這歸因于添加復(fù)合菌群土壤中較多的微生物數(shù)量,且菌群機(jī)體內(nèi)代謝活動(dòng)旺盛[35]。在修復(fù)后期,各組土壤脫氫酶活性降低,這是因?yàn)橥寥赖纳锢枚戎饾u降低,抑制了酶活性,從而減弱了微生物的代謝能力。
通過上述討論,證明了修復(fù)過程中土壤微生物總數(shù)及酶活性對石油及2,4-二氯苯酚降解率存在一定關(guān)系。采用SPSS 26.0軟件分析D組模擬污染土壤修復(fù)130 d后的土壤樣品中土壤細(xì)菌、真菌總數(shù)、脫氫酶活性與污染物降解率之間的相關(guān)性,結(jié)果見表2。
表2 土壤微生物總數(shù)、脫氫酶活性與石油烴降解率(η1)及2,4-二氯苯酚降解率(η2)的相關(guān)性
由表2可以看出,土壤細(xì)菌、真菌總數(shù)、脫氫酶活性與石油烴降解率及2,4-二氯苯酚的降解率均成正相關(guān),相關(guān)性顯著,且土壤真菌總數(shù)與石油烴降解率及2,4-二氯苯酚降解率相關(guān)性系數(shù)最高,分別為0.606、0.636,表明真菌對石油烴和2,4-二氯苯酚2種污染物的去除方面作用明顯。結(jié)合圖4和圖5可知,添加復(fù)合菌群的土壤中微生物總數(shù)及脫氫酶活性均高于添加單一降解菌的土壤。可見,細(xì)菌、真菌總數(shù)與脫氫酶在石油烴和2,4-二氯苯酚降解過程中發(fā)揮了至關(guān)重要的作用。
2.7.1 Alpha多樣性分析
對模擬污染土壤經(jīng)過4種修復(fù)方式(A、B、C、D)處理7 d后采集的土壤樣品A1、B1、C1、D1和130 d后采集的土壤樣品A2、B2、C2、D2進(jìn)行Alpha多樣性指數(shù)分析,結(jié)果見表3。
表3 模擬污染土壤經(jīng)過4種修復(fù)方式處理7 d和130 d后的土壤樣品的微生物多樣性指數(shù)
由表3可知,模擬污染土壤進(jìn)行處理修復(fù)130 d后,樣品A2和B2的Simpson指數(shù)略有增大,這歸因于污染物的加入刺激了土壤中具有降解能力的優(yōu)勢微生物種群的生長[36]。然而其余多樣性指數(shù)較第7 d時(shí)均有不同程度的下降,這表明模擬土壤中微生物群落物種和多樣性均降低,添加的石油烴和2,4-二氯苯酚破壞了土壤環(huán)境,隨著修復(fù)時(shí)間的推移,土壤微生物群落的多樣性、豐富度以及均勻度均降低,從而影響土壤微生物種群的代謝活性[37],使得復(fù)合菌群在修復(fù)污染土壤后期對污染物的代謝速率逐漸降低。
2.7.2 土壤細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)變化
對模擬污染土壤經(jīng)過4種修復(fù)方式(A、B、C、D)處理7 d后采集的土壤樣品A1、B1、C1、D1和130 d后采集的土壤樣品A2、B2、C2、D2進(jìn)行微生物的門水平和屬水平的相對豐度分析,結(jié)果見圖6和圖7。
A—Natural remediation;B—Petroleum hydrocarbon degrading bacteria;C—2,4-Dichlorophenol degrading bacteria;D—Petroleum hydrocarbon and 2,4-dichlorophenol degrading bacteria
由圖6可知,4組模擬污染土壤樣品中的主要菌門為厚壁菌門(Firmicutes)、放線菌門(Actinobacteria)、綠彎菌門(Chloroflexi)、酸桿菌門(Acidobacteriota)和變形菌門(Proteobacteria)。當(dāng)修復(fù)過程進(jìn)行到第7 d時(shí),B、C、D組土壤樣品中厚壁菌門均成為優(yōu)勢菌門,其相對豐度顯著增大,均達(dá)到60%以上,而A組土壤樣品中厚壁菌門的相對豐度基本不變。厚壁菌門豐度的增加主要是來源于添加的菌群中的芽孢桿菌屬,而該菌屬對降解石油及氯酚具有重要作用[38]。當(dāng)修復(fù)過程進(jìn)行到第130 d時(shí),B、C、D組土壤樣品中厚壁菌門的相對豐度相較于第7 d有不同程度的增加,這說明修復(fù)過程中添加的芽孢桿菌屬受土壤污染物刺激生長。
