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      “美酒”白掌莖尖培養(yǎng)及組培快繁技術(shù)

      2022-06-28 01:17:32吳賢彬黃明翅宿慶連曾偉達(dá)周曉云
      關(guān)鍵詞:叢生增殖率生長素

      吳賢彬,黃明翅,夏 晴,宿慶連,曾偉達(dá),周曉云

      (廣州花卉研究中心,廣東 廣州 510360)

      “美酒”白掌(Spathiphyllum kochii ‘mojo’)是白掌的一個(gè)栽培品種,其花葉具有較高的觀賞價(jià)值,且株型嬌小、耐陰,又具有凈化室內(nèi)空氣的功效[1],適合家庭及辦公場所擺放,深受廣大消費(fèi)者的喜愛,其市場前景廣闊。

      莖尖培養(yǎng)并進(jìn)行組培快繁是獲得優(yōu)質(zhì)種苗的重要途徑,該技術(shù)已應(yīng)用于部分作物[2-3]、果蔬[4-5]、花卉[6-8]種苗的繁殖生產(chǎn)中。目前。關(guān)于白掌組培快繁的研究報(bào)道較多,常用葉片、葉柄、頂芽、莖段、花梗、花序等組織或器官作外植體,表面消毒難度均較高,污染率介于10%~87%之間[9],外植體損耗大,且經(jīng)過多代培養(yǎng)后,易產(chǎn)生內(nèi)生細(xì)菌而影響其后續(xù)增殖及成苗質(zhì)量。白掌莖尖被葉柄緊密包裹,受環(huán)境污染的影響較小,但剝?nèi)±щy。目前,關(guān)于白掌莖尖離體培養(yǎng)和快繁的研究鮮有報(bào)道。因此,研究“美酒”白掌莖尖離體培養(yǎng)技術(shù),對(duì)提高其外植體利用率、生產(chǎn)優(yōu)質(zhì)種苗具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。

      1 材料與方法

      1.1 供試材料

      選取廣州花卉研究中心生長健壯、無病蟲害的2年生“美酒”白掌。

      1.2 試驗(yàn)方法

      1.2.1 莖尖消毒 將整株切下,留莖段(帶4~5片葉柄)約5 cm,沖洗、晾干。用0.6%含氯消毒溶液(以君鴻牌消毒粉配制,其有效氯質(zhì)量分?jǐn)?shù)為18%~21%)振蕩清潔40 min,期間換1次消毒液;再用去離子水沖洗干凈,在無菌條件下剝?nèi)?片葉柄,加入0.1% HgCl2溶液再分別浸泡消毒4、8和12 min;用滅菌去離子水沖洗6次,吸干水分,剝?nèi)≈睆?~2 mm莖尖,測量其基部直徑,并培養(yǎng)于1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA培養(yǎng)基上,每處理10個(gè)莖尖,3次重復(fù)。培養(yǎng)30 d后統(tǒng)計(jì)其污染莖尖數(shù),并計(jì)算污染率;40 d后測量莖尖基部直徑,計(jì)算莖尖生長量。計(jì)算公式如下:

      污染率(%)=污染莖尖數(shù)/莖尖總數(shù)×100%

      莖尖生長量(mm)=培養(yǎng)后莖尖基部直徑(mm)-培養(yǎng)前莖尖基部直徑(mm)

      1.2.2 莖尖培養(yǎng) 將滅菌莖尖培養(yǎng)在不同基本培養(yǎng)基(MS、1/2MS、1/4MS)、含不同濃度細(xì)胞分裂素(6-BA、KT)、含不同濃度生長素(NAA、IBA、IAA)培養(yǎng)基中,每處理接種6個(gè)莖尖,3次重復(fù)。培養(yǎng)40 d后測量莖尖基部的直徑,并計(jì)算莖尖生長量。測量后轉(zhuǎn)接至1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),直至分化出叢生芽。

      1.2.3 叢生芽增殖培養(yǎng) 將叢生芽以單芽、雙芽、三芽和四芽的團(tuán)塊接種培養(yǎng)在不同基本培養(yǎng)基(MS、3/4MS、1/2MS),并添加0.6 mg/L 6-BA和0.02 mg/L NAA的培養(yǎng)基中,每瓶培養(yǎng)基4個(gè)芽團(tuán),每處理5瓶,3次重復(fù)。培養(yǎng)40 d后統(tǒng)計(jì)其叢生芽數(shù),并計(jì)算叢生芽增殖率。

