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    丹參通絡解毒湯對缺氧/復氧大鼠心肌微血管內皮細胞自噬的影響

    2023-04-17 07:06:48王婷婷李鑫輝戴超男李彩云
    中國中醫(yī)藥信息雜志 2023年4期
    關鍵詞:復氧含藥貨號

    王婷婷,李鑫輝,戴超男,李彩云

    湖南中醫(yī)藥大學中醫(yī)學院,湖南 長沙 410208

    急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)是人類死亡的主要病因之一,臨床治療應盡早恢復缺血心肌血流灌注[1],但短時間內迅速恢復血流會出現更嚴重的損傷,即心肌缺血再灌注損傷(MIRI)。研究表明,在AMI的最終梗死面積中,約50%由缺血再灌注損傷造成[2]。再灌注期間,過度自噬導致自噬體大量積累及關鍵蛋白和細胞器異常降解,進而損傷細胞或誘導細胞自噬性凋亡[3-5]。因此,調節(jié)自噬對減輕MIRI有重要作用[6]。課題組前期研究發(fā)現,丹參通絡解毒湯能通過下調MALAT1基因表達,抑制缺氧/復氧大鼠心肌微血管內皮細胞(CMECs)自噬[7-8]。研究表明,SRPK1對MIRI有保護作用[9]。本研究以MALAT1調節(jié)CMECs自噬為切入點,進一步明確丹參通絡解毒湯調節(jié)缺氧/復氧損傷CMECs自噬的作用機制,為該方的臨床應用提供實驗依據。

    1 實驗材料

    1.1 細胞及動物

    CMECs,武漢普諾賽生命科技有限公司。SPF級雄性SD大鼠20只,體質量220~250 g,湖南斯萊克景達實驗動物有限公司提供,動物許可證號SYXK(湘)2019-0004,常規(guī)飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學動物實驗中心SPF級動物房。本研究經湖南中醫(yī)藥大學實驗動物倫理委員會審查批準(LL2019101604)。

    1.2 藥物及制備

    丹參通絡解毒湯(丹參15 g,玄參15 g,當歸10 g,黃連6 g,梔子15 g,生地黃15 g,麥冬12 g,金銀花10 g,連翹10 g,黃芪30 g),飲片由湖南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院提供。按前期方法[7]制備成含原藥材4 g/mL溶液。

    1.3 主要試劑與儀器

    CMECs完全培養(yǎng)基(武漢普諾賽,貨號CMR135),RNA免疫沉淀試劑盒(美國Sigma,貨號RIP),TRIzol(美國Thermo,貨號15596026),RIPA裂解液(上海碧云天,貨號P0013B),BCA蛋白濃度測定試劑盒(北京康為世紀,貨號CW0014S),顯影液(上海佳信,貨號BW-61),SRPK1抗體(英國Abcam,貨號ab90527),Beclin1抗體(英國Abcam,貨號ab92389),Bcl-2抗體(英國Abcam,貨號ab59348),Bax抗體(英國Abcam,貨號ab182733),LC3B抗體(美國Proteintech,貨號18725-1-AP),GAPDH抗體(美國Proteintech,貨號10494-1-AP),反轉錄試劑盒(北京康為世紀,貨號CW2569)。細胞培養(yǎng)箱(美國Thermo,型號STERI-CYCLE i250),生物安全柜(美國Thermo,型號1300 SERIES A2),熒光定量PCR儀(美國Thermo,型號PIKOREAL96),搖床(江蘇其林貝爾,型號TS-1),電泳儀(北京六一,型號DYY-2C),化學發(fā)光成像系統(tǒng)(中國勤翔,型號ChemiScope6100),倒置熒光顯微鏡(廈門Motic,型號BA210T)。

    2 實驗方法

    2.1 含藥血清制備

    20只大鼠隨機分為對照組和丹參通絡解毒湯組,每組10只。丹參通絡解毒湯組按臨床等效劑量15.66 g/(kg·d)灌胃,對照組灌胃等體積蒸餾水,每日2次,連續(xù)7 d。末次灌胃1 h后,水合氯醛麻醉大鼠,腹主動脈取血,4 ℃靜置4 h,3 000 r/min離心15 min,取血清,56 ℃滅活30 min,0.22 μm濾膜過濾除菌,分裝,-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    2.2 缺氧/復氧模型制備

