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    橡膠樹兩種葉部病害拮抗木霉T008的篩選、鑒定及室內(nèi)防效評(píng)價(jià)

    2022-04-22 08:39:26邢夢(mèng)玉侯巨梅
    關(guān)鍵詞:幾丁質(zhì)木霉橡膠樹

    薛 鳴,戰(zhàn) 鑫,王 睿,邢夢(mèng)玉,劉 銅*,侯巨梅

    (1.海南大學(xué)熱帶農(nóng)林生物災(zāi)害教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,???570228;2.海南省農(nóng)用生物制劑創(chuàng)制工程研究中心,海口 570228)

    巴西橡膠樹Heveabrasiliensis是屬于大戟科橡膠樹屬的植物,原產(chǎn)于亞馬遜森林。在中國(guó),橡膠樹主要分布于海南、廣東、廣西、福建、云南等地區(qū)[1]。天然橡膠廣泛運(yùn)用于工業(yè)、國(guó)防、交通等方面,是重要的戰(zhàn)略儲(chǔ)備資源,同時(shí)橡膠林也屬于熱帶森林生態(tài)系統(tǒng),對(duì)環(huán)境調(diào)節(jié)及農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展有重要意義。在橡膠種植過(guò)程中,由多主棒孢菌Corynesporacassiicola引起的橡膠樹棒孢霉落葉病是橡膠樹的毀滅性病害之一,該病害可造成膠乳減產(chǎn),嚴(yán)重時(shí)可造成植株生長(zhǎng)遲緩,整株死亡[2,3]。由膠孢炭疽菌Colletotrichum gloeosporioides引起的橡膠炭疽病是一種重要的葉部病害,在橡膠種植區(qū)普遍發(fā)生[4-6]。目前生產(chǎn)上主要采用化學(xué)藥劑來(lái)防治這兩種病害,但是化學(xué)藥劑對(duì)土壤和生態(tài)環(huán)境有較大的影響,所以開發(fā)一種安全、綠色的防治方法將有助于橡膠產(chǎn)業(yè)的綠色發(fā)展[7-9]。

    木霉是一種廣泛存在于土壤中的生防微生物,通過(guò)產(chǎn)生一些代謝產(chǎn)物和細(xì)胞壁降解酶等抑制病原菌的生長(zhǎng)[11,12],同時(shí)可以誘導(dǎo)植物產(chǎn)生抗病性。目前,國(guó)內(nèi)外開發(fā)的木霉制劑已經(jīng)應(yīng)用于各類植物病害的防治,但對(duì)于橡膠樹膠孢炭疽病和棒孢霉落葉病的防治作用卻鮮有報(bào)道[13]。本文擬從橡膠園根際土壤中分離,以期獲得拮抗兩種病原菌的木霉,為防治這兩種橡膠樹病害提供具有生防潛力的菌株。

    1 材料與方法

    1.1 供試菌株及培養(yǎng)基

    引起橡膠炭疽病的膠孢炭疽菌由海南大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院林春花教授贈(zèng)惠,引起橡膠棒孢霉落葉病的多主棒孢霉由海南大學(xué)木霉菌課題組保存。

    PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂15 g,水定容至1 L。PD培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,水定容至1 L。PDAm培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖18 g,瓊脂15 g,玫瑰紅0.02 g,定容到1 L,121 ℃滅菌冷卻后加入氯霉素0.1 g,鏈霉素0.3 g。CMD培養(yǎng)基:玉米粉30 g,葡萄糖18 g,瓊脂18 g,水定容至1 L。SNA培養(yǎng)基:KH2PO41.0 g,KCl 10.5 g,KNO31.0 g,MgSO40.5 g,葡萄糖0.2 g,蔗糖0.2 g,瓊脂18 g,水定容至1 L。木霉幾丁質(zhì)酶產(chǎn)酶培養(yǎng)基:稱取粉末狀幾丁質(zhì)0.5 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.01 g,MgSO4·7H2O 0.06 g,KH2PO40.2 g,NH4NO30.3 g,蒸餾水定容至100 mL。DNS溶液:酒石酸鉀鈉18.2 g,溶于50 mL蒸餾水中,加熱后在溶液中依次加入3,5-二硝基水楊酸0.63 g,NaOH 2.1 g,苯酚0.5 g,攪拌至溶解,冷卻后用蒸餾水定容至100 mL,室溫避光保存。

