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    體外循環(huán)術(shù)后患者來源的腸道菌群重建對腸黏膜損傷大鼠菌群特征和炎癥反應(yīng)的影響

    2023-05-15 07:52:22伊小婷范嘉寧刁玉剛孫瑩杰
    中國體外循環(huán)雜志 2023年2期
    關(guān)鍵詞:阿克曼屏障無菌

    伊小婷,范嘉寧,刁玉剛,孫瑩杰

    近些年來,不同疾病與腸道菌群之間的相關(guān)性得到了專家和學(xué)者們的廣泛關(guān)注。 有研究表明,腸道菌群類別的改變能夠影響結(jié)腸組織的發(fā)育,從而影響腸黏膜屏障的功能[1]。 腸黏膜屏障是機(jī)體阻擋非特異性感染的第一道防線,課題組前期的研究已證實(shí)心肺轉(zhuǎn)流(cardiopulmonary bypass,CPB)可通過炎癥反應(yīng)、缺血再灌注損傷、氧化應(yīng)激反應(yīng)、細(xì)胞凋亡損傷等多種方式損傷腸黏膜屏障[2-3],引發(fā)腸損傷。 因此,CPB 所致腸損傷的機(jī)制是否與腸道菌群的紊亂相關(guān)尚有待研究,本實(shí)驗(yàn)擬對此進(jìn)行評(píng)價(jià)。

    1 材料與方法

    1.1 材料 選擇無特定病原體成年雄性標(biāo)準(zhǔn)差大鼠共30 只,體重為400~450 g。 按照隨機(jī)數(shù)字表法將大鼠隨機(jī)分為3 組:偽無菌大鼠組(S 組)、偽無菌大鼠+接種健康人源糞菌濾液組(N 組)和偽無菌大鼠+接種行CPB 下心臟瓣膜術(shù)后患者糞菌濾液組(C 組),每組分別為10 只。 第1 天至第14 天給予S 組、N 組和C 組大鼠由甲硝唑(250 mg/kg)、氨芐西林(250 mg/kg)、硫酸新霉素(250 mg/kg)混合配制而成的抗生素雞尾酒胃管灌胃處理,每天2 次,每次2 ml;第15 天至第28 天N 組、C 組分別接受來自健康人源和行CPB 下心臟瓣膜術(shù)后患者源的糞菌移植,每天1 次。

    1.2 制作糞菌懸液 將-80℃保存的糞便取出稱重,按1 ∶10 的比例加入無菌生理鹽水(1 g 糞便加入10 ml 生理鹽水),置于50 ml 的小燒杯內(nèi),密封,放置于磁力攪拌器上攪拌15 min,離心管收集混懸液,標(biāo)記濾液體積,將混懸液4℃下離心10 min,上清液即為糞菌懸液。

    1.3 糞菌移植 糞菌移植之前禁食6 h,大鼠取俯臥位,搔刮法盡量排空直腸內(nèi)留存糞便,在內(nèi)徑2 mm 塑料軟管表面涂抹無菌生理鹽水潤滑后輕柔置入結(jié)腸,至軟管頂端距離肛門約8 mm,緩慢注入糞菌液500 μl,輕柔拔出軟管后用無菌紗布或棉簽壓住肛門幾秒鐘,執(zhí)鼠尾使大鼠保持頭低腳高姿態(tài)約1 min 后放回籠中,1 次/d,連續(xù)14 d。

    1.4 檢測指標(biāo) 建模成功后,糞菌移植14 d 后,收集各組大鼠糞便,每只大鼠取3 粒糞便貯存于-80℃冰箱供宏基因組學(xué)測序;脊椎脫臼法處死大鼠,無菌取靜脈血、離心,血清供酶聯(lián)免疫吸附(Elisa)檢測;取結(jié)腸組織置于4%多聚甲醛溶液貯存,以備光學(xué)顯微鏡下觀察;另取部分結(jié)腸組織-80℃保存,蛋白免疫印跡(Westernblot)法檢測緊密連接蛋白(zonula occludin-1,ZO-1)、閉合蛋白(occludin)的表達(dá)水平。