      將叢生芽以單芽形式培養(yǎng)在分別含6-BA(0.6、1.0、1.5 mg/L)與生長素(0.02、0.05 mg/L NAA,0.1 mg/L IBA)的9種3/4MS培養(yǎng)基上,每瓶4個(gè)單芽,每處理5瓶,3次重復(fù)。培養(yǎng)40 d后統(tǒng)計(jì)其叢生芽數(shù),并計(jì)算叢生芽增殖率。計(jì)算公式如下:

      叢生芽增殖率(%)=培養(yǎng)后叢生芽總數(shù)/接入芽總數(shù)×100%

      1.2.4 生根培養(yǎng) 當(dāng)植株達(dá)到3 cm高,并且具有3片葉時(shí),將切除根的植株培養(yǎng)在分別添加0.5 mg/L生長素(NAA、IBA、TRP)的1/2MS培養(yǎng)基中誘導(dǎo)生根。每瓶10株,每處理5瓶,3次重復(fù)。培養(yǎng)15、30 d后各統(tǒng)計(jì)1次生根植株數(shù),計(jì)算生根率。計(jì)算公式如下:

      生根率(%)=生根植株數(shù)/接入植株數(shù)×100%

      1.2.5 移栽 生根培養(yǎng)30 d后,將生根苗的瓶蓋擰松,放置在溫室內(nèi)煉苗7 d;取出苗并洗凈,移栽于填滿泥炭基質(zhì)(0~20 mm)的72孔穴盤中,在溫室溫度為(26±2) ℃、空氣相對(duì)濕度約為80%的條件下栽培;分別于培養(yǎng)7、35 d時(shí)測量株高及統(tǒng)計(jì)葉片數(shù),計(jì)算其株高生長量及葉片的增加數(shù)。

      切取株高大于4 cm,且具有3片葉以上、2條根的叢生芽帶根單株,在同樣條件下栽種、管理與測量,計(jì)算株高生長量及葉片增加數(shù)。計(jì)算公式如下:

      株高生長量(mm)=培養(yǎng)35 d的株高(mm)-培養(yǎng)7 d的株高(mm);

      葉片增加數(shù)=培養(yǎng)35 d的葉片數(shù)-培養(yǎng)7 d的葉片數(shù)

      1.3 培養(yǎng)條件

      莖尖在光強(qiáng)6 μmol/(m2·s)條件下培養(yǎng)7 d后,轉(zhuǎn)入光強(qiáng)為25~30 μmol/(m2·s)的條件下培養(yǎng)。光照時(shí)間為10 h/d,溫度為(24±2) ℃,空氣相對(duì)濕度為60%。

      叢生芽增殖、生根均在光強(qiáng)為25~30 μmol/(m2·s)的條件下培養(yǎng)。其他條件同莖尖培養(yǎng)。

      1.4 數(shù)據(jù)分析

      數(shù)據(jù)以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(SE)表示,采用Excel 2016、SPSS 19軟 件 進(jìn) 行 統(tǒng) 計(jì) 分 析,應(yīng) 用Duncan’s法進(jìn)行多重比較。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 莖尖消毒

      由表1可知,莖尖經(jīng)0.6%含氯消毒溶液浸泡40 min后,再用0.1% HgCl2分別消毒4、8和12 min,表面菌類基本被殺滅,同時(shí)莖尖均存活,僅4 min處理的出現(xiàn)1個(gè)污染,說明該消毒方法有效;但隨著消毒時(shí)間的增加,莖尖生長逐漸減緩,表明0.1% HgCl2消毒時(shí)間長對(duì)莖尖生長有一定的抑制作用,但差異不顯著。因此,選擇0.1% HgCl2消毒4 min,這樣既能有效殺滅莖尖表面的菌類,同時(shí)也對(duì)莖尖生長的影響較小。