    1.2 拮抗木霉分離

    2020年9月12日,在海南儋州那大橡膠園(19°25′53″ N,109°34′11″ E)采集橡膠樹根際土壤 16份,分別保存在塑封袋并置于冰盒中,當(dāng)天轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)室保存于4 ℃?zhèn)溆谩D久狗蛛x采用稀釋平板法進(jìn)行,具體操作如下:取10 g根際土樣放入無(wú)菌三角瓶中,加入90 mL ddH2O,于28 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)30 min后靜置,取上清液稀釋100倍,然后取稀釋液0.2 mL均勻涂布PDAm平板,于28 ℃黑暗培養(yǎng)2 d后,觀察是否有菌落長(zhǎng)出,挑選單一菌落進(jìn)行形態(tài)學(xué)觀察,將疑似木霉挑出與純化,保存4 ℃冰箱備用。

    1.3 對(duì)峙培養(yǎng)與拮抗系數(shù)測(cè)定

    將木霉菌株、膠孢炭疽菌和多主棒孢菌轉(zhuǎn)接于PDA培養(yǎng)基上,置于28 ℃恒溫培養(yǎng)5 d后,用打孔器(φ=5 mm)沿菌絲邊緣切下菌餅,分別將木霉菌餅與病原菌菌餅對(duì)稱接種到平板PDA培養(yǎng)基兩側(cè),中間相距5 cm,以只接病原菌為對(duì)照,于28 ℃培養(yǎng)10 d后,測(cè)量病原菌菌落半徑,計(jì)算抑制率,抑制率(%)=(對(duì)照菌落半徑-處理菌落半徑)/對(duì)照菌落半徑×100。拮抗系數(shù)分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)[14]:Ⅰ級(jí),木霉菌絲占平皿的100%;Ⅱ級(jí),木霉菌絲占平皿的 2/3 以上;Ⅲ級(jí),木霉菌絲占平皿的 1/3~2/3;Ⅳ級(jí),木霉菌絲占平皿的1/3以下;Ⅴ級(jí),病原菌絲占平皿的100%。試驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.4 非揮發(fā)性物質(zhì)及揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)病原菌的抑制作用

    將木霉菌株活化5 d后,利用無(wú)菌水稀釋成含量為1×108孢子/mL的分生孢子懸浮液,取100 μL分生孢子懸浮液接種在100 mL PD培養(yǎng)基中,28 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)4 d,發(fā)酵液8000 r/min離心2 min。取上清液用0.22 μm無(wú)菌濾膜過(guò)濾,收集過(guò)濾液,取10 mL木霉過(guò)濾液與40 mL熔化的PDA培養(yǎng)基混合倒平板,以10 mL無(wú)菌水和40 mL熔化的PDA培養(yǎng)基混合倒平板為對(duì)照。待平板凝固后,分別在含過(guò)濾液培養(yǎng)基和對(duì)照平板中央接種病原菌,待菌落生長(zhǎng)4 d后用十字交叉法測(cè)量病原菌的菌落半徑,計(jì)算木霉非揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)病原菌的拮抗作用,抑制率計(jì)算公式同1.2.1,試驗(yàn)重復(fù)3次。

    采用對(duì)扣培養(yǎng)法測(cè)定揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)病原菌的抑制作用[15]。將木霉接種在PDA培養(yǎng)基中,28 ℃黑暗培養(yǎng)3 d后,揭去皿蓋,在上方覆蓋一張無(wú)菌玻璃紙(直徑大于培養(yǎng)皿),將另一個(gè)大小一致中心接種病原菌的平板(去蓋)對(duì)扣在木霉培養(yǎng)基上方,用封口膜封閉,以不接種木霉的對(duì)扣為空白對(duì)照。培養(yǎng)4 d后,用十字交叉法測(cè)量病原菌的菌落半徑,計(jì)算抑制率。試驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.5 幾丁質(zhì)酶活測(cè)定

