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    豬源肺炎克雷伯菌熒光定量PCR 檢測方法的建立與應用

    2023-02-15 13:37:36郭學波邱振乾張超戰(zhàn)爽吳瑤
    中國動物檢疫 2023年2期
    關鍵詞:質(zhì)粒桿菌熒光

    郭學波,邱振乾,張超,戰(zhàn)爽,吳瑤

    1.漢唐和元(武漢)科技有限公司,湖北武漢 430070;

    2.宜城市動物疫病預防控制中心,湖北宜城 441400)

    肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae,Kp)屬于革蘭氏陰性菌,為腸桿菌科成員,對多種動物致病,是重要的醫(yī)源性感染菌之一[1]。研究表明,醫(yī)源性Kp 與動物源性Kp 親緣關系較近,攜帶的毒力因子大致相同[2-4],但后者具有較強的耐藥性和致病性[5]。Kp 的莢膜與致病力有關。當宿主免疫力降低時,Kp 能引起人呼吸道、泌尿道感染,有時可導致嚴重的腹膜炎、腦膜炎,甚至敗血癥[6-7],尤其易引起兒童肺炎;此外,也可引起牛乳腺炎[8]、母馬子宮炎[9]、新生仔豬敗血癥等疾病,導致極高的致病率和死亡率[10-11]。

    目前,Kp 常用的檢測方法有細菌分離鑒定、生化試驗、動物致病性試驗等,但這些方法均存在靈敏度較低、檢測耗時較長及費用較高等問題,因此建立一種快速準確靈敏的檢測方法已成為迫切需要。研究[12]表明,Khe基因具有溶血素活性,是Kp 高度保守且特異的基因序列,目前僅發(fā)現(xiàn)于Kp中。以Khe基因為靶標進行流行病學檢測,已應用于牛源Kp。本研究以Khe基因為靶標,建立了豬源Kp 的熒光定量PCR 快速檢測方法,以期為豬群肺炎克雷伯菌病的臨床診斷及防控提供有力的技術支撐。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 標準菌株與臨床樣品 大腸桿菌標準株(ATCC25922)、金黃色葡萄球菌標準株(ATCC29213)、化膿性鏈球菌標準株(ATCC19615),由杭州天和微生物試劑有限公司提供;豬源Kp、豬2 型鏈球菌、副豬嗜血桿菌、豬壞死桿菌、豬細胞內(nèi)勞森菌、豬丹毒桿菌,由華中農(nóng)業(yè)大學預防獸醫(yī)學實驗室提供;25 份肺炎癥狀病料,由湖北省各發(fā)病豬場送檢;115 份鼻咽拭子樣品,采自湖北省武漢市、宜城市、黃石市屠宰場。

    1.1.2 主要儀器與設備 美國伯樂CFX96 PCR儀,西安天隆TL988 全自動PCR 分析系統(tǒng),日本松下SANYO MIR-554-PC 恒溫培養(yǎng)箱,德國Eppendorf Centrifuge 5425R 高速冷凍離心機,英國Biochrom 超微量核酸/蛋白分析儀,武漢新縱科DS1000 Tissue Cell-destroyer 高效組織細胞樣品處理系統(tǒng),上海申安LDZM-60KCS 全自動高壓蒸汽滅菌鍋。

    1.1.3 主要試劑與耗材 麥康凱(MAC)培養(yǎng)基、肉湯培養(yǎng)基,購自Oxoid 公司;Taq酶、UNG 酶、酶稀釋液、膠回收試劑盒、細菌基因組DNA 提取試劑盒,購自武漢晟亞生物科技有限公司;腸桿菌科生化鑒定試劑盒,購自杭州天和微生物試劑有限公司。

    1.1.4 引物及探針設計 參考多株GenBank 上公布的豬源KpKhe基因序列,分析選定高度保守區(qū)域。利用Primer Express 3.0 和Beacon Designer 8軟件分別設計引物和探針,送至武漢奧科鼎盛生物科技有限公司合成(表1)。