    細胞用完全培養(yǎng)基置于37 ℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱培養(yǎng),生長至80%~90%時用于實驗。按課題組前期方法[10]造模:棄去原培養(yǎng)液,PBS沖洗3次,替換成無血清、不含糖DMEM培養(yǎng)基,置于37 ℃,氣體體積分數為94%N2、1%O2、5%CO2培養(yǎng)箱中缺氧2 h,更換為完全培養(yǎng)基,置于常規(guī)培養(yǎng)箱中復氧2 h。

    2.3 RNA免疫共沉淀檢測

    取對數生長期CMECs,胰酶消化,接種于T25細胞培養(yǎng)瓶中,分為空白組和模型組,空白組常規(guī)培養(yǎng),模型組按“2.2”項下方法造模。收集空白組和模型組細胞,加入RIPA裂解液裂解,一部分裂解產物作為對照(Input),一部分用于與非特異性IgG結合,一部分用于與SRPK1抗體結合。免疫磁珠對裂解產物進行預清除,將5 μg IgG和SRPK1抗體(1∶2 000)分別加入裂解產物中,4 ℃孵育過夜,加50 μL免疫磁珠混勻,4 ℃孵育2 h,收集免疫磁珠,TRIzol法抽提總RNA,并進行RT-PCR,以IgG/Input及SRPK1/Input的MALAT1表達量評價IgG和SRPK1與MALAT1結合能力。上游引物:5'-GGGGGAATGGGGGCAAAATA-3',下游引物:5'-AACTACCAGCAATTCCGCCA-3',產物長度213 bp。

    2.4 慢病毒轉染

    取生長狀態(tài)良好的CMECs,胰酶消化,調整細胞密度為2.5×104個/mL,接種于6孔板,每孔2 mL,當細胞貼壁融合至20%~30%,根據吉凱基因重組慢病毒載體使用手冊進行慢病毒轉染,加入計算好的病毒液(感染指數50),置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)11 h,棄去培養(yǎng)液,更換為完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)37 h,熒光顯微鏡下觀察轉染效率,轉染效率80%時效果最佳。

    2.5 細胞分組及處理

    取對數生長期CMECs,胰酶消化,調整細胞密度為2.5×104個/mL,接種于6孔板,先按“2.2”項下方法造模,再按“2.4”項下方法轉染MALAT1沉默慢病毒,確認轉染成功后,將細胞分為過表達SRPK1組(以SRPK1過表達慢病毒轉染CMECs后,加入對照血清培養(yǎng)基干預24 h)、過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組(以SRPK1過表達慢病毒轉染CMECs后,加入丹參通絡解毒湯含藥血清培養(yǎng)基干預24 h)、空載組(以空載慢病毒轉染CMECs后,加入對照血清培養(yǎng)基干預24 h)、空載聯(lián)合含藥血清組(以空載慢病毒轉染CMECs后,加入丹參通絡解毒湯含藥血清培養(yǎng)基干預24 h),根據課題組前期實驗結果[10],使用15%含藥血清。

    2.6 Western blot檢測

    干預結束后加入RIPA裂解液提取總蛋白,BCA試劑盒測定蛋白濃度,上樣、電泳、轉膜后,以5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,加Bcl-2一抗(1∶500)、Bax一抗(1∶2 000)、LC3B一抗(1∶300)、Beclin1一抗(1∶2 000)、GAPDH一抗(1∶3 000),4 ℃孵育過夜,加二抗室溫孵育90 min,ECL顯色曝光,凝膠成像系統(tǒng)成像,以GAPDH為內參,計算目的蛋白相對表達量。

    2.7 RT-PCR檢測

    干預結束后收集細胞,TRIzol法提取總RNA,采用反轉錄試劑盒對總RNA進行反轉錄,產物用于熒光定量PCR,反應條件:95 ℃、10 min;95 ℃、15 s,60 ℃、30s,共40個循環(huán)。以GAPDH為內參,2-ΔΔCt法分析各基因相對表達量。引物由北京擎科生物科技有限公司合成,引物序列見表1。

    表1 各基因PCR引物序列

    2.8 免疫熒光染色

    干預結束后收集細胞,將TC處理的細胞爬片放入浸潤好的6孔板中,調整細胞密度為2.5×104個/mL,接種于爬片,置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h。4%多聚甲醛固定爬片,加入0.3%Triton X-100,37 ℃通透30 min,PBS洗3次,每次3 min,滴加5%BSA封閉1 h,滴加LC3B一抗(1∶200),4 ℃孵育過夜,次日加入熒光二抗,37 ℃孵育90 min,PBS洗滌3次,每次5 min。DAPI染細胞核,37 ℃孵育10 min,緩沖甘油封片,于熒光顯微鏡下觀察并采集圖像,應用Image J軟件對圖片進行半定量分析,測量平均熒光強度。

