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    枯草芽孢桿菌PW2產(chǎn)揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)赭曲霉的抑制作用

    2023-08-05 09:04:38張凱歌林親錄王青云
    食品科學(xué) 2023年14期
    關(guān)鍵詞:辛醇細(xì)胞膜孢子

    余 璐,魏 琛,張凱歌,林親錄,王青云

    (中南林業(yè)科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410004)

    赭曲霉(Aspergillus ochraceus)廣泛生長(zhǎng)在糧食、水果、咖啡、油料、茶葉等[1]食品原料及其加工產(chǎn)品。赭曲霉產(chǎn)孢能力很強(qiáng),其孢子散落在空氣中能夠誘導(dǎo)兒童哮喘[2]和人類(lèi)肺病[3]。其產(chǎn)生的次級(jí)代謝產(chǎn)物赭曲霉毒素A(ochratoxin A,OTA)是一種腎毒性真菌毒素,具有致癌、致畸、遺傳毒性和免疫抑制作用[4]。OTA經(jīng)由胃腸道吸收后,經(jīng)血液流到腎臟,且在人或動(dòng)物體內(nèi)不易代謝消除,易在血液及消化組織器官中累積,可引發(fā)亞急性或慢性中毒[5]。OTA在1993年被國(guó)際癌癥研究會(huì)定為2B組致癌物質(zhì)[6]。目前,物理防霉方法常用氣調(diào)控制和低溫控制,但能耗費(fèi)用高,輔助設(shè)施不成熟[7];傳統(tǒng)的化學(xué)熏蒸法中常使用磷化鋁、氯化苦、環(huán)氧乙烷等,其對(duì)環(huán)境造成的負(fù)面影響和對(duì)人類(lèi)健康的威脅問(wèn)題日益突 出[8]。因此,探尋低毒高效的綠色防霉劑已成為當(dāng)今食品防霉的必然需求。

    芽孢桿菌(Bacillus)對(duì)真菌的抑制作用多是源于其產(chǎn)生的抗菌蛋白[9]、脂肽類(lèi)[10]及揮發(fā)性物質(zhì)(volatile compounds,VC)[11-12],其中抗菌蛋白和脂肽類(lèi)的研究已比較成熟,而具有抗霉活性的VC開(kāi)始成為近年來(lái)研究的熱點(diǎn)。研究表明,芽孢桿菌所產(chǎn)具有抗霉活性的揮發(fā)性復(fù)合物的主要成分有醇、醛、酮、酸、酚類(lèi)化合物及硫化物等[13-14];枯草芽孢桿菌(B.subtilis)KA9產(chǎn)生的揮發(fā)性復(fù)合物不僅對(duì)辣椒植物生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,還對(duì)青枯雷爾氏菌(Ralstonia solanacearum)有生防效果[15];貝萊斯芽孢桿菌(B.velezensis)所產(chǎn)揮發(fā)性復(fù)合物能夠抑制番茄灰霉病菌(Botrytis cinerea)等病原真菌的菌絲生長(zhǎng)[16];解淀粉芽孢桿菌(B.amyloliquefaciens)T-5產(chǎn)生的揮發(fā)性復(fù)合物能顯著抑制引起番茄青枯病的青枯雷爾氏菌的生長(zhǎng)[17]。芽孢桿菌所產(chǎn)揮發(fā)性復(fù)合物不僅可抑制上述田間型植物病原真菌,還可用于采后儲(chǔ)藏期間的生物防治。甲基營(yíng)養(yǎng)芽孢桿菌(B.methylotrophicus)BCN2和蘇云金芽孢桿菌(B.thuringiensis)BCN10產(chǎn)生的揮發(fā)性復(fù)合物可以抑制從枇杷果實(shí)中分離的5 種采后病原菌生 長(zhǎng)[18];巨大芽孢桿菌(B.megaterium)產(chǎn)生的揮發(fā)性復(fù)合物明顯抑制了稻谷中霉菌總數(shù)的增加,顯著降低了稻谷中黃曲霉毒素的含量[19]。然而,關(guān)于芽孢桿菌所產(chǎn)VC對(duì)赭曲霉的抑制作用迄今鮮見(jiàn)研究報(bào)道。

