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    復(fù)合菌株固態(tài)發(fā)酵對(duì)大豆皮營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的影響

    2022-07-11 07:18:42李英英丁立人朱平華曹新華朱崇淼杭蘇琴
    關(guān)鍵詞:乳酸桿菌麩皮氮源

    李英英 丁立人 朱平華 曹新華 李 琪 李 艷 朱崇淼 杭蘇琴*

    (1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,國(guó)家動(dòng)物消化道營(yíng)養(yǎng)國(guó)際聯(lián)合研究中心,南京 210095;2.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,動(dòng)物科學(xué)類國(guó)家級(jí)實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心,南京 210095;3.南京致潤(rùn)生物科技有限公司,南京 211200)

    我國(guó)是大豆消費(fèi)大國(guó),每年加工大豆產(chǎn)生的大豆皮產(chǎn)量可達(dá)1 200萬(wàn)t。大豆皮中粗纖維含量(34%)較高,木質(zhì)素含量(<2%)較低,可消化率較高[1],可作為潛在的畜禽飼料中的能量飼料。但由于大豆皮中高含量的粗纖維和抗?fàn)I養(yǎng)因子,如脲酶、胰蛋白酶抑制因子、大豆抗原蛋白等,限制了其在動(dòng)物生產(chǎn)中的利用[2]。目前提高大豆皮營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的處理方法主要有物理法和化學(xué)法,其中物理法成本較高,化學(xué)法易造成酸堿的殘留。有研究表明,微生物發(fā)酵可有效降解飼料纖維并消除抗?fàn)I養(yǎng)因子[3],但目前利用微生物發(fā)酵大豆皮的研究還較少。乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌是目前常用的發(fā)酵菌種,其中,乳酸桿菌發(fā)酵可產(chǎn)生乳酸,降低pH,抑制病原菌生長(zhǎng),防止飼料霉變[4],還能降解抗?fàn)I養(yǎng)因子,產(chǎn)生細(xì)菌素等活性物質(zhì)[5];芽孢桿菌發(fā)酵可分泌纖維素酶等,降解纖維素和半纖維素[6];酵母菌發(fā)酵可將纖維類物質(zhì)轉(zhuǎn)化為菌體蛋白,從而提高飼料營(yíng)養(yǎng)價(jià)值[7]。微生物發(fā)酵時(shí)補(bǔ)充碳源、氮源可顯著促進(jìn)菌株生長(zhǎng),提高發(fā)酵效果[8-9]。但目前關(guān)于發(fā)酵大豆皮所選取的發(fā)酵菌株種類尚沒(méi)有明確標(biāo)準(zhǔn),導(dǎo)致大豆皮的發(fā)酵效果得不到保證。

    本試驗(yàn)選取實(shí)驗(yàn)室保藏的乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌各4株,分別測(cè)定其生長(zhǎng)特性,篩選適宜的菌株作為候選菌株,分別用乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌單一菌株和復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮,比較單一菌株和復(fù)合菌株發(fā)酵對(duì)大豆皮營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的改善效果;在此基礎(chǔ)上,于發(fā)酵基質(zhì)中補(bǔ)充碳源(麩皮)和氮源(硝酸銨、氯化銨、尿素),進(jìn)一步分析大豆皮的營(yíng)養(yǎng)成分,評(píng)價(jià)發(fā)酵效果,為大豆皮在養(yǎng)殖生產(chǎn)中的利用奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)原料

    大豆皮、麩皮、尿素均由江蘇省南通市某合作社提供,大豆皮、麩皮粉碎后過(guò)40目篩備用。

    1.2 試驗(yàn)菌株

    乳酸桿菌:糞腸球菌JN4(EnterococcusfaecalisJN4)、干酪乳桿菌334(Lactobacilluscasei334)、植物乳桿菌RS1(LactobacillusplantarumRS1)和植物乳桿菌LY19(LactobacillusplantarumLY19)為本實(shí)驗(yàn)室前期自行分離保存。