由圖7可知,與A組相比,B、C、D組土壤中修復(fù)后芽孢桿菌屬(Bacillus)和蒼白桿菌屬(Ochrobactrum)成為優(yōu)勢菌屬。D組土壤中修復(fù)后芽孢桿菌屬和蒼白桿菌屬的相對豐度略有增長,表明這兩類菌屬在污染土壤中生長代謝穩(wěn)定,芽孢桿菌屬來源于添加的有機(jī)氯降解菌L3、L4和石油烴降解菌S5,研究表明芽孢桿菌屬對石油及氯酚化合物有很好的降解能力[39]。產(chǎn)堿桿菌屬(Alcaligenes)來自添加的石油烴降解菌S4。A組土壤優(yōu)勢菌屬由節(jié)細(xì)菌屬(Arthrobacter)和Norank_f_norank_o_norank_c_KD4-96菌屬轉(zhuǎn)變?yōu)橹Z卡氏菌屬(Nocardioides)、紅球菌屬(Rhodococcus),這兩類菌在修復(fù)石油烴污染土壤及氯酚污染土壤中均有廣泛研究[40]。在B組土壤中,蒼白桿菌屬(Ochrobactrum)的相對豐度變化不大,芽孢桿菌屬(Bacillus)豐度明顯增多,推測是添加的菌株S5具有較強(qiáng)的生存繁殖能力,相比較于D組土壤,B組土壤在第130 d后產(chǎn)堿桿菌屬(Alcaligenes)豐度的降低更為明顯,這可能是由于加入的石油烴和2,4-二氯苯酚抑制其生長代謝,2,4-二氯苯酚的存在抑制了其對石油的降解效果,這也進(jìn)一步表明在D組土壤中,有機(jī)氯降解菌的存在可以提高石油烴降解菌S4的生存能力[37]。對于C組土壤,修復(fù)前后各微生物菌屬相對豐度變化不大,恢復(fù)到初始土壤微生態(tài)群落結(jié)構(gòu),表明土壤微生物菌群在受污染土壤恢復(fù)及維持群落結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性方面發(fā)揮了重要作用。
(1)制備含水質(zhì)量分?jǐn)?shù)15%~20%、石油烴質(zhì)量分?jǐn)?shù)10 g/kg、2,4-DCP質(zhì)量分?jǐn)?shù)500 mg/kg的模擬污染土壤,采用不同的修復(fù)方式進(jìn)行土壤修復(fù)實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明:添加石油-有機(jī)氯復(fù)合降解菌群進(jìn)行模擬污染土壤修復(fù)的效果最佳,修復(fù)130 d后石油烴降解率為77.68%,2,4-二氯苯酚降解率為100%,比僅添加石油烴降解菌群或有機(jī)氯降解菌群的修復(fù)方式下的石油烴降解率分別提高18.14和19.78百分點(diǎn)。其中,被降解的石油烴主要為碳數(shù)小于27的中短鏈烴。
(2)添加石油-有機(jī)氯復(fù)合降解菌群進(jìn)行模擬土壤修復(fù)后的土壤樣品中脫氫酶活性最高,微生物總數(shù)最多,脫氫酶活性及細(xì)菌、真菌數(shù)量在修復(fù)28 d前呈升高趨勢,28 d后有所下降,且三者與石油烴降解率及2,4-二氯苯酚降解率之間呈正相關(guān)。
(3)在石油烴-有機(jī)氯的復(fù)合污染脅迫下,模擬污染土壤經(jīng)過不同修復(fù)方式處理后的土壤中微生物Alpha多樣性指數(shù)降低。高通量測序分析表明,添加菌群強(qiáng)化的土壤中在修復(fù)前后厚壁菌門(Firmicutes)均為優(yōu)勢菌門,放線菌門(Actinobacteria)所占比例下降;同時(shí),添加石油-有機(jī)氯復(fù)合菌群的土壤中修復(fù)后芽孢桿菌屬(Bacillus)和蒼白桿菌屬(Ochrobactrum)成為優(yōu)勢菌屬,所占比例上升。