    膠態(tài)幾丁質(zhì)制備及幾丁質(zhì)酶活測(cè)定參照Berger和Rynolds[16]描述的方法,將10 g粉末狀幾丁質(zhì)置于研缽中,少量多次加入4 ℃預(yù)冷濃鹽酸,研磨呈糊狀,置于4 ℃靜置24 h。將靜置好的幾丁質(zhì)用紗布過(guò)濾,濾液用蒸餾水?dāng)嚢柘♂專?000 r/min離心10 min后去上清,如此反復(fù)至溶液pH呈中性,然后用蒸餾水定容至1000 mL。將搖培4 d的木霉發(fā)酵液經(jīng)三層紗布過(guò)濾,取5.0 mL濾液加入2.0 mL膠態(tài)幾丁質(zhì),置于37 ℃保溫3 h后,取2.0 mL濾液加入1.5 mL DNS、1.0 mL緩沖液,沸水浴10 min,冷水冷卻至室溫,用540 nm比色測(cè)定OD值。以100 ℃滅活10 min的酶液為空白對(duì)照,試驗(yàn)重復(fù)3次。以1.0 mL粗酶液每1 h分解膠態(tài)幾丁質(zhì)產(chǎn)生l μmol還原糖(N-乙酰氨基葡萄糖)的酶量定義為一個(gè)酶單位(U)。

    1.6 木霉形態(tài)特征觀察

    將木霉分別轉(zhuǎn)接于PDA、CMD、SNA培養(yǎng)基上,于26 ℃下黑暗培養(yǎng),每隔24 h觀察菌株在3種培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)、生長(zhǎng)速度、顏色和色素等特征,進(jìn)行拍照記錄。

    1.7 木霉分子鑒定

    采用CTAB法提取木霉菌絲DNA,以引物EF-1728F 5′-GAAGTCATCATGACCGTTCTGCA-3′和TEFRg 5′-GCCATCCTTGGGAGATACCAGC-3′擴(kuò)增基因tef-1α(translation elongation factor 1 alpha)片段;以引物rpb2-5f:5′-GAYGAYMGWGATCAYTTYGG-3′和 rpb2-7cr:5′-CCCATRGCTTGYTTRCCCAT-3′擴(kuò)增基因rpb2(RNA polymerase B subunit II)片段[17,18]。PCR產(chǎn)物通過(guò)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后,切膠回收目的條帶后連接至T載體,送至上海生工公司進(jìn)行測(cè)序。將獲得tef-1α以及rpb2序列采Snapgene軟件切除質(zhì)量較低序列,通過(guò)Blast在線(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)與在GenBank中的基因序列進(jìn)行對(duì)比分析,從GenBank中獲取不同木霉菌的tef-1α和rpb2序列,采用MEGA10對(duì)tef-1α-rpb2序列拼接后,以鄰接法(neighbor-joining method)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹,用 Bootstrap 對(duì)系統(tǒng)樹進(jìn)行檢驗(yàn),1000次重復(fù)[19]。

    1.8 室內(nèi)防效測(cè)定

    將膠孢炭疽菌和多主棒孢菌分別在PDA培養(yǎng)基上,于28 ℃培養(yǎng)3 d后,從菌落邊緣取直徑5 mm的菌餅5塊,接種在含有100 mL PD的250 mL三角瓶中,在28 ℃光照250 r/min振蕩培養(yǎng)7 d后, 用滅菌擦鏡紙過(guò)濾菌絲,獲得病原菌孢子懸浮液,調(diào)整孢子濃度為1×108孢子/mL。

    選取大小一致的橡膠感病品種文昌 11的古銅色嫩葉,用濕潤(rùn)棉球擦拭干凈表面,采用滅菌的針頭在橡膠葉片表面劃出輕微傷口,用木霉孢子懸浮液對(duì)葉片表面均勻噴灑,待葉片自然晾干0.5 h后,在傷口處接種10 μL病原菌孢子懸浮液(1×108孢子/mL),將葉片放入鋪有潤(rùn)濕紗布的保鮮盒內(nèi),于28 ℃保濕培養(yǎng)72 h后,觀察發(fā)病情況并拍照記錄。以未經(jīng)木霉處理,只接種病原菌為對(duì)照。使用軟件IMAGE J(Wayne Rasband,National Institute of Health,USA),測(cè)量病斑面積,與對(duì)照相比,計(jì)算抑制率。抑制率(%)=(對(duì)照組面積—處理組面積)/對(duì)照組面積×100。每個(gè)處理選取30個(gè)病斑,試驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.9 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    采用EXCEL和SPSS 20.0 Graph PadsPrism 8軟件對(duì)數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析,采用Adobe PhotoShop CS 6進(jìn)行圖片處理。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 拮抗木霉的分離與拮抗

