張和平 謝榮 劉佳麗 李沁云 楊琨 馮江超
(川北醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,四川 南充 637000)
高血糖是引發(fā)糖尿病微血管并發(fā)癥的主要原因,而腎臟是糖尿病血管并發(fā)癥中常累及的器官,多數(shù)研究表明,糖尿病的發(fā)生,會使機(jī)體長期處于高血糖狀態(tài),不僅經(jīng)多種方式損傷腎小球,還會損傷腎小管間質(zhì),最終影響腎功能〔1〕。腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞是腎間質(zhì)的主要構(gòu)建細(xì)胞,與腎小管腎血管相互連接,當(dāng)其被活化后其細(xì)胞膜表面會出現(xiàn)較多活性物質(zhì),產(chǎn)生多種作用,調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化〔2〕。P2X7受體(R)是三磷酸腺苷(ATP)門控陽離子通道受體,屬于嘌呤受體P2X家族受體亞型之一,P2X7R由595個氨基酸殘基組成,由羥基端、氨基端、胞內(nèi)域、保守胞外環(huán)的兩次擴(kuò)膜蛋白所組成,在正常生理條件下,P2X7R在生長腎臟中極低表達(dá),但在腎臟處于病理狀態(tài)下時,P2X7R表現(xiàn)為顯著升高現(xiàn)象〔3〕。近年來隨著臨床上對糖尿病腎病的深入研究發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)-β1/p38絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)通路形成正負(fù)反饋機(jī)制參與此病的發(fā)展〔4~6〕。本文探討抑制P2X7R表達(dá)對高糖誘導(dǎo)的腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞TGF-β1/p38MAPK信號通路的影響。
1.1材料 腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞源于川北醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院病理科正常端腎臟組織。本研究獲得醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)。主要試劑:P2X7R序列設(shè)計、合成及慢病毒懸液制備(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司);小鼠抗大鼠TGF-β1抗體(上海一基實(shí)業(yè)有限公司);兔抗人p38MAPK抗體(武漢博歐特生物科技有限公司);兔抗大鼠Caspase-3抗體(深圳市豪地華拓生物科技有限公司)。
1.2P2X7R序列設(shè)計、合成及慢病毒懸液制備 根據(jù)siRNA設(shè)計原則,使用基因序列數(shù)據(jù)庫GenBank查找序列病獲得P2X7R基因序列,使用Ambion公司的在線設(shè)計軟件在P2X7R的序列中獲取特異序列作為干擾靶序列,之后利用基于局部比對算法的搜索工具(BLAST)分析設(shè)計序列的特異性,確定siRNA干擾靶序列及無同源性的陰性對照序列(siNC),siRNA干擾靶序列及無同源性的陰性對照序列、慢病毒懸液均由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司合成。siRNA干擾靶序列:5′-GCCACAACTATACCACHAGAA-3′;siNC序列:5′-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3′;慢病毒懸液規(guī)格均為1.0×10e11pfu/ml。
1.3腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞分離、鑒定 取川北醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院病理科行腎腫瘤切除的正常端腎臟組織,將腎盂組織、腎白膜去除后分離髓質(zhì)、皮質(zhì),將腎髓質(zhì)組織制備為1 mm3大小的組織塊,使用0.1%膠原酶溶液在溫度為37℃下消化后,過70、150目篩網(wǎng),采用DMEM-F12培養(yǎng)液(內(nèi)含10%胎牛血清)收集細(xì)胞懸液,之后做腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞鑒定,使用倒置相差顯微鏡觀察所收集的細(xì)胞,細(xì)胞呈現(xiàn)為梭形,采用免疫組化方法鑒定,細(xì)胞抗波形蛋白單抗為陽性、抗細(xì)胞角蛋白、抗desmin單抗為陰性即為人腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞。