    實(shí)驗(yàn)室在前期研究中從稻谷中分離出1 株產(chǎn)抗霉VC的枯草芽孢桿菌PW2[20],本實(shí)驗(yàn)以其所產(chǎn)VC為研究對(duì)象,鑒定其組分,測(cè)定所鑒定出單個(gè)化合物標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的抑制效果,從中篩選出關(guān)鍵抗霉揮發(fā)性物質(zhì)(key antifungal volatile compound,KAVC),研究KAVC對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)及產(chǎn)毒的抑制效果,并探討其抗霉作用機(jī)理,旨在為探尋新型的食品用防霉熏蒸劑提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    枯草芽孢桿菌PW2菌株由本實(shí)驗(yàn)室在前期研究中從市售秈稻中分離、鑒定并保存;赭曲霉 中國(guó)農(nóng)業(yè)微生物菌種保藏管理中心。

    異辛醇(純度≥99.5%)、2-壬酮(純度99%)、異丁酸(純度99%)、2,2,4-三甲基-1,3-戊二醇二異丁酸酯(純度98.5%)上海阿拉丁生化科技股份有限公司;十二醇(純度98%)Sigma Aldrich(上海)貿(mào)易有限公司;赭曲霉毒素酶聯(lián)免疫定量檢測(cè)試劑盒 上海恒遠(yuǎn)生物科技有限公司;碘化丙啶(propidium iodide,PI)、瓊脂(生物試劑)北京索萊寶科技有限公司;牛肉膏、蛋白胨(均為生物試劑)北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;氯化鈉、葡萄糖(均為分析純)國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;氯霉素(純度98%)上海麥克林生化科技股份有限公司。

    營(yíng)養(yǎng)瓊脂(nutrient agar,NA)培養(yǎng)基:牛肉膏3 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,瓊脂15~20 g,蒸餾水1000 mL,pH 7.4~7.6;營(yíng)養(yǎng)肉湯(nutrient broth,NB)培養(yǎng)基:NA配方中不加瓊脂;馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:去皮馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂15~20 g,氯霉素0.3 g,蒸餾水1000 mL,自然pH值;馬鈴薯葡萄糖液體(potato dextrose broth,PDB)培養(yǎng)基:PDA配方中不加瓊脂;沙氏葡萄糖肉湯(sabouraud dextrose broth,SDB)培養(yǎng)基:蛋白胨10 g,葡萄糖40 g,蒸餾水1000 mL。以上培養(yǎng)基均在121 ℃滅菌20 min后備用。

    1.2 儀器與設(shè)備

    MJ-54 A 型滅菌鍋 施都凱儀器設(shè)備(上海)有限公司;Airtech SW-CJ-1 FD 型超凈工作臺(tái) 蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;DVB/CAR/PDMS(50/30 μm)型萃取頭 美國(guó)Supelco公司;7890B-5977B型氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國(guó)Agilent公司;MJX-250B型霉菌培養(yǎng)箱 上海博訊實(shí)業(yè)有限公司;SpectraMax i3x型多功能酶標(biāo)儀 美國(guó)Moleculer Devices公司;Quanta FEG250型掃描電子顯微鏡 美國(guó)FEI公司;Ni-U型正置熒光微分干涉顯微鏡 尼康儀器(上海)有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 赭曲霉孢子菌懸液制備

    用含0.05%(V/V)吐溫80的無(wú)菌水沖洗PDA斜面上的赭曲霉孢子,4 層無(wú)菌擦鏡紙過(guò)濾,調(diào)節(jié)孢子懸液濃度至1×106個(gè)/mL,于4 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。之后提到的赭曲霉孢子懸液,如無(wú)特殊說(shuō)明,均為按此方法制備的孢子懸液。