    3 統(tǒng)計學方法

    采用SPSS26.0統(tǒng)計軟件進行分析。符合正態(tài)分布數據以±s表示,方差齊多組間比較采用方差分析,組間兩兩比較采用LSD檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。

    4 結果

    4.1 MALAT1與SRPK1結合情況驗證

    利用IgG及SRPK1抗體結合免疫磁珠富集總RNA后進行RT-PCR檢測,結果顯示,與同組IgG/Input比較,空白組和模型組與SRPK1抗體結合的MALAT1顯著升高(P<0.01),見表2。表明MALAT1與SRPK1蛋白存在特異性結合。

    表2 IgG、SRPK1與MALAT1結合能力比較(±s)

    表2 IgG、SRPK1與MALAT1結合能力比較(±s)

    注:與同組IgG/Input比較,**P<0.01

    SRPK1/Input組別n IgG/Input 2.63±0.03**2.60±0.22**空白組模型組3 3 1.00±0.08 0.81±0.21

    4.2 丹參通絡解毒湯含藥血清對細胞自噬和凋亡相關蛋白表達的影響

    與過表達SRPK1組比較,過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組和空載組細胞Bcl-2蛋白表達顯著升高(P<0.01,P<0.05),Bax、Beclin1蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值顯著降低(P<0.01);與過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組比較,空載聯(lián)合含藥血清組細胞Bcl-2蛋白表達顯著升高(P<0.01),Bax、Beclin1蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值顯著降低(P<0.01);與空載組比較,空載聯(lián)合含藥血清組細胞Bcl-2蛋白表達顯著升高(P<0.01),Bax、Beclin1蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值顯著降低(P<0.01)。見表3、圖1。

    表3 各組細胞Bax、Bcl-2、Beclin1蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值比較(±s)

    表3 各組細胞Bax、Bcl-2、Beclin1蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值比較(±s)

    注:與過表達SRPK1組比較,*P<0.05,**P<0.01;與過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組比較,##P<0.01;與空載組比較,&&P<0.01

    組別過表達SRPK1組過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組空載組空載聯(lián)合含藥血清組n3 3 3 3 Bcl-2 0.11±0.02 0.20±0.04*0.31±0.01**0.44±0.03##&&Bax 0.40±0.07 0.30±0.04**0.23±0.03**0.11±0.02##&&LC3BⅡ/LC3BⅠ1.00±0.30 0.36±0.01*0.23±0.02*0.07±0.01##&&Beclin1 1.00±0.03 0.70±0.03**0.52±0.02**0.20±0.04##&&

    圖1 各組細胞Bax、Bcl-2、Beclin1、LC3B蛋白免疫印跡

    4.3 丹參通絡解毒湯含藥血清對細胞LC3B mRNA表達的影響

    與過表達SRPK1組比較,過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組和空載組細胞LC3B mRNA表達顯著降低(P<0.05);與過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組比較,空載聯(lián)合含藥血清組細胞LC3B mRNA表達顯著降低(P<0.01);與空載組比較,空載聯(lián)合含藥血清組細胞LC3B mRNA表達顯著降低(P<0.01)。見表4。

    表4 各組細胞LC3B mRNA表達比較(±s)

    表4 各組細胞LC3B mRNA表達比較(±s)

    注:與過表達SRPK1組比較,*P<0.05;與過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組比較,##P<0.01;與空載組比較,&&P<0.01

    組別過表達SRPK1組過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組空載組空載聯(lián)合含藥血清組n 3 3 3 3 LC3B 1.00±0.01 0.66±0.02*0.55±0.02*0.40±0.02##&&

    4.4 丹參通絡解毒湯含藥血清對細胞LC3B蛋白表達的影響

    與過表達SRPK1組比較,過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組和空載組細胞LC3B表達降低(P<0.01);與過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組比較,空載聯(lián)合含藥血清組細胞LC3B表達降低(P<0.01);與空載組比較,空載聯(lián)合含藥血清組細胞LC3B表達降低(P<0.01)。見圖2、表5。

    圖2 各組細胞LC3B陽性表達(免疫熒光染色,×400)