1.4高糖誘導(dǎo)腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞 培養(yǎng)腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞,取對數(shù)生長期的培第3代細(xì)胞做細(xì)胞消化處理〔胰蛋白酶-乙二胺四乙酸(EDTA)〕,以1×104/ml的密度將細(xì)胞接種于96孔培養(yǎng)板中,當(dāng)細(xì)胞處于亞融合狀態(tài)時使用無血清培養(yǎng)液孵育1 d,當(dāng)細(xì)胞處于相對靜止期后做分組處理。將細(xì)胞分為空白組、高糖組、過表達(dá)組、沉默組,其中空白組細(xì)胞使用DMEM完全培養(yǎng)液+5.5 mmol/L葡萄糖培養(yǎng);高糖組使用DMEM完全培養(yǎng)液+25 mmol/L葡萄糖培養(yǎng);過表達(dá)組細(xì)胞使用2 ml按照1∶1比例所混合的siNC P2X7R慢病毒懸液和DMEM培養(yǎng)液+25 mmol/L葡萄糖培養(yǎng);沉默組細(xì)胞使用2 ml按照1∶1比例所混合的siRNA P2X7R慢病毒懸液和DMEM培養(yǎng)液+25 mmol/L葡萄糖培養(yǎng)。
1.5細(xì)胞增殖能力檢測 采用噻唑藍(lán)(MTT)法檢測細(xì)胞增殖情況,使用含有10% 胎牛血清培養(yǎng)液配單個細(xì)胞懸液,細(xì)胞按7×103個/孔接種于96孔板,每孔體積200 μl,培養(yǎng)2~4 d后,每孔加入MTT繼續(xù)孵育4 h后停止。孔內(nèi)培養(yǎng)清液直接吸棄,懸浮細(xì)胞上的培養(yǎng)清液需離心后再吸棄,每孔加入150 μl二甲基亞砜(DMSO),振蕩12 min,選擇570 nm波長,采用酶聯(lián)免疫吸附試驗檢測儀測定各孔光吸收值,記錄結(jié)果,以時間為橫坐標(biāo),吸收值為縱坐標(biāo)繪制細(xì)胞生長曲線。最后根據(jù)細(xì)胞增殖率計算公式,細(xì)胞增殖率=(細(xì)胞組OD值/參照值-1)×100%,對各組細(xì)胞增殖率進(jìn)行計算。
1.6細(xì)胞凋亡能力檢測 使用DxFLEX流式細(xì)胞儀(貝克曼庫爾特商貿(mào)(中國)有限公司)檢測各組細(xì)胞凋亡情況,將細(xì)胞傳代至5孔板中,在37℃、5%CO2環(huán)境下培養(yǎng)24 h、48 h、72 h后,加入0.25%胰蛋白酶消化,2 000 r/min離心處理5 min,收集離心處理后的細(xì)胞,磷酸鹽緩沖液(PBS)反復(fù)洗滌2次,每次洗滌3 min,再次離心收集細(xì)胞,加入1 ml碘化丙啶(PI)染液,在避光常溫下放置1 h,使用特異熒光標(biāo)記,標(biāo)記后在鞘液包裹下高速流動,流動期間發(fā)射光子,利用發(fā)光信號測量儀檢測光子數(shù)值,使用流式細(xì)胞儀檢測。
1.7各組細(xì)胞丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)含量檢測 采用硫代巴比妥酸比色法檢測各組細(xì)胞MDA含量,采用均相競爭抑制原理放免法檢測各組細(xì)胞SOD含量。
1.8各組細(xì)胞TGF-β1/p38MAPK信號通路因子表達(dá)量檢測 采用實(shí)時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)法測定各組細(xì)胞中TGF-β1/p38MAPK信號通路因子表達(dá)量,使用Trizol法提取細(xì)胞總RNA,以2 μg RNA作為初始模板,配制20 μl的總反應(yīng)體系,應(yīng)用Gene Amp PCR System 9700核酸擴(kuò)增儀做cDNA反轉(zhuǎn)錄,反應(yīng)條件:37℃ 15 min,85℃ 5 s,之后4℃保持,以所合成的cDNA為模板,以β-actin作為內(nèi)參,配制20 μl反應(yīng)體系,使用美國ABI 7300實(shí)時熒光定量PCR系統(tǒng)做擴(kuò)增熒光定量,PCR條件:95℃預(yù)變性60 s,95℃ 15 s,60℃ 30 s,72℃ 30 s,共進(jìn)行40個循環(huán)。采用2-△△Ct方法計算TGF-β1/p38MAPK信號通路因子TGF-β1、p38MAPK、Caspase-3 mRNA表達(dá)量。引物序列:TGF-β1上游:5′-ATTCCTGGC GTTACCTTGG-3′,下游:5′-ATTCCTGGCGTTACCTTGG-3′;p38MAPK:上游:5′-CAGCCCACGGACCAAATA-3′,下游:5′-AACGAGCATCTTCTCCAGTA-3′;β-actin:上游:5′-CTGTCCACCTTCCAGCAGATGT-3′,下游:5′-CGCAACTAAGTCATAGTCCGCC-3′。
1.9統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS20.0軟件進(jìn)行方差齊性檢驗、獨(dú)立樣本t檢驗。
2.1各組細(xì)胞增殖及凋亡情況比較 高糖組、過表達(dá)組、沉默組細(xì)胞增殖率及凋亡率明顯高于空白組(P<0.05);過表達(dá)組細(xì)胞增殖率明顯高于高糖組,凋亡率明顯低于高糖組(P<0.05);沉默組細(xì)胞增殖率明顯低于高糖組,凋亡率明顯高于高糖組(P<0.05);沉默組細(xì)胞增殖率明顯低于過表達(dá)組,凋亡率明顯高于過表達(dá)組(P<0.05)。見表1、圖1。