    1.3.2 PW2所產(chǎn)VC成分鑒定

    取1 環(huán)PW2斜面菌種接到裝有10 mL NB培養(yǎng)基的頂空瓶中,以相同條件下不接菌的培養(yǎng)基為對(duì)照,30 ℃、150 r/min培養(yǎng)3 d。采用固相微萃取-氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)[21]對(duì)PW2菌株所產(chǎn)VC進(jìn)行成分鑒定。采用峰面積歸一法計(jì)算各成分的相對(duì)含量。

    1.3.3 VC中抑制赭曲霉生長(zhǎng)的KAVC篩選

    根據(jù)VC成分鑒定結(jié)果,選取鑒定出的單個(gè)成分并購(gòu)買(mǎi)標(biāo)準(zhǔn)品,采用平板對(duì)扣法[22]測(cè)定各標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的抑制作用。平板對(duì)扣法的操作為:取5 μL赭曲霉孢子懸浮液接種于PDA平板中央,另一平板中放入含20 μL單個(gè)待測(cè)化合物的濾紙片,立即用保鮮膜繞皿口3 圈進(jìn)行密封。以相同條件下不加化合物的處理作為對(duì)照。30 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)7 d,對(duì)照組的菌落生長(zhǎng)完全,便停止培養(yǎng)。觀察記錄平板中赭曲霉的生長(zhǎng)情況,測(cè)量菌落直徑(cm),按下式計(jì)算各標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)赭曲霉菌落生長(zhǎng)的抑制率。對(duì)比分析抑制率的高低,找出抑制赭曲霉生長(zhǎng)的KAVC。

    1.3.4 倍半稀釋法測(cè)定KAVC在接觸條件下對(duì)赭曲霉的最低抑菌濃度(minimum inhibitory concentration,MIC)

    取1 mL赭曲霉孢子懸液加到含有9 mL PDB培養(yǎng)基的錐形瓶中并搖勻,取190 μL加入96 孔板的第1列孔中,第2~9列孔中均加入100 μL,然后在第1列孔中加入KAVC 10 μL,采用倍半稀釋法[23]進(jìn)行連續(xù)稀釋。在第10列孔中加入不含孢子的PDB培養(yǎng)基100 μL,第11列孔中加入含孢子的PDB培養(yǎng)基100 μL,蓋上蓋子用保鮮膜纏繞3 圈封口,置于30 ℃,培養(yǎng)5 d后對(duì)照組菌絲正常生長(zhǎng)并產(chǎn)孢。在每孔加入1 mg/mL刃天青溶液10 μL,混勻,30 ℃孵育12 h,霉菌生長(zhǎng)較多的孔中刃天青藍(lán)色褪去,轉(zhuǎn)變?yōu)榉奂t色甚至無(wú)色。通過(guò)目視觀察,將刃天青顏色無(wú)明顯變化的孔對(duì)應(yīng)的KAVC的最低濃度定義為MIC值。在后續(xù)機(jī)理研究的實(shí)驗(yàn)中異辛醇的劑量均基于此實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

    1.3.5 平板對(duì)扣法測(cè)定KAVC在揮發(fā)條件下對(duì)赭曲霉的MIC和最低殺菌濃度(minimum bactericidal concentration,MBC)

    平板對(duì)扣法操作如1.3.3節(jié)所述,濾紙片上KAVC添加量設(shè)置為0、10、20、30、40、50、60 μL,對(duì)應(yīng)的頂空含量分別為0、56、112、169、225、281 μL/L和337 μL/L(皿內(nèi)徑為9 cm,高2.8 cm,容積為0.178 L)。30 ℃培養(yǎng)7 d后以肉眼觀察PDA平板上赭曲霉無(wú)生長(zhǎng),轉(zhuǎn)接至新鮮PDA平板上,30 ℃培養(yǎng)5 d后可以恢復(fù)生長(zhǎng)處理對(duì)應(yīng)的最低濃度為MIC,不能恢復(fù)生長(zhǎng)處理對(duì)應(yīng)的最低濃度為MBC。