    宏基因組學(xué)測序是對微生物群體進(jìn)行高通量測序,分析特定環(huán)境中微生物群體基因組成及功能、微生物群體的多樣性與豐度,進(jìn)而分析微生物與環(huán)境、微生物與宿主之間的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)具有特定功能的基因。 具體方法如下:①DNA 提?。海╝)糞便樣本加入裂解液,混勻;(b)離心取上清,加酚∶氯仿∶異戊醇(25 ∶24 ∶1),混勻,離心;(c)取上清,加氯仿∶異戊醇(24 ∶1),混勻,離心;(d)取上清,加入異丙醇,搖晃,沉淀;(e)離心后用75%乙醇洗滌2 次,吹干;(f)加入蒸餾水溶解DNA 樣品;(g)加入RNaseA加速溶劑消化RNA,37℃下放置。 ②DNA 檢測:瓊脂糖凝膠電泳分析DNA 的純度和完整性。 ③文庫構(gòu)建及質(zhì)檢。 ④上機(jī)測序。 ⑤下機(jī)質(zhì)控。 ⑥信息分析:(a)數(shù)據(jù)質(zhì)控;(b)去除宿主;(c)物種注釋;(d)常用功能數(shù)據(jù)庫注釋;(e)豐度聚類分析;(f)抗性基因注釋;(g)高級(jí)功能注釋。 ⑦測序數(shù)據(jù)處理:(a)去除接頭序列;(b)掃描序列;(c)去除最終長度小于50 bp 的序列。

    1.5 HE 染色 取結(jié)腸組織置于4%多聚甲醛中固定,鹽酸緩沖液沖洗,酒精脫水過夜,蠟塊包埋后切片,HE 染色、反蘭,中性樹膠封片,置于光學(xué)顯微鏡下觀察結(jié)腸組織病理學(xué)的改變。

    1.6 Elisa 檢測 ①標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋;②加樣;③溫育;④配液;⑤洗滌;⑥加酶;⑦溫育;⑧洗滌;⑨顯色;⑩終止;○1 測定。

    1.7 Westernblot 法檢測 將結(jié)腸組織稱重、研磨、勻漿、離心,取上清液;煮沸;配置濃縮膠、分離膠,加入樣品進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳;舍去膠放入緩沖液,搖勻;利用濾紙、聚偏二氟乙烯蛋白印跡膜,制作夾膜,轉(zhuǎn)膜1 h;洗膜;洗膜后加入ZO-1 兔抗鼠多克隆抗體,occludin 兔抗鼠多克隆抗體,搖床孵育1 h;洗膜后加入羊抗兔免疫球蛋白IgG 多克隆抗體,放入搖床1 h;漂洗,通過電化學(xué)發(fā)光系統(tǒng)顯影,進(jìn)而分析免疫印跡灰度值,以磷酸甘油醛脫氫酶(reduced glyceraldehyde-phosphate dehydrogenase,GAPDH)作為內(nèi)參,以目的蛋白條帶灰度值與GAPDH 條帶灰度值的比值反映目的蛋白的表達(dá)水平。

    1.8 統(tǒng)計(jì)方法 采用SPSS 25.0 統(tǒng)計(jì)軟件處理,正態(tài)分布計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,兩亞組設(shè)計(jì)的實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組設(shè)計(jì)的實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析采用單因素方差分析,最小顯著差別法進(jìn)行兩兩比較,腸道菌群宏基因測序結(jié)果采用Student's t 檢驗(yàn)測量兩組間的差異,利用乘積矩系數(shù)進(jìn)行相關(guān)分析,P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 大鼠腸道菌群宏基因組學(xué)測序結(jié)果 各組大鼠腸道菌群的聚類分析:S 組、C 組和N 組各自聚集,分區(qū)良好,提示各組大鼠種植的腸道菌群組成存在明顯差異。 見圖1、2。

    圖1 各組大鼠腸道菌群的主坐標(biāo)分析

    2.2 各組大鼠腸道菌群的組成及差異顯著性分析S 組、C 組和N 組腸道菌群組成在屬水平上的相對豐度如圖3 所示,克雷伯菌屬(Klebsiella)、阿克曼菌屬(Akkermansia)、普雷沃菌屬(Prevotella)和乳桿菌屬(Lactobacillus)的表達(dá)在三組中均有明顯差異。 與S 組比較,C 組和N 組克雷伯菌屬的相對豐度明顯減低(P<0.05),而C 組和N 組間無明顯差異(P>0.05);與S 組比較,C 組阿克曼菌屬、普雷沃菌屬的相對豐度明顯增加(P<0.05),而N 組和S 組間無明顯差異(P>0.05);與S 組比較,N 組乳桿菌屬的相對豐度明顯增加(P<0.05),而C 組和S組間無明顯差異(P>0.05)。 見圖3。