    芽孢桿菌:枯草芽孢桿菌KC1(BacillussubtilisKC1)、納豆芽孢桿菌ND1(BacillusnattoND1)和枯草芽孢桿菌KC2(BacillussubtilisKC2)為本實(shí)驗(yàn)室前期自行分離保存,枯草芽孢桿菌6633(Bacillussubtilis6633)購(gòu)自中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心。

    酵母菌:釀酒酵母菌SC(SaccharomycescerevisiaeSC)、產(chǎn)朊假絲酵母菌CR1(CandidautilisCR1)和釀酒酵母菌NJ(SaccharomycescerevisiaeNJ)為本實(shí)驗(yàn)室前期自行分離保存,產(chǎn)朊假絲酵母菌CR2(CandidautilisCR2)購(gòu)自中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心。

    1.3 菌株的活化和篩選

    將-20 ℃保存的乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌各4株按1%(體積比)接種量分別接種于MRS、LB和YPD培養(yǎng)基(青島海博生物有限公司),37 ℃培養(yǎng)24 h進(jìn)行活化,之后每3 h取樣,測(cè)定培養(yǎng)液的600 nm處吸光度(OD600)值、pH、活菌數(shù)、乳酸產(chǎn)量(芽孢桿菌)、濾紙酶活性(芽孢桿菌)和菌體蛋白產(chǎn)量(酵母菌),挑選出適宜的單一菌株用于后續(xù)試驗(yàn)。

    1.4 單一菌株和復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮

    將10 g大豆皮、20 mL水加入到160 mL發(fā)酵瓶中,混勻后1×105Pa滅菌15 min,作為大豆皮培養(yǎng)基。隨后將活化的乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌單一菌株分別以3%(體積質(zhì)量比,1×108CFU/mL)接種量接種至大豆皮培養(yǎng)基中,為單一菌株發(fā)酵組;再將乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌等比例混合后按照3%的接種量接種至大豆皮中,為復(fù)合菌株發(fā)酵組。每組發(fā)酵瓶中密封前均有正??諝猓冗M(jìn)行有氧發(fā)酵,瓶中氧氣耗盡后進(jìn)行厭氧發(fā)酵,每組設(shè)置3個(gè)重復(fù),37 ℃發(fā)酵48 h,發(fā)酵結(jié)束后檢測(cè)產(chǎn)氣量、pH、乳酸產(chǎn)量和活菌數(shù)。

    1.5 補(bǔ)充碳源和氮源發(fā)酵大豆皮

    補(bǔ)充碳源(麩皮):將10 g大豆皮、20 mL水加入160 mL發(fā)酵瓶中,試驗(yàn)分5組,試驗(yàn)組分別添加0、5%、10%和20%的麩皮,空白組為未經(jīng)任何處理的大豆皮原料,混勻后1×105Pa滅菌15 min后備用;乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌等比例混合后按照3%的接種量接種至試驗(yàn)組的大豆皮培養(yǎng)基中,37 ℃發(fā)酵48 h,通氣條件同1.4,發(fā)酵結(jié)束檢測(cè)菌株的生長(zhǎng)發(fā)酵特性,分析大豆皮的營(yíng)養(yǎng)成分,確定麩皮的適宜添加量用于后續(xù)試驗(yàn)。

    補(bǔ)充氮源(硝酸銨、氯化銨、尿素):將10 g大豆皮、20 mL水加入160 mL發(fā)酵瓶中并添加一定量的麩皮(由上一步的結(jié)果確定),不同氮源組分別添加1%硝酸銨、1%氯化銨和1%尿素,對(duì)照組不添加任何氮源,空白組為未經(jīng)任何處理的大豆皮原料;混勻后1×105Pa滅菌15 min后備用;乳酸桿菌、芽孢桿菌和酵母菌等比例混合后按照3%的接種量接種至不同氮源組和對(duì)照組的大豆皮培養(yǎng)基中,37 ℃發(fā)酵48 h,通氣條件同1.4,發(fā)酵結(jié)束檢測(cè)菌株的生長(zhǎng)發(fā)酵特性,并分析大豆皮的營(yíng)養(yǎng)成分。