    1.3.6 KAVC對(duì)赭曲霉產(chǎn)毒的影響

    在10 mL PDB培養(yǎng)基中接入100 μL赭曲霉孢子懸液,30 ℃、150 r/min培養(yǎng)48 h后,在無(wú)菌條件下加入KAVC,使之劑量分別為0、1/4 MIC、1/2 MIC和MIC,相同條件下繼續(xù)培養(yǎng)5 d。培養(yǎng)結(jié)束后用Whatman No.1濾紙過(guò)濾,采用酶聯(lián)免疫吸附法[24-25]測(cè)定濾液中OTA的含量。

    1.3.7 KAVC抑制赭曲霉生長(zhǎng)作用機(jī)理分析1.3.7.1 掃描電鏡觀察

    用SDB培養(yǎng)基替代1.3.1節(jié)無(wú)菌水制備含1×107個(gè)/mL赭曲霉孢子的SDB培養(yǎng)基,取3 mL加入EP管中,再加入KAVC使之劑量分別為0、1/2 MIC、MIC、2 MIC,于30 ℃、150 r/min培養(yǎng)10 h,將孢子培養(yǎng)物5000×g離心5 min,棄去上清液,收集赭曲霉孢子,通過(guò)掃描電鏡[26]觀察KAVC對(duì)赭曲霉孢子形態(tài)的影響。

    1.3.7.2 KAVC對(duì)細(xì)胞膜完整性的影響

    赭曲霉孢子培養(yǎng)方法、KAVC 劑量分別為0、MIC、2 MIC、4 MIC,培養(yǎng)時(shí)間為12 h。將孢子培養(yǎng)物5000×g離心5 min,棄去上清液,用磷酸鹽緩沖液洗滌2 次,用5 μg/mL PI對(duì)孢子樣品染色,37 ℃、150 r/min孵育30 min,再用磷酸鹽緩沖液洗滌3 次,除去未進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的PI后,吸取20 μL在干凈的載玻片上,蓋上蓋玻片,用正置熒光微分干涉顯微鏡[27]拍照觀察。

    1.3.7.3 麥角甾醇含量的測(cè)定

    取15 mL赭曲霉孢子懸液加入135 mL PDB培養(yǎng)基中,30 ℃、150 r/min培養(yǎng)3 d,收集菌絲,稱(chēng)取1 g菌絲球分別放入異辛醇劑量為0、1/4 MIC、1/2 MIC、MIC的無(wú)菌水中,于30 ℃、150 r/min培養(yǎng)12 h,過(guò)濾,將菌絲球放入試管中,加入5 mL 25 g/100 mL KOH-乙醇溶液,混合3 min,在85 ℃水浴中孵育4 h,冷卻,加入5 mL正庚烷和2 mL無(wú)菌水,然后強(qiáng)力旋流攪拌3 min,靜置1 h,取上層正庚烷用掃描分光光度計(jì)在230~300 nm范圍內(nèi)掃描,計(jì)算菌絲球中麥角甾醇含量[23]。

    式中:A282nm、A230nm分別為樣品在282、230 nm處的吸光度;290和518分別為麥角甾醇和24(28)DHE% 的E值。

    1.3.7.4 胞內(nèi)物質(zhì)泄漏測(cè)定

    如1.3.7.3節(jié)收集菌絲,稱(chēng)取1 g菌絲球分別放入異辛醇劑量為0、1/4 MIC、1/2 MIC、MIC的無(wú)菌水中,于30 ℃、150 r/min分別培養(yǎng)2、4、6、8 h,過(guò)濾,取濾液。用紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)[28]分別在260 nm和280 nm波長(zhǎng)處檢測(cè)吸光度。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)

    每個(gè)實(shí)驗(yàn)3 個(gè)平行,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel軟件整理,并用SPSS Statistics 26對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行Duncan檢驗(yàn),分析各組數(shù)據(jù)之間的差異顯著性(P<0.05,差異顯著),用Origin 2021軟件作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 PW2所產(chǎn)VC的成分組成