      表1 0.1% HgCl2不同消毒時(shí)間對(duì)莖尖生長的影響

      2.2 莖尖培養(yǎng)的影響因素

      2.2.1 基本培養(yǎng)基對(duì)莖尖生長的影響 由表2可知,培養(yǎng)于MS和1/2MS上的莖尖生長量顯著大于培養(yǎng)于1/4MS上的,且培養(yǎng)于1/2MS上的莖尖生長量最大,為3.66 mm。這表明不同濃度基本培養(yǎng)基對(duì)莖尖生長量有顯著影響,適合于莖尖生長的基本培養(yǎng)基是1/2MS,高濃度或低濃度都不利于莖尖的生長。

      表2 基本培養(yǎng)基對(duì)莖尖生長的影響

      2.2.2 細(xì)胞分裂素對(duì)莖尖生長的影響 由表3可知,適量的6-BA和KT均適合“美酒”白掌莖尖生長,但對(duì)莖尖生長量的影響差異不顯著。在1/2MS+0.6 mg/L KT+0.1 mg/L IBA培養(yǎng)基上,其莖尖生長量最大,為3.22 mm,與0.2 mg/L 6-BA和KT處理相比,更能促進(jìn)莖尖生長。

      表3 細(xì)胞分裂素對(duì)莖尖生長的影響

      2.2.3 生長素對(duì)莖尖生長的影響 由表4可知,培養(yǎng)在1/2MS+0.6 mg/L KT+0.1 mg/L IBA上的莖尖獲得了最大生長量,達(dá)到2.81 mm,顯著大于培養(yǎng)在1/2MS+0.6 mg/L KT+0.1 mg/L NAA 上的。這表明IAA、IBA在促進(jìn)莖尖生長方面優(yōu)于NAA,且低濃度IBA也優(yōu)于高濃度IBA。將所有莖尖培養(yǎng)在1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA培養(yǎng)基上2個(gè)周期(80 d),大部分莖尖可以分化出叢生芽。

      表4 生長素對(duì)莖尖生長的影響

      2.3 叢生芽增殖的影響因素

      2.3.1 基本培養(yǎng)基與接種不同芽團(tuán)對(duì)叢生芽增殖的影響 由表5可知:在3/4MS上培養(yǎng)的叢生芽增殖率最高,平均為3.41,且以雙芽接種的最高(4.04);在不同基本培養(yǎng)基上接種單芽和雙芽的平均增殖率分別為3.41和3.38,顯著高于接種四芽的;單芽接種于MS上的高于另外3種芽團(tuán)類型,且與3/4MS上的差異不顯著。由此表明,不同濃度基本培養(yǎng)基與接種不同芽團(tuán)對(duì)“美酒”白掌叢生芽增殖具有顯著的影響,且其叢生芽增殖以單芽接種培養(yǎng)于MS上或雙芽接種培養(yǎng)于3/4MS上較為合適。

      表5 基本培養(yǎng)基與接種不同芽團(tuán)對(duì)叢生芽增殖率的影響

      2.3.2 生長調(diào)節(jié)劑對(duì)叢生芽增殖率的影響 由表6可知,培養(yǎng)于1.5 mg/L 6-BA上的叢生芽增殖率最高,平均為3.31,顯著高于培養(yǎng)在另外2個(gè)濃度水平的處理。培養(yǎng)于IBA上的叢生芽增殖率為3.07,略高于培養(yǎng)在NAA上的,但不同濃度及類型生長素對(duì)叢生芽增殖影響差異不顯著。結(jié)果表明:不同濃度6-BA與生長素配比對(duì)“美酒”白掌叢生芽增殖具有顯著影響。培養(yǎng)在3/4MS+1.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA培養(yǎng)基上的叢生芽,其增殖率最高,為3.49,優(yōu)于或顯著優(yōu)于其他配比下的培養(yǎng)基。

      表6 6-BA與生長素配比對(duì)叢生芽增殖率的影響

      2.4 生長素對(duì)生根的影響

      由表7可知,不同生長素及生根時(shí)間對(duì)叢生芽生根的影響不同。在3種生根培養(yǎng)基上,培養(yǎng)15 d后的叢生芽生根率均超過50%,30 d后的生根率可達(dá)90%以上。生根培養(yǎng)15 d后,TRP誘導(dǎo)叢生芽的生根率最高,為66.43%,顯著高于NAA的培養(yǎng)基,但生根培養(yǎng)30 d,差異不顯著,說明TRP更有利于叢生芽生根。