    表1 引物和探針序列

    1.2 方法

    1.2.1 陽性標準品制備 按照細菌基因組DNA提取試劑盒說明書,提取Kp DNA。通過PCR 擴增Khe基因,經(jīng)電泳鑒定目的片段大小正確后,回收并純化目的片段,連接至pUC18-T 載體,轉(zhuǎn)化感受態(tài)細胞;測序結(jié)果與預期相符的作為陽性菌種,提取質(zhì)粒作為陽性質(zhì)粒,命名為pUC-Khe;采用超微量核酸分析儀測定陽性質(zhì)粒的濃度和純度,換算為拷貝數(shù);對陽性質(zhì)粒進行10倍梯度稀釋,作為陽性標準品。

    1.2.2 反應體系與擴增條件 以陽性質(zhì)粒pUC-Khe為模板,在熒光定量PCR 儀上依照反應體系進行反應。反應體系:2 × qPCR Mix 12.5 μL,Enzyme Mix 1.0 μL,KheF00A(5 μmol/L)和KheR00A(5 μmol/L)各1.0 μL,KheP00A(2.5 μmol/L)1.0 μL,模板2.0 μL,雙蒸水補至總反應體系25.0 μL。PCR 反應條件:UNG 酶50 ℃活化2 min;Taq酶95 ℃活化5 min;95 ℃15 s,58 ℃ 30 s(收集熒光),共40 個循環(huán)。

    1.2.3 標準曲線建立及靈敏性試驗 根據(jù)陽性質(zhì)粒實際濃度測定值,將pUC-Khe稀釋至拷貝數(shù)濃度為1.0×l07~1.0×103copies/μL 進行擴增反應,繪制標準曲線;建立標準曲線后,將pUC-Khe稀釋至拷貝數(shù)濃度為1.0×108~l.0×101copies/μL 進行熒光定量PCR 反應,確定該方法的最低檢測限。

    1.2.4 特異性試驗 提取大腸桿菌標準株(ATCC25922)、金黃色葡萄球菌標準株(ATCC29213)、化膿性鏈球菌標準株(ATCC19615)及豬2 型鏈球菌、副豬嗜血桿菌、豬壞死桿菌、豬細胞內(nèi)勞森菌、豬丹毒桿菌核酸,采用建立的熒光定量PCR 方法進行擴增,同時使用pUC-Khe質(zhì)粒為陽性對照,無菌無酶水為陰性對照,評價該方法的特異性。

    1.2.5 重復性試驗 分別取同批次提取的4 份等量Kp DNA,按上述反應體系與擴增條件進行熒光定量PCR 檢測,每份樣品重復5 次,進行批內(nèi)重復性試驗;分別取3 個不同批次提取的4 份等量Kp DNA,在完全相同的反應條件與體系下進行熒光定量PCR 檢測,進行批間重復性試驗。每次試驗均彼此獨立,互不影響。

    1.2.6 臨床樣品檢測 采用本研究建立的熒光PCR 方法和細菌分離鑒定方法,對25 份豬肺臟樣品病料及115 份豬鼻咽拭子樣品進行同步檢測,比較2 種方法的檢測結(jié)果。

    2 結(jié)果

    2.1 陽性標準品制備

    選擇1.5%瓊脂糖凝膠進行PCR 產(chǎn)物電泳。結(jié)果(圖1)顯示,目的片段大小為257 bp,與預期大小相符。構(gòu)建的質(zhì)粒經(jīng)測序驗證,與預期目的基因序列相符,表明成功構(gòu)建陽性質(zhì)粒。

    圖1 陽性質(zhì)粒構(gòu)建結(jié)果

    2.2 標準曲線建立及靈敏性試驗

    采用建立的方法檢測系列稀釋的陽性質(zhì)粒,以水作為陰性對照。根據(jù)Ct 結(jié)果,建立標準曲線。結(jié)果顯示,當陽性質(zhì)粒的拷貝數(shù)濃度為1.0×l07~1.0×103copies/μL 時,模板濃度與檢測Ct值之間具有良好的線性關系(R2=0.995 9)(圖2);當陽性質(zhì)粒濃度為101copies/μL 時,仍可見明顯擴增曲線(圖3)。