    PW2所產(chǎn)VC共鑒定出41 種組分(表1),主要有酯、醛、烷烴、醇、酮、酸、烯烴等化合物。所鑒定出揮發(fā)性成分中,2-壬酮已被報(bào)道可有效抑制水果中灰葡萄孢菌(B.cinerea)等腐敗真菌的生長(zhǎng),且已被作為水果的抗真菌劑使用[29];十二醇能有效防治黃瓜霜霉?。≒seudoperonospora cubensis)[30];異辛醇能降低柑橘采后被指狀青霉(Penicillium digitatum)感染的機(jī)率[31];異丁酸可有效抑制尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporumfsp.lactucae)菌絲生長(zhǎng)[32]。雖然這些成分已被證明對(duì)植物病原菌具有抗霉活性,但其對(duì)赭曲霉的抑制作用鮮見(jiàn)報(bào)道。選取上述4 種成分和在VC中含量相對(duì)較高的2,2,4-三甲基-1,3-戊二醇二異丁酸酯,購(gòu)買(mǎi)這5 種化合物的標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)一步研究其對(duì)赭曲霉的抑制作用。

    表1 PW2所產(chǎn)VC的固相微萃取-氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)鑒定結(jié)果Table 1 SPME-GC-MS identification of VC produced by strain PW2

    2.2 KAVC的確定

    通過(guò)平板對(duì)扣法測(cè)定5 種化合物標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的抑制作用,結(jié)果如圖1所示。30 ℃培養(yǎng)7 d后,對(duì)照組赭曲霉菌落生長(zhǎng)正常,十二醇對(duì)赭曲霉菌落生長(zhǎng)的抑制不顯著(P>0.05),其他4 種化合物對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)都有顯著抑制作用,其中異辛醇對(duì)赭曲霉的抑菌活性最強(qiáng)。因此,將異辛醇確定為KAVC并進(jìn)行下一步的研究。

    圖1 不同揮發(fā)性化合物處理對(duì)赭曲霉菌落形態(tài)(A)和菌落直徑、生長(zhǎng)抑制率(B)的影響Fig.1 Effects of different volatile compound treatments on colony morphology (A),colony diameter and growth inhibition rate (B) of A.ochraceus

    2.3 異辛醇對(duì)赭曲霉的MIC及MBC

    2.3.1 倍半稀釋法測(cè)定異辛醇在接觸條件下對(duì)赭曲霉的MIC

    如圖2所示,能維持刃天青不變色的異辛醇最低劑量為1562.5 μL/L,在此劑量下對(duì)應(yīng)的孔中未見(jiàn)赭曲霉菌絲生長(zhǎng)。當(dāng)劑量低于1562.5 μL/L時(shí),對(duì)應(yīng)孔中指示劑變?yōu)闇\粉色或無(wú)色,肉眼可觀察到孔內(nèi)有菌絲體長(zhǎng)出。因此,接觸條件下異辛醇對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的MIC為1562.5 μL/L。

    圖2 倍半稀釋法測(cè)定異辛醇對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的MICFig.2 Determination of the MIC of isooctanol against A.ochraceus by the sesqui-dilution method

    2.3.2 平板對(duì)扣法測(cè)定異辛醇在揮發(fā)條件下測(cè)得異辛醇對(duì)赭曲霉的MIC和MBC

    如圖3A所示,對(duì)照皿中赭曲霉正常生長(zhǎng),劑量為56 μL/L的異辛醇處理組赭曲霉有少量生長(zhǎng),而其他處理組中赭曲霉均未見(jiàn)生長(zhǎng),將未見(jiàn)生長(zhǎng)的赭曲霉孢子轉(zhuǎn)接至新鮮PDA平板上培養(yǎng)。轉(zhuǎn)接后的生長(zhǎng)情況如圖3B所示,觀察到112、169、225 μL/L的處理組均恢復(fù)生長(zhǎng),而281 μL/L和337 μL/L的處理組均未恢復(fù)生長(zhǎng),可知異辛醇對(duì)赭曲霉的MIC和MBC分別為112 μL/L和281 μL/L。