    1.6 測(cè)定指標(biāo)與方法

    采用乳酸試劑盒(A019-2-1,南京建成生物工程研究所)測(cè)定乳酸產(chǎn)量;采用考馬斯亮藍(lán)比色法[10]測(cè)定菌體蛋白產(chǎn)量;根據(jù)Theodorou等[11]方法測(cè)定產(chǎn)氣量并以累積產(chǎn)氣量表示;采用稀釋涂布平板法[12]檢測(cè)活菌數(shù);采用凱氏定氮法[13]測(cè)定粗蛋白質(zhì)、真蛋白質(zhì)含量;采用濾袋法[13]測(cè)定中性洗滌纖維(NDF)和酸性洗滌纖維(ADF)含量;采用滴定法測(cè)定脲酶活性;采用酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)試劑盒(南京奧青生物技術(shù)有限公司,型號(hào)分別為ANG-E55247P、ANG-E55248P)測(cè)定抗原蛋白(大豆球蛋白和β-伴大豆球蛋白)含量。

    1.7 統(tǒng)計(jì)分析

    采用GraphPad Prism 7.0軟件作圖,通過(guò)SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行單因素方差分析(one-way ANOVA),采用Tukey’s-b法進(jìn)行顯著性檢驗(yàn),數(shù)據(jù)以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”表示,P<0.05表示差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單一菌株的生長(zhǎng)特性

    由圖1可見(jiàn),植物乳桿菌LY19在24 h時(shí)活菌數(shù)和乳酸產(chǎn)量均最高,顯著高于糞腸球菌JN4(P<0.05),pH較低。由圖2可見(jiàn),納豆芽孢桿菌ND1在24 h時(shí)活菌數(shù)、乳酸產(chǎn)量和濾紙酶活性均最高,顯著高于其他芽孢桿菌(P<0.05),pH最低。由圖3可見(jiàn),釀酒酵母菌NJ在24 h時(shí)活菌數(shù)顯著高于釀酒酵母菌SC和產(chǎn)朊假絲酵母CR1(P<0.05),且菌體蛋白產(chǎn)量顯著高于其他酵母菌(P<0.05)。因此,選擇植物乳桿菌LY19、納豆芽孢桿菌ND1和釀酒酵母菌NJ用于后續(xù)大豆皮的發(fā)酵試驗(yàn)。

    A:生長(zhǎng)曲線 growth curve;B:活菌數(shù) number of viable bacteria;C:pH;D:乳酸產(chǎn)量 lactic acid yield。JN4:糞腸球菌JN4 Enterococcus faecalis JN4;334:干酪乳桿菌334 Lactobacillus casei 334;RS1:植物乳桿菌RS1 Lactobacillus plantarum RS1;LY19:植物乳桿菌LY19 Lactobacillus plantarum LY19。

    A:生長(zhǎng)曲線 growth curve;B:pH;C:活菌數(shù) number of viable bacteria;D:乳酸產(chǎn)量 lactic acid yield,E:濾紙酶活性 filter paper enzyme activity。6633:枯草芽孢桿菌6633 Bacillus subtilis 6633;KC1:枯草芽孢桿菌KC1 Bacillus subtilis KC1;ND1:納豆芽孢桿菌ND1 Bacillus natto ND1;KC2:枯草芽孢桿菌KC2 Bacillus subtilis KC2。

    A:生長(zhǎng)曲線 growth curve;B:活菌數(shù) number of viable bacteria;C:菌體蛋白產(chǎn)量 bacterial protein yield。SC:釀酒酵母菌SC Saccharomyces cerevisiae SC;NJ:釀酒酵母菌NJ Saccharomyces cerevisiae NJ;CR2:產(chǎn)朊假絲酵母菌CR2 Candida utilis CR2;CR1:產(chǎn)朊假絲酵母菌CR1 Candida utilis CR1。