    圖2 標準曲線

    圖3 靈敏性試驗結(jié)果

    2.3 特異性試驗

    采用建立的方法檢測相關菌株的陽性核酸,以pUC-Khe為陽性對照,水為陰性對照(所有樣品均進行3 次重復試驗)。結(jié)果(圖4)顯示,對照菌株及陰性對照在反應中均無熒光信號出現(xiàn),而陽性質(zhì)粒pUC-Khe具有較好的擴增動力學曲線,表明本方法特異性較強。

    圖4 特異性試驗結(jié)果

    2.4 重復性試驗

    結(jié)果(表2)顯示,批內(nèi)變異系數(shù) 為0.54%~1.13%,批間變異系數(shù)為0.37%~1.27%,均不超過2%,表明該檢測方法具有較好的重復性。

    表2 重復性試驗結(jié)果

    2.5 臨床樣品檢測

    結(jié)果(表3)顯示,在140 份待檢病料中,建立的熒光定量PCR 方法檢測出陽性31 份,陽性率為22.14%;細菌分離鑒定方法檢測出陽性27 份,陽性率為19.29%。相比可知,熒光定量PCR 方法的陽性檢出率高于細菌分離鑒定方法。

    表3 兩種方法檢測臨床樣品結(jié)果比較

    3 討論

    針對Kp 的流行病學研究,目前多集中在人醫(yī)領域。對其耐藥性與致病性進行討論,其主要目的是為臨床用藥提供指導[13-15]。動物源性Kp 的流行病學研究相對較少,并且主要為牛源。豬源Kp 的研究大多集中于分離鑒定,有部分研究進行了分子生物學特性分析及流行病學調(diào)查。左偉等[16]對西藏林芝地區(qū)的60 份藏豬腹瀉糞便樣本進行Kp分離與生物學特性研究,結(jié)果分離出3 株藏豬源Kp,分離率為5%;李雪嵩[17]對吉林省部分規(guī)?;B(yǎng)豬場疑似受Kp 感染的病料進行致病性及致病基因分子生物學檢測,結(jié)果所有分離株都攜帶Khe基因;董萌萌等[18]對河南省疑似Kp 感染病例進行確診,其基因同源性與Kp 參考株均在98%以上。

    目前動物源性Kp 常用的檢測方法有細菌分離培養(yǎng)、革蘭氏染色、生化試驗以及動物致病性試驗等,但這些檢測方法都需對細菌進行培養(yǎng)。一方面對檢測場所的設施、環(huán)境、儀器以及人員有了更高的要求,另一方面增加了生物安全防護風險。近年來也有一些新的檢測方法,如付霞麗等[19]的16S rRNA 基因PCR 擴增,梁慧賢等[20]的全基因組測序等,但這些方法大都限于實驗室研究,未能推廣到養(yǎng)殖行業(yè)的現(xiàn)實應用中。本研究建立的熒光定量PCR 檢測方法,相比微生物學方法減少了二次污染的風險,并且檢出率更高;相比其他分子生物學方法,靈敏度更高,結(jié)果可直接觀察。本方法特異性強,能有效檢出Kp 分離株,并且和大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、化膿性鏈球菌、豬2 型鏈球菌、副豬嗜血桿菌、豬壞死桿菌、豬細胞內(nèi)勞森菌和豬丹毒桿菌等其他病原無交叉反應;靈敏度高,最低檢測限為10 copies/μL;重復性好,批內(nèi)及批間變異系數(shù)均小于2%。經(jīng)過臨床樣本檢測驗證,本方法的陽性檢出率高于細菌分離鑒定方法,說明本方法具有較好的應用價值,能夠用于豬群肺炎克雷伯菌病的診斷和防治。

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