    圖2 各組大鼠腸道菌群的非度量多維尺度分析

    S 組、C 組和N 組腸道菌群組成在種水平上的相對豐度如圖4 所示,肺炎克雷伯桿菌(Klebsiella_pneumoniae)、嗜黏蛋白-艾克曼菌(Akkermansia_muciniphila)和地中海-瑪斯里菌(Mediterranea_massiliensis)的表達(dá)在三組中均有明顯差異。 與S組比較,C 組和N 組肺炎克雷伯桿菌的相對豐度明顯減低(P<0.05),而C 組和N 組間無明顯差異(P>0.05);與S 組比較,C 組嗜黏蛋白-艾克曼菌的相對豐度明顯增加(P<0.05),而N 組和S 組間無明顯差異(P>0.05);與S 組比較,N 組地中海-瑪斯里菌的相對豐度明顯增加(P<0.05),而C 組和S組間無明顯差異(P>0.05)。 見圖4。

    圖4 各組大鼠腸道菌群在種水平上的變化分布圖

    2.3 各組大鼠結(jié)腸病理學(xué)變化 S 組出現(xiàn)不同程度的損傷表現(xiàn),絨毛縮短、腸黏膜水腫,細(xì)胞大量缺失并呈空泡樣變性;C 組腸黏膜層受損變短,核固縮、核深染增多;N 組黏膜層增厚,細(xì)胞形態(tài)規(guī)整,可見大量正常細(xì)胞,見圖5。

    圖5 各組大鼠結(jié)腸病理學(xué)變化(HE×200)

    2.4 各組炎性介質(zhì)濃度比較 與S 組比較,C 組和N 組大鼠血清IL-1β、IL-6 和TNF-α 的濃度均減低(P<0.05);與C 組比較,N 組大鼠術(shù)后7 d 血清IL-1β、IL-6 和TNF-α 的濃度明顯減低(P<0.05),見圖6。

    圖6 各組炎性因子濃度的比較

    2.5 各組免疫蛋白表達(dá) 與S 組比較,C 組和N組大鼠腸組織ZO-1、occludin 表達(dá)水平上調(diào)(P<0.05);與C 組比較,N 組大鼠腸組織ZO-1、occludin表達(dá)水平均上調(diào)(P<0.05),見圖7。

    圖7 各組大鼠ZO-1、occludin 蛋白的表達(dá)

    2.6 大鼠差異性腸道菌群與炎癥反應(yīng)嚴(yán)重程度的相關(guān)性分析 炎癥反應(yīng)的嚴(yán)重程度與血清炎性因子IL-1β、IL-6 和TNF-α 的水平成正相關(guān),故將三組大鼠的腸道菌群表達(dá)豐度測得的IL-1β、IL-6 和TNF-α 的水平進(jìn)行相關(guān)性分析,研究結(jié)果提示普雷沃菌屬、副沙門氏菌屬、腸桿菌屬、阿克曼菌屬、腸球菌屬和擬桿菌屬與炎癥反應(yīng)的嚴(yán)重程度成正相關(guān)(r=0.21,P<0.05),而狄氏副擬桿菌屬、乳桿菌屬與炎癥反應(yīng)的嚴(yán)重程度成負(fù)相關(guān)(r =-0.58,P<0.05)。

    3 討 論

    鑒于人類在體實(shí)驗(yàn)的局限性,限制了相關(guān)的檢測和機(jī)制研究,因此可將人類菌群通過糞菌移植(fecal microbiota transplants,F(xiàn)MT)的方法移植到動(dòng)物模型上。 FMT 是指將功能菌群移植到受體的消化道中,通過重建受體的腸道菌群達(dá)到研究或治療的目的[4],目前已成為研究腸道菌群與宿主關(guān)系的重要手段。 其優(yōu)勢在于人類的腸道菌群可通過該技術(shù)定植在無菌/偽無菌大鼠的消化道中,使實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的腸道菌群與人類更相近,實(shí)驗(yàn)結(jié)果與人類更具相關(guān)性。