    2.2 單一菌株和復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的特性

    由表1可知,復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的產(chǎn)氣量顯著高于各單一菌株發(fā)酵(P<0.05),pH顯著低于各單一菌株發(fā)酵(P<0.05),乳酸產(chǎn)量?jī)H顯著高于單一菌株納豆芽孢桿菌ND1發(fā)酵(P<0.05)。復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的活菌數(shù)顯著高于單一菌株植物乳桿菌LY19和納豆芽孢桿菌ND1發(fā)酵(P<0.05),但與單一菌株釀酒酵母NJ發(fā)酵無(wú)顯著差異(P>0.05)。這表明復(fù)合菌株發(fā)酵效果優(yōu)于單一菌株發(fā)酵,因此選擇復(fù)合菌株發(fā)酵用于后續(xù)試驗(yàn)。

    表1 單一菌株和復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的特性

    2.3 添加麩皮對(duì)發(fā)酵大豆皮發(fā)酵特性和營(yíng)養(yǎng)成分的影響

    由表2可知,添加麩皮能促進(jìn)菌株對(duì)大豆皮的發(fā)酵,與添加0麩皮組相比,添加5%、10%、20%麩皮組的產(chǎn)氣量及乳酸桿菌、芽孢桿菌、酵母菌活菌數(shù)均顯著提高(P<0.05),pH顯著降低(P<0.05)。由表3可知,與空白組相比,添加10%麩皮組的粗蛋白質(zhì)含量提高了19.98%(P<0.05),真蛋白質(zhì)含量提高了22.43%(P<0.05),中性洗滌纖維含量降低了11.43%(P<0.05),酸性洗滌纖維含量降低了14.17%(P<0.05)。與空白組和添加0麩皮組相比,添加10%麩皮組的脲酶活性顯著下降(P<0.05),球蛋白和β-伴大豆球蛋白降解率顯著提高(P<0.05)。因此,選擇添加10%麩皮作為發(fā)酵大豆皮時(shí)的碳源用于后續(xù)試驗(yàn)。

    表2 添加麩皮對(duì)發(fā)酵大豆皮發(fā)酵特性的影響

    表3 添加麩皮對(duì)發(fā)酵大豆皮營(yíng)養(yǎng)成分的影響

    2.4 添加不同氮源對(duì)發(fā)酵大豆皮發(fā)酵特性和營(yíng)養(yǎng)成分的影響

    由表4可知,添加不同氮源提高了菌株的發(fā)酵特性,與對(duì)照組相比,添加硝酸銨、氯化銨和尿素組的乳酸桿菌、芽孢桿菌、酵母菌活菌數(shù)顯著提高(P<0.05),添加氯化銨和尿素組的產(chǎn)氣量、pH、乳酸產(chǎn)量均顯著提高(P<0.05)。由表5可知,與空白組和對(duì)照組相比,添加硝酸銨、氯化銨和尿素組的粗蛋白質(zhì)含量顯著提高(P<0.05),中性洗滌纖維、酸性洗滌纖維含量顯著降低(P<0.05),脲酶活性顯著降低(P<0.05),球蛋白和β-伴大豆球蛋白降解率顯著提高(P<0.05);添加尿素組的真蛋白含量顯著提高(P<0.05)。因此,選擇尿素作為氮源添加到發(fā)酵大豆皮中。