2.2各組細(xì)胞MDA、SOD水平比較 高糖組、過表達(dá)組、沉默組MDA水平明顯高于空白組,SOD水平明顯低于空白組(P<0.05);過表達(dá)組MDA水平明顯高于高糖組,SOD水平明顯低于高糖組(P<0.05);沉默組MDA水平明顯低于高糖組,SOD水平明顯高于高糖組(P<0.05);沉默組MDA水平明顯低于過表達(dá)組,SOD水平明顯高于過表達(dá)組(P<0.05)。見表2。
2.3各組細(xì)胞TGF-β1/p38MAPK信號通路因子表達(dá)量比較 高糖組、過表達(dá)組、沉默組TGF-β1、p38MAPK、Caspase-3 mRNA表達(dá)量均明顯高于空白組(P<0.05);過表達(dá)組TGF-β1、p38MAPK、Caspase-3 mRNA表達(dá)量均明顯高于高糖組(P<0.05);沉默組TGF-β1、p38MAPK、Caspase-3 mRNA表達(dá)量均明顯低于高糖組(P<0.05);沉默組TGF-β1、p38MAPK、Caspase-3 mRNA表達(dá)量均明顯低于過表達(dá)組(P<0.05)。見表2。
表1 各組細(xì)胞增殖和凋亡情況比較
圖1 72 h時各組細(xì)胞凋亡流式細(xì)胞圖
表2 各組細(xì)胞MDA、SOD水平及TGF-β1/p38MAPK信號通路因子表達(dá)量比較
糖尿病腎病是導(dǎo)致終末期腎衰竭的主要原因之一,其病變早期主要表現(xiàn)為高血糖所致的腎臟肥大、腎臟血流動力學(xué)紊亂、氧化應(yīng)激等,隨著病程的增加可引發(fā)腎小球硬化、腎間質(zhì)纖維化,當(dāng)上述病變發(fā)生后往往不可逆轉(zhuǎn),導(dǎo)致此病的治療較為棘手,嚴(yán)重威脅著患者的生命安全〔7〕。因此尋找早期診治糖尿病腎病的靶點(diǎn),對患者預(yù)后具有重要的意義。
P2X7R廣泛分布于腦、腎、肺、肝、肌肉、脾等多種組織中,主要在單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞上表達(dá)〔8,9〕。研究發(fā)現(xiàn)〔10〕,P2X7R參與多種腎臟疾病的發(fā)生發(fā)展,包括高血糖所致的腎功能損傷、腎毒性、腎血管梗阻所致的腎功能損傷、高血壓所致的腎損傷等。臨床研究發(fā)現(xiàn)〔11~13〕,糖尿病腎病發(fā)生后,P2X7R表達(dá)顯著升高,參與高血糖所致的腎功能損傷過程?;谇捌谘芯?,本文結(jié)果提示,抑制P2X7R表達(dá)可能經(jīng)抑制高血糖所誘導(dǎo)的腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞活化,抑制增殖,促進(jìn)凋亡,進(jìn)而減輕腎損傷。
TGF-β1具有較為廣泛的生物學(xué)作用,可促進(jìn)機(jī)體微環(huán)境中的胞外基質(zhì)纖維生成、誘導(dǎo)局部血管增生,參與糖尿病腎病的發(fā)生發(fā)展過程,TGF-β1在促進(jìn)胞外基質(zhì)纖維生成與多信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路相關(guān),其中MAPK通路為較為重要的一條通路,在機(jī)體處于高糖狀態(tài)時,此通路被激活,可將細(xì)胞外刺激信號傳遞至細(xì)胞核,與細(xì)胞損傷應(yīng)激、再生相關(guān),可在一定程度上促進(jìn)糖尿病腎病進(jìn)展〔14~16〕。p38MAPK屬于MAPK通路成員之一,在被胞外刺激后,會被磷酸化,其磷酸化后會移位至細(xì)胞核,參與細(xì)胞生物學(xué)行為過程,調(diào)節(jié)TGF-β1表達(dá)〔17〕。臨床研究發(fā)現(xiàn)〔18,19〕,高糖可激活p38MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,促進(jìn)TGF-β1表達(dá),而TGF-β1可增強(qiáng)p38MAPK活性,兩者相互作用參與腎小管間質(zhì)、腎小球損傷。另外有研究顯示〔20~22〕,TGF-β1/p38MAPK信號可引起機(jī)體氧化應(yīng)激,而氧化應(yīng)激的發(fā)生可增加氧自由基,表現(xiàn)為MDA含量升高,SOD含量降低。本文結(jié)果提示,P2X7R表達(dá)可能經(jīng)作用于TGF-β1/p38MAPK信號通路來抑制高血糖所誘導(dǎo)的腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞活化,抑制氧化應(yīng)激,抑制增殖,促進(jìn)凋亡,進(jìn)而減輕腎損傷。
綜上,抑制P2X7受體表達(dá)可經(jīng)影響高糖誘導(dǎo)的腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞TGF-β1/p38MAPK信號通路,抑制氧化應(yīng)激,抑制增殖,促進(jìn)凋亡,進(jìn)而減輕腎損傷,但目前臨床上并未有研究認(rèn)為兩者作用與高糖誘導(dǎo)的腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞相關(guān),且本文并未深入研究其具體作用機(jī)制,還需后續(xù)試驗進(jìn)一步加以證實(shí)。