    課題組前期實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),CPB 后的大鼠腸黏膜層縮短變薄,絨毛的上皮細(xì)胞有不同程度的變形、核固縮、核壞死,固有層存在炎性細(xì)胞浸潤以及充血水腫,證實(shí)CPB 可損傷大鼠的腸黏膜屏障[5]。 腸屏障損傷后可致大量毒性產(chǎn)物及促炎細(xì)胞因子的釋放,進(jìn)而誘發(fā)全身炎癥反應(yīng)綜合征以及多器官功能障礙綜合征,同時(shí)全身炎癥反應(yīng)也是CPB 促發(fā)腸損傷的相關(guān)機(jī)制之一。

    已有研究表明,腸道菌群的改變與炎癥反應(yīng)息息相關(guān),特定的腸道細(xì)菌及其代謝產(chǎn)物可發(fā)揮促炎或抑制炎癥反應(yīng)的作用,進(jìn)而引發(fā)腸屏障功能的改變[6]。 此外,腸屏障功能的穩(wěn)定性還有賴于腸上皮細(xì)胞間的特定連接方式,即ZO-1 和occludin 蛋白的表達(dá)。 它們是腸上皮細(xì)胞之間相互連接的骨架結(jié)構(gòu),構(gòu)成了腸黏膜組織的第一道防線,可防止大分子物質(zhì)在細(xì)胞間隙之間任意進(jìn)出,維持腸黏膜上皮的穩(wěn)定性,保護(hù)腸屏障功能的完整性。 本研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)腸道菌群作為干預(yù)因素時(shí),偽無菌組大鼠血清的IL-1β、IL-6 和TNF-α 表達(dá)水平最高,炎性反應(yīng)最明顯,腸組織ZO-1、occludin 的表達(dá)水平最低;與偽無菌大鼠比較,接受CPB 術(shù)后患者菌群移植的大鼠血清炎性因子表達(dá)有所減低,ZO-1、occludin 蛋白的表達(dá)水平均增加;而接受健康人菌群移植的大鼠血清炎性因子表達(dá)水平最低,ZO-1、occludin 蛋白的表達(dá)水平最高。 各組大鼠腸道菌群的組成及差異顯著性分析,炎癥反應(yīng)的嚴(yán)重程度可能與普雷沃菌屬、阿克曼菌屬的相對豐度增加,肺炎克雷伯菌的相對豐度減低有關(guān)。 現(xiàn)有研究表明,普雷沃菌屬具有較強(qiáng)的炎性特性,能刺激腸上皮細(xì)胞產(chǎn)生IL-8、IL-6 等炎性因子,從而介導(dǎo)黏膜炎癥反應(yīng)的發(fā)生,提示某些普雷沃菌株可能為臨床上重要的致病菌,可通過促進(jìn)慢性炎癥參與人類的相關(guān)疾病[7]。 而阿克曼菌屬一般被認(rèn)為是益生菌,可以降解腸黏膜的黏蛋白,降低肥胖、Ⅱ型糖尿病的發(fā)病率。 然而,最新研究發(fā)現(xiàn)在高糖飲食的小鼠體內(nèi)阿克曼菌屬的相對豐度過高,結(jié)腸組織黏膜層變薄,腸屏障功能受損,導(dǎo)致結(jié)腸炎的誘發(fā)和惡化[8]。 而本研究中,普雷沃菌屬和阿克曼菌屬均為炎癥水平升高組中的特征性腸道菌群,提示腸道菌群確實(shí)可參與炎癥反應(yīng)的發(fā)生和發(fā)展,進(jìn)而導(dǎo)致腸黏膜屏障損傷,且不同的特征性腸道菌群可發(fā)揮不同的促炎作用。

    綜上所述,CPB 后腸道菌群的改變所引起的炎癥級(jí)聯(lián)反應(yīng)是導(dǎo)致腸屏障功能損害的機(jī)制之一。 這可能是因?yàn)槠绽孜志鷮俸桶⒖寺鷮俚南鄬ωS度增加,促進(jìn)了有毒產(chǎn)物和炎性細(xì)胞因子的產(chǎn)生,損傷了腸屏障,進(jìn)而引發(fā)腸損傷。

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