    表4 不同氮源對(duì)發(fā)酵大豆皮發(fā)酵特性的影響

    表5 不同氮源對(duì)發(fā)酵大豆皮營(yíng)養(yǎng)成分的影響

    3 討 論

    3.1 發(fā)酵菌株的篩選

    目前用于發(fā)酵的菌株種類繁多且生理作用不同,因此首先要進(jìn)行發(fā)酵菌株的篩選。篩選乳酸桿菌的重要指標(biāo)之一就是乳酸產(chǎn)量,因此本研究根據(jù)乳酸桿菌的乳酸產(chǎn)量等指標(biāo)發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌LY19在24 h時(shí)乳酸產(chǎn)量達(dá)到107.24 mmol/L,pH最低為3.76,且活菌數(shù)最多,表明植物乳桿菌LY19具有良好的生長(zhǎng)特性,因此選擇植物乳桿菌LY19作為發(fā)酵菌株。芽孢桿菌可產(chǎn)生纖維素酶降解纖維,本試驗(yàn)根據(jù)濾紙酶活性等指標(biāo)發(fā)現(xiàn)納豆芽孢桿菌ND1產(chǎn)生的濾紙酶活性達(dá)24.51 FPU/mL。國(guó)立東等[14]從發(fā)酵豆豉中分離到的芽孢桿菌產(chǎn)纖維素酶活性為21.14 U/mL,與本研究結(jié)果相似,因此選擇納豆芽孢桿菌ND1作為發(fā)酵菌株。酵母菌可以通過(guò)自身繁殖產(chǎn)生菌體蛋白[15],本研究發(fā)現(xiàn)釀酒酵母菌NJ的菌體蛋白產(chǎn)量高于其他酵母菌,且釀酒酵母菌NJ的活菌數(shù)及OD600值較高,因此選擇釀酒酵母菌NJ作為發(fā)酵菌株。

    3.2 復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的效果

    單菌株作用單一,使用單一菌株發(fā)酵大豆皮效果往往難以達(dá)到理想狀態(tài)。Refstie等[16]研究表明,單獨(dú)用乳酸桿菌發(fā)酵豆粕對(duì)植酸的降解作用不明顯,而有研究表明復(fù)合菌株之間可能存在共生協(xié)同關(guān)系,能幫助微生物更好地適應(yīng)復(fù)雜的環(huán)境系統(tǒng)[17]。本研究中,復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的產(chǎn)氣量、pH、活菌數(shù)等均優(yōu)于植物乳桿菌、納豆芽孢桿菌和釀酒酵母菌單獨(dú)發(fā)酵,其原因可能與3株菌株之間存在共生協(xié)同關(guān)系,有助于微生物適應(yīng)環(huán)境有關(guān)[18]。植物乳桿菌LY19發(fā)酵產(chǎn)生乳酸,可降低大豆皮的pH而抑制病原微生物生長(zhǎng);納豆芽孢桿菌ND1能夠降低大豆皮中的脲酶,并產(chǎn)生維素酶降解大豆皮中的纖維生成單糖;而釀酒酵母菌NJ則可以利用芽孢桿菌產(chǎn)生的單糖進(jìn)行生長(zhǎng),產(chǎn)生菌體蛋白,提高大豆皮中蛋白質(zhì)含量。此外,納豆芽孢桿菌ND1和釀酒酵母菌NJ發(fā)酵消耗大量氧氣,進(jìn)而為植物乳桿菌LY19生長(zhǎng)提供厭氧環(huán)境?;诖?,3株菌株在大豆皮發(fā)酵過(guò)程中共同作用從而提高了發(fā)酵效果。Zhang等[19]用乳酸桿菌、枯草芽孢桿菌和釀酒酵母菌復(fù)合發(fā)酵豆粕,發(fā)現(xiàn)可以去除豆粕中的蛋白酶抑制劑等抗?fàn)I養(yǎng)因子,從而提高豆粕的飼用價(jià)值。胡永娜等[20]采用枯草芽孢桿菌、產(chǎn)朊假絲酵母和糞腸球菌混合發(fā)酵菜籽粕,結(jié)果發(fā)現(xiàn),菜籽粕中的異硫氰酸酯和唑烷硫酮等抗?fàn)I養(yǎng)因子的降解率高達(dá)80%以上。這與本研究復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮效果優(yōu)于單一菌株的結(jié)果一致,表明復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮效果優(yōu)于單一菌株發(fā)酵大豆皮。