    圖3 平板對(duì)扣法測(cè)定異辛醇對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的MIC(A)和MBC(B)Fig.3 Determination of MIC (A) and MBC (B) of isooctanol against A.ochraceus by plate buckling method

    2.4 異辛醇對(duì)赭曲霉產(chǎn)毒的影響

    由圖4可知,與對(duì)照組相比,各處理組的OTA產(chǎn)量均顯著降低(P<0.05)。當(dāng)異辛醇劑量為MIC時(shí),赭曲霉產(chǎn)生OTA量最低,與對(duì)照組相比其抑制率為23.67%。異辛醇可以有效降低OTA的產(chǎn)生,其抑制率隨異辛醇劑量增加而增高。

    圖4 不同劑量異辛醇處理對(duì)赭曲霉產(chǎn)OTA的抑制作用Fig.4 Inhibitory effects of different doses of isooctanol on the production of ochratoxin A by A.ochraceus

    2.5 異辛醇抑制赭曲霉生長(zhǎng)的作用機(jī)制

    2.5.1 異辛醇對(duì)赭曲霉孢子形態(tài)的影響

    由圖5可知,未經(jīng)異辛醇處理的赭曲霉孢子形態(tài)完整、表面光滑,而經(jīng)異辛醇處理后部分孢子出現(xiàn)凹陷,隨著異辛醇劑量的增加出現(xiàn)凹陷孢子增多,凹陷程度也在增加,且當(dāng)異辛醇為2 MIC時(shí)孢子還出現(xiàn)干癟,褶皺的現(xiàn)象。推測(cè)可能是異辛醇處理導(dǎo)致孢子內(nèi)容物流失,從而在外形上出現(xiàn)干癟和凹陷。

    圖5 不同劑量異辛醇處理對(duì)赭曲霉孢子形態(tài)的影響(×20000)Fig.5 Effects of different doses of isooctanol on the morphology of A.ochraceus spores (× 20000)

    2.5.2 異辛醇對(duì)細(xì)胞膜完整性的影響

    PI是一種核酸染料,不能透過(guò)正常完整的細(xì)胞膜,當(dāng)細(xì)胞膜破損時(shí),PI能透過(guò)破損的細(xì)胞膜繼而與DNA結(jié)合產(chǎn)生紅色熒光,從而用于檢測(cè)細(xì)胞膜的完整性[33]。如圖6所示,明場(chǎng)下觀察,對(duì)照組的孢子體積明顯膨大,而異辛醇處理組的孢子未出現(xiàn)體積膨大;暗場(chǎng)下觀察,對(duì)照組孢子沒(méi)有產(chǎn)生紅色熒光,而異辛醇處理組產(chǎn)生紅色熒光,還觀察到異辛醇劑量為4 MIC時(shí)大量孢子被異辛醇包裹著且產(chǎn)生紅色熒光。結(jié)果說(shuō)明異辛醇處理后的赭曲霉孢子細(xì)胞膜完整性喪失。

    圖6 不同劑量異辛醇對(duì)赭曲霉孢子細(xì)胞膜完整性的影響Fig.6 Effects of different doses of isooctanol on cell membrane integrity of A.ochraceus spores

    2.5.3 異辛醇對(duì)赭曲霉麥角甾醇含量的影響

    麥角甾醇是真菌中一種獨(dú)特的甾醇,是細(xì)胞膜的主要成分,主要保持細(xì)胞完整性和膜流動(dòng)性[34]。如圖7所示,與對(duì)照組相比較,在1/4 MIC、1/2 MIC和MIC的異辛醇作用下各處理組赭曲霉的麥角甾醇含量分別降低了42.68%、65.08%和65.40%。說(shuō)明異辛醇導(dǎo)致赭曲霉細(xì)胞膜中麥角甾醇含量降低,細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)和功能受到破壞。這與2.5.2節(jié)中PI染色的觀察結(jié)果一致。