    經(jīng)形態(tài)學(xué)觀察,從16份橡膠根際土壤中分離獲得6株拮抗木霉。通過(guò)對(duì)峙培養(yǎng)試驗(yàn),發(fā)現(xiàn)所有木霉對(duì)膠孢炭疽菌和多主棒孢菌病原菌有一定的抑制作用,其抑制率分別為 76.73%~86.16%和 58.33%~76.67%;其中T139和T008分別對(duì)膠孢炭疽菌和多主棒孢菌抑制率最高,為86.16%和76.67%;T139對(duì)多主棒孢菌抑制率最低,僅為58.33%;通過(guò)拮抗系數(shù)測(cè)定,T008、T023、T139和T235對(duì)兩種病原菌的拮抗系統(tǒng)為Ⅰ級(jí),表明具有較強(qiáng)的拮抗作用(表1,圖1)。

    圖1 6株木霉對(duì)橡膠樹兩種病原菌拮抗效果Fig.1 Antagonistic effect of 6 isolates of Trichoderma on two pathogens of rubber tree

    表1 6株木霉對(duì)橡膠樹兩種病原菌生長(zhǎng)抑制率及拮抗系數(shù)Table 1 Growth inhibition rates of 6 isolates of Trichoderma against two pathogens of rubber tree

    2.2 非揮發(fā)性物質(zhì)和揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)兩種病原菌的抑制作用

    6株木霉的非揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)2種病原菌均有一定抑制作用,但同株木霉對(duì)不同病原菌的抑制作用有明顯差異。所有木霉的發(fā)酵液對(duì)膠孢炭疽菌的抑制率為30.30%~57.58%,對(duì)多主棒孢菌抑制率為33.33%~61.54%;其中菌株T017和T139的發(fā)酵液分別對(duì)膠孢炭疽菌和多主棒孢菌抑制作用最強(qiáng),分別為57.58%和61.54%;通過(guò)對(duì)扣培養(yǎng)法測(cè)定6株木霉所產(chǎn)生的揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)2種病原菌的生長(zhǎng)有一定的抑制作用,其抑制率為4.08%~35.71%;其中菌株T008對(duì)2種病原菌的抑制率最高,分別為16.33%和30.77%; 菌株T139對(duì)兩種病原菌的抑制率最低,分別為4.08%和11.54%(表2)。

    表2 6株木霉非揮發(fā)性物質(zhì)和揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)兩種病原菌的抑制率(%)Table 2 Inhibitory rate of non-volatile substance and volatile substances from 6 isolates of Trichoderma on two pathogens (%)

    2.3 幾丁質(zhì)酶活性

    6株木霉幾丁質(zhì)酶活性測(cè)定的結(jié)果表明,6株木霉的幾丁質(zhì)酶介于0.85~1.85 U,不同木霉之間產(chǎn)幾丁質(zhì)酶活差異較大,其中菌株T235、T023、T027和T008有較高的幾丁質(zhì)酶活性,分別為1.84、1.51、1.41和1.39 U;菌株T017產(chǎn)幾丁質(zhì)酶活最低,僅為0.85 U(圖2)。結(jié)合抑制結(jié)果,選菌株T008進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。

    圖2 6株木霉幾丁質(zhì)酶活性Fig.2 Chitinase bioactivity from 6 isolates of Trichoderma

    2.4 拮抗木霉T008的鑒定

    木霉T008在PDA培養(yǎng)基可以生長(zhǎng)迅速,3 d后可長(zhǎng)滿整個(gè)培養(yǎng)皿,菌落呈放射狀,氣生菌絲豐富,分生孢子大量形成;菌株初期呈白色,后期呈黃綠色至綠色。在CMD培養(yǎng)基上產(chǎn)生產(chǎn)孢簇,分生孢子形成于同心圓內(nèi),顏色呈深綠色;在SNA培養(yǎng)基上分生孢子較少,并聚集在同心圓上,淺綠色;在3種培養(yǎng)基上均無(wú)色素和特殊氣味產(chǎn)生,菌絲分支常常對(duì)生,偶爾單生,呈塔狀,瓶梗單生或2~4個(gè)輪生,孢子梗呈燒瓶形,分生孢子近圓形、光滑、深綠色(圖3)。綜上可知,木霉T008形態(tài)特征與棘孢木霉一致[20]。