    3.3 大豆皮發(fā)酵效果的優(yōu)化

    前期研究表明,復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的效果優(yōu)于單一菌株發(fā)酵,為了進(jìn)一步提高復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的效果,更好地改善大豆皮的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,可通過(guò)添加碳源如麩皮來(lái)促進(jìn)菌株的生長(zhǎng)。麩皮中約含有20%可溶性纖維,可被微生物利用促進(jìn)增殖。童鑫等[21]用釀酒酵母和嗜酸乳桿菌發(fā)酵棗渣時(shí)加入碳源、氮源和無(wú)機(jī)鹽,顯著提高了棗渣的蛋白質(zhì)含量。本研究中,添加10%麩皮促進(jìn)了菌株在大豆皮中的生長(zhǎng)和發(fā)酵,大豆皮的粗蛋白質(zhì)含量提高了19.98%,真蛋白質(zhì)含量提高了22.43%,中性洗滌纖維含量降低了11.43%,酸性洗滌纖維含量降低了14.17%;同時(shí),抗?fàn)I養(yǎng)因子脲酶活性降至0.15 U/g,抗原蛋白降解率提高,可見(jiàn)添加麩皮后大豆皮品質(zhì)有一定的提高,這與張開(kāi)磊等[22]的研究結(jié)果一致。此外,氮源也是微生物生長(zhǎng)發(fā)酵所必需的物質(zhì),因此在添加麩皮的基礎(chǔ)上又添加了不同種類的氮源來(lái)進(jìn)一步促進(jìn)發(fā)酵效果。本研究中,添加不同種類的氮源(硝酸銨、氯化銨和尿素)提高了菌株的發(fā)酵特性,并且大豆皮的粗蛋白質(zhì)、真蛋白質(zhì)含量提高,中性洗滌纖維、酸性洗滌纖維含量降低,抗?fàn)I養(yǎng)因子含量也降低。這表明添加不同種類的氮源促進(jìn)了復(fù)合菌株的生長(zhǎng),從而提高了發(fā)酵效果,蛋白質(zhì)含量的增加可能是酵母菌菌體利用額外添加氮源合成自身蛋白質(zhì)的絕對(duì)增長(zhǎng)[23]。陳廣銀等[24]研究發(fā)現(xiàn),在厭氧發(fā)酵麥稈過(guò)程中添加不同氮源(尿素、氯化銨、硝酸鉀)提高了微生物活性,主要體現(xiàn)在厭氧微生物的產(chǎn)氣能力和產(chǎn)氣速率提高,促進(jìn)了微生物對(duì)麥稈纖維素和半纖維素的降解,且添加尿素的效果最好,這與本研究結(jié)果一致。本研究中,添加1%尿素作為發(fā)酵大豆皮的氮源時(shí),粗蛋白質(zhì)含量提高了34.09%,中性洗滌纖維含量降低了16.38%,酸性洗滌纖維含量降低了16.11%,球蛋白和β-伴大豆球蛋白降解率分別提高了23.29%和24.20%,脲酶活性降低至0.01 U/g。因此,選擇添加1%尿素作為發(fā)酵大豆皮的氮源效果較好。

    4 結(jié) 論

    植物乳桿菌LY19、納豆芽孢桿菌ND1和釀酒酵母NJ復(fù)合菌株具有發(fā)酵大豆皮的潛力;通過(guò)單因素試驗(yàn),優(yōu)化了復(fù)合菌株發(fā)酵大豆皮的條件,即添加10%麩皮和1%尿素,在料水比1∶2、發(fā)酵時(shí)間48 h、發(fā)酵溫度37 ℃的條件下,復(fù)合菌株能降低大豆皮中纖維(中性洗滌纖維、酸性洗滌纖維)含量,降低脲酶活性,提高球蛋白和β-伴大豆球蛋白降解率,改善其營(yíng)養(yǎng)價(jià)值。

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