    圖7 不同劑量異辛醇對(duì)赭曲霉的麥角甾醇紫外吸收?qǐng)D譜(A)及 含量(B)的影響Fig.7 Effects of different doses of isooctanol on the ultraviolet spectrum (A) and content (B) of ergosterol from A.ochraceus

    2.5.4 異辛醇對(duì)赭曲霉胞內(nèi)物質(zhì)泄漏的影響

    如圖8所示,隨處理時(shí)間的延長(zhǎng),培養(yǎng)液中的核酸和蛋白含量均增加,且處理組與對(duì)照組之間差異也隨著時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸顯著(P<0.05)。說(shuō)明異辛醇對(duì)赭曲霉核酸和蛋白泄漏情況受處理時(shí)間的影響,且其作用效果存在劑量依賴性。異辛醇可能通過(guò)改變細(xì)胞膜的通透性[22],使赭曲霉的核酸和蛋白泄漏,從而導(dǎo)致赭曲霉的生長(zhǎng)被抑制。

    圖8 不同劑量異辛醇處理不同時(shí)間對(duì)赭曲霉核酸(A)和蛋白(B)泄漏的影響Fig.8 Effects of different doses of isooctanol on nucleic acid (A) and protein leakage (B) from A.ochraceus at different treatment times

    3 討論

    本研究結(jié)果表明枯草芽孢桿菌PW2所產(chǎn)具有抗霉活性的VC中含有酯、醛、烷烴、醇、酮、酸、烯烴類(lèi)等41 種成分,從這些成分中初步篩選出5 種單體化合物,購(gòu)買(mǎi)其標(biāo)準(zhǔn)品并測(cè)定它們對(duì)赭曲霉的抗霉活性,發(fā)現(xiàn)異辛醇對(duì)赭曲霉的抗霉活性最強(qiáng)。異辛醇,又名2-乙基己醇,是GB 2760—2014《食品添加劑使用標(biāo)準(zhǔn)》中允許使用的一種食品用合成香料。異辛醇還作為一種風(fēng)味物質(zhì)廣泛存在于小麥面包[35]、初榨橄欖油[36]、白酒大曲[37]和發(fā)酵泡菜[38]等食品中。亞慢性吸入毒性研究表明,質(zhì)量濃度為120 mg/L的異辛醇對(duì)實(shí)驗(yàn)大鼠在體質(zhì)量、死亡率、器官質(zhì)量、臨床生化和血液學(xué)參數(shù)方面均未觀察到不良反應(yīng)[39]。早在2009年就有研究報(bào)道了芽孢桿菌產(chǎn)生的異辛醇可以完全抑制黃瓜菌核病菌的菌絲生長(zhǎng)[40],后續(xù)也有研究表明異辛醇可以參與植物生長(zhǎng)調(diào)控及病害防治[41],可以防治甘蔗的紅腐病[42],還能抑制草莓灰霉病菌的分生孢子萌發(fā)和菌絲生長(zhǎng)[43]。最近研究發(fā)現(xiàn)水稻根際細(xì)菌釋放的包含異辛醇在內(nèi)的VC對(duì)引起水稻紋枯病的病原菌生長(zhǎng)有抑制作用[44]。說(shuō)明異辛醇具有抗真菌活性和值得信賴的安全性,其揮發(fā)性質(zhì)易于擴(kuò)散到食物中,有望成為食物防霉的新資源,但其抗霉的作用機(jī)制還有待研究。