    表5 各組細胞LC3B表達比較(±s,平均熒光強度)

    表5 各組細胞LC3B表達比較(±s,平均熒光強度)

    注:與過表達SRPK1組比較,**P<0.01;與過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組比較,##P<0.01;與空載組比較,&&P<0.01

    組別過表達SRPK1組過表達SRPK1聯(lián)合含藥血清組空載組空載聯(lián)合含藥血清組n 3 3 3 3 LC3B 77.42±1.51 56.96±3.35**42.81±2.24**31.36±1.19##&&

    5 討論

    AMI屬中醫(yī)學“胸痹”“心痛”“真心痛”等范疇。胸痹與熱、毒、瘀關系密切,火熱瘀結,毒損心營,引發(fā)胸痹、心痛[11-12]。丹參通絡解毒湯由李鑫輝教授根據《溫病條辨》清營湯和《時方歌括》丹參飲化裁而成,具有活血通絡、清營解毒、益氣養(yǎng)陰功效。前期藥理研究表明,該方可減輕MIRI大鼠心肌細胞損傷,保護受損心肌細胞,其機制與抑制自噬有關[13-14]。本實驗以沉默MALAT1抑制缺氧/復氧損傷CMECs自噬為切入點,進一步明確丹參通絡解毒湯調節(jié)缺氧/復氧損傷CMECs自噬的作用機制。

    MALAT1是一種長鏈非編碼RNA,在哺乳動物中含量非常豐富,且在全長范圍內高度保守,在人和鼠2個物種之間,MALAT1的高度同源序列位于其3'端[15-17]。MALAT1在調節(jié)心臟功能上發(fā)揮重要作用[18],其高表達被認為是AMI新的生物標志物[19]。SRPK1/2抑制劑能減輕心肌缺血再灌注所致大鼠心臟損傷,保護心肌結構[20]。有研究發(fā)現,在結直腸癌細胞株內,MALAT1與SRPK1蛋白存在相互作用[21]。本實驗結果表明,在缺氧/復氧刺激下,大鼠CMECs中MALAT1與SRPK1蛋白同樣存在特異性結合。

    基礎水平的自噬是對壓力的保護性反應,通過清除受損的蛋白質和老化的細胞器維持細胞內穩(wěn)態(tài)。再灌注階段自噬相關因子表達升高,導致過度自噬,誘導細胞自噬性死亡,加重心肌細胞凋亡[22]。因此,適當調控自噬有助于防治MIRI。Beclin1和LC3BⅡ/LC3BⅠ比值可用于反映自噬程度,Bcl-2和Bax是調節(jié)細胞凋亡的最主要因子。有研究顯示,缺氧/復氧損傷可上調小鼠心肌細胞MALAT1基因表達[23-24]。課題組前期研究也發(fā)現,丹參通絡解毒湯能通過下調MALAT1基因表達抑制TLR4/NF-κB信號通路,降低自噬水平,保護心肌組織[7-8]。本實驗結果表明,在沉默MALAT1基礎上過表達SRPK1,缺氧/復氧損傷CMECs Beclin1和Bax蛋白表達、LC3B mRNA和蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值升高,Bcl-2蛋白表達降低,提示過表達SRPK1可逆轉沉默MALAT1對缺氧/復氧損傷CMECs自噬及凋亡的抑制作用。在沉默MALAT1基礎上過表達SRPK1,再予丹參通絡解毒湯含藥血清干預,缺氧/復氧損傷CMECs Beclin1和Bax蛋白表達、LC3B mRNA和蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值降低,Bcl-2蛋白表達升高,表明丹參通絡解毒湯可抑制缺氧/復氧損傷CMECs自噬與凋亡。而僅在沉默MALAT1基礎上予丹參通絡解毒湯含藥血清干預,缺氧/復氧損傷CMECs Beclin1和Bax蛋白表達、LC3B mRNA和蛋白表達及LC3BⅡ/LC3BⅠ比值最低,Bcl-2蛋白表達最高,說明丹參通絡解毒湯能通過下調MALAT1、抑制SRPK1表達,抑制缺氧/復氧損傷CMECs自噬和凋亡。

    綜上所述,丹參通絡解毒湯抑制缺氧/復氧損傷CMECs自噬、保護CMECs作用可能與下調MALAT1、抑制SRPK1表達有關。本研究結果可為中醫(yī)藥防治AMI提供實驗依據。

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