      表7 生長素對(duì)生根率的影響 %

      2.5 生長素對(duì)移栽后組培苗生長的影響

      由表8可知,用IBA生根的苗移栽35 d后其株高生長量最大,為1.38 cm;與應(yīng)用NAA(1.04 cm)、TRP(0.84 cm)生根,以及帶根叢生芽單株(0.90 cm)直接移栽的差異顯著。經(jīng)生根培養(yǎng)的組培苗移栽35 d后均長出2片新葉,顯著高于直接移栽的。結(jié)果表明:應(yīng)用IBA、NAA生根,對(duì)組培種苗移栽初期(35 d)株高和長新葉均有一定的促進(jìn)作用。

      表8 生長素對(duì)移栽后組培苗生長的影響

      3 結(jié)論與討論

      建立白掌快繁體系所用外植體有花序[10-12]、頂芽[13-15]、側(cè)芽[16-18]、莖段[19-20]、葉片和葉柄[21],其污染率低的有10%,高的可達(dá)87%,損耗了大量的外植體。增加消毒時(shí)間可降低污染率,但會(huì)影響其存活率、生活力[9]。本試驗(yàn)采用1~2 mm的莖尖建立“美酒”白掌的無菌系,莖尖消毒成功率達(dá)到97%以上,充分利用、節(jié)省了外植體。在建立無菌系的過程中,用頂芽、側(cè)芽誘導(dǎo)叢生芽相對(duì)于用葉片、葉柄誘導(dǎo)愈傷組織產(chǎn)生不定芽更容易,且變異率更低[16]。葉片和花梗難以誘導(dǎo)出芽,而側(cè)芽和莖段是最合適的外植體[22]。劉曉青等[23]認(rèn)為芽誘導(dǎo)產(chǎn)生叢生芽的增殖方式具有遺傳穩(wěn)定性高的優(yōu)點(diǎn)。在本試驗(yàn)中,莖尖培養(yǎng)120 d后即誘導(dǎo)出叢生芽,經(jīng)多代增殖培養(yǎng),未發(fā)現(xiàn)可見變異,可見芽增殖方式的遺傳穩(wěn)定性較高。

      在白掌快繁體系中,頂芽(莖尖)、腋芽常見的初代培養(yǎng)配方是MS+1.5~2.0 mg/L 6-BA+0.1~0.2 mg/L NAA[13-19]。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)1~2 mm的莖尖,KT優(yōu)于6-BA,且低濃度就能讓莖尖較好地生長;觀察發(fā)現(xiàn)長大的莖尖能很好地誘導(dǎo)出叢生芽而不產(chǎn)生愈傷,這有利于降低后期芽增殖產(chǎn)生變異的可能。

      白掌生根使用IBA、NAA或兩者搭配,生根率在95%以上,兩者混合生根優(yōu)于IBA,且IBA的生根效果又優(yōu)于NAA[16]。本試驗(yàn)得出了類似結(jié)論,并發(fā)現(xiàn)TRP的生根效率優(yōu)于IBA、NAA,但移栽后,小苗在株高生長量及葉片數(shù)增加上均不如IBA和NAA,其原因有待進(jìn)一步試驗(yàn)研究。

      白掌在增殖過程中根芽同步生長,可省去生根過程,縮短組培周期,節(jié)省生產(chǎn)成本[24-25]。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),“美酒”白掌在增殖過程中能根芽同步,帶根叢生芽單株在溫室栽培條件下移栽存活率可達(dá)100%。對(duì)組培生根苗和帶根叢生芽單株進(jìn)行移栽比較發(fā)現(xiàn),移栽35 d內(nèi),生根苗的生長速度顯著快于帶根叢生芽單株小苗。可見,白掌在組培過程中省去生根過程,能節(jié)省成本,但會(huì)顯著影響組培苗移栽后初期的生長,其可能原因是叢生芽單株移栽初期,小苗未能適應(yīng)環(huán)境的改變。若在增殖末期增加1~2周的時(shí)間,以煉苗環(huán)境條件來培養(yǎng)增殖芽,則帶根叢生芽單株可能達(dá)到生根苗移栽的相似效果,從而實(shí)現(xiàn)縮短其組培生產(chǎn)周期、節(jié)約生產(chǎn)成本且不影響苗生長的目標(biāo)。

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