    本研究測(cè)得異辛醇對(duì)赭曲霉有顯著抗菌活性,且呈劑量依賴關(guān)系,不管是在揮發(fā)條件下還是接觸條件下,赭曲霉的生長(zhǎng)隨著異辛醇劑量的增高而逐漸被抑制。異辛醇在接觸條件下對(duì)赭曲霉的MIC值遠(yuǎn)高于揮發(fā)條件。這一結(jié)果與有些研究結(jié)果一致,Li Yanjun等[45]在研究山蒼子精油對(duì)黃曲霉的抑制實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),在揮發(fā)條件下抑制菌絲生長(zhǎng)和黃曲霉毒素B1合成所需要的用量比接觸條件下低;Wang Yanzhen等[46]發(fā)現(xiàn),橙花醇在揮發(fā)條件下對(duì)黑曲霉菌絲生長(zhǎng)的抑制效果大于接觸條件;Niu Ajuan等[47]也發(fā)現(xiàn)肉桂醛在揮發(fā)條件下的MIC遠(yuǎn)小于接觸條件。異辛醇在揮發(fā)條件下對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的MIC值為112 μL/L,與互葉白千層精油(2.5 mL/L)[48]和檸檬醛(200 μL/L)[49]對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的MIC值相比較,異辛醇對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)的MIC值低得多。因此與直接加入原料中相比,揮發(fā)條件下的抑制效果更好,異辛醇更適合以熏蒸劑的形式使用。使用熏蒸處理是防止食品腐敗的理想方法,快速有效,而且殘留少[47]。

    本研究異辛醇處理后的赭曲霉孢子外形出現(xiàn)干癟和凹陷,赭曲霉細(xì)胞膜完整性被破壞,麥角甾醇含量降低以及胞內(nèi)物質(zhì)泄露均可推測(cè)異辛醇對(duì)赭曲霉的作用機(jī)制可能是與破壞其細(xì)胞膜有關(guān)[50-51],目前的研究報(bào)道中丙酮酸乙酯通過(guò)破壞草酸青霉(Penicillium oxalicum)孢子的細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)從而抑制草酸青霉的生長(zhǎng)[52];橙花醇對(duì)黑曲霉(A.niger)的抑制研究表明,橙花醇抑制了黑曲霉麥角甾醇的合成,從而破壞了黑曲霉的膜完整性,引起膜的通透性發(fā)生變化,導(dǎo)致細(xì)胞死亡[46];ε-聚-L-賴氨酸可通過(guò)降解擴(kuò)展青霉菌(P.expansum)孢子的細(xì)胞壁,破壞細(xì)胞膜的完整性,導(dǎo)致大量細(xì)胞物質(zhì)泄露,進(jìn)而減少或抑制孢子萌發(fā)和菌絲生長(zhǎng)[53]。異辛醇作為親脂性化合物可能會(huì)聚集在細(xì)胞膜上,可以推測(cè)異辛醇很可能與細(xì)胞膜的磷脂雙分子層結(jié)合,破壞細(xì)胞膜的正常結(jié)構(gòu)及功能[46],從而影響赭曲霉正常生長(zhǎng)和代謝并殺死赭曲霉。

    由于VC具有高揮發(fā)性在應(yīng)用中會(huì)受到限制,目前對(duì)VC用于防霉的應(yīng)用研究中基本是將VC包埋在載體上,有將精油通過(guò)殼聚糖納米乳劑的包埋[54],有將反式肉桂醛、甲基丁香酚和雌二醇等VC復(fù)合包埋在殼聚糖納米生物聚合物中[55],也有將茴香精油包埋在殼聚糖納米聚合物中[56],提高VC的穩(wěn)定性和有效性以應(yīng)用于食品防腐。

    4 結(jié)論

    枯草芽孢桿菌PW2所產(chǎn)具有抗霉活性的VC中異辛醇對(duì)赭曲霉生長(zhǎng)抑制作用最強(qiáng),異辛醇作為熏蒸劑使用時(shí)具有更低的MBC,其抑殺赭曲霉的作用機(jī)理與破壞細(xì)胞膜完整性有關(guān)。目前還鮮見(jiàn)對(duì)于異辛醇應(yīng)用于防霉的研究,而異辛醇作為VC,具有高揮發(fā)性和不穩(wěn)定性,后續(xù)研究可以將其采用納米包埋的方式,提高異辛醇的穩(wěn)定性和有效性,以此開(kāi)發(fā)安全、高效的新型防霉熏蒸劑。異辛醇用于食品熏蒸防霉其殘留量、安全性及系統(tǒng)的抗霉機(jī)理等問(wèn)題有待進(jìn)一步研究探討。

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