    圖3 木霉T008形態(tài)學(xué)特征Fig.3 Morphological charcterization of Trichoderma T008

    木霉T008 基因tef-1α和rpb2經(jīng)PCR擴(kuò)增分別獲得563和1024 bp的片段,GenBank登錄號(hào)分別為MW813956和MZ361841;通過(guò)Blast與GenBank中已有的序列進(jìn)行比對(duì)和系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建,結(jié)果顯示菌株T008與已知棘孢木霉TRS705、TRS741、TRS742、TRS744和TRS746同屬一分支(圖4)。結(jié)合形態(tài)特征結(jié)果,木霉T008被鑒定為棘孢木霉。

    圖4 基于基因tef-1α和rpb2構(gòu)建的木霉T008系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 The phylogenetic tree of Trichoderma T008 based on gene tef-1α and rpb2

    2.5 棘孢木霉T008對(duì)兩種病原菌的室內(nèi)防效

    棘孢木霉 T008的室內(nèi)防效試驗(yàn)結(jié)果表明,通過(guò)棘孢木霉 T008孢子懸浮液預(yù)處理橡膠葉片后,分別接種膠孢炭疽菌和多主棒孢菌后,其病斑面積分別為 0.28和 0.13 cm2,而對(duì)照發(fā)病面積分別為0.44(只接種膠孢炭疽菌)和0.22 cm2(只接種多主棒孢菌)(圖5a,b),抑制率分別為61.02%和58.60%,表明棘孢木霉 T008對(duì)兩種病害有較好的預(yù)防作用(表3)。

    表3 棘孢木霉T008對(duì)橡膠樹兩種病害室內(nèi)防效測(cè)定Table 3 Indoor control effect of T.asperellum T008 on two diseases of rubber tree

    圖5 棘孢木霉T008對(duì)橡膠樹兩種病害葉片發(fā)病情況Fig.5 Incidence of T.asperellum T008 on two diseases of rubber tree

    3 討論

    木霉生長(zhǎng)速度快,在其生長(zhǎng)過(guò)程中可產(chǎn)生一些抗生物質(zhì)抑制病原菌的生長(zhǎng)[21]。吳利民等[22]通過(guò)平板對(duì)峙試驗(yàn),篩選出對(duì)黃瓜褐斑病菌具有較好抑制效果的木霉TR-12。通過(guò)對(duì)峙培養(yǎng)法,可以直接、有效地篩選出對(duì)靶標(biāo)菌具有較好拮抗效果的菌株。李紀(jì)順等[23]通過(guò)平板對(duì)峙試驗(yàn)篩選出對(duì)西洋參立枯病菌抑制率達(dá)99.33%的木霉,羅紅霞等[24]篩選出9株對(duì)柑橘青霉病菌有較好的抑制效果的木霉。本試驗(yàn)通過(guò)平板對(duì)峙培養(yǎng)法從6株木霉中獲得了對(duì)橡膠樹兩種病原菌都有較強(qiáng)抑制作用的菌株T139和T008。

    研究報(bào)道木霉還可以產(chǎn)生多種次級(jí)代謝產(chǎn)物,可以抑制病原菌生長(zhǎng)。趙玳琳等[25]測(cè)定了棘孢木霉GYSW-6m1發(fā)酵液對(duì)草莓炭疽病菌的抑制效果,發(fā)現(xiàn)草莓炭疽病菌在木霉代謝產(chǎn)物平板上培養(yǎng)3、5和7 d時(shí),生長(zhǎng)受到明顯抑制。楊帥等[26]通過(guò)棘孢木霉的發(fā)酵液處理番茄早疫病病原菌,發(fā)現(xiàn)發(fā)酵液降低了番茄防御酶的量,并且增加氧化產(chǎn)物丙二醛(MDA)的產(chǎn)生,從而抑制了番茄早疫病病原菌的生長(zhǎng),本研究通過(guò)發(fā)酵液抑菌活性測(cè)定,發(fā)現(xiàn)6株木霉的發(fā)酵液對(duì)兩種病原菌同樣有一定的抑制作用,其中T017對(duì)膠孢炭疽菌的抑制率達(dá)到57.58%,說(shuō)明該菌株可能產(chǎn)生高活性的抑制膠孢炭疽菌的次生代謝產(chǎn)物,但具體是哪些代謝產(chǎn)物發(fā)揮作用尚不清楚,還有待于進(jìn)一步的研究。木霉同時(shí)能夠產(chǎn)生豐富的易揮發(fā)性物質(zhì),對(duì)病原菌產(chǎn)生一定的抑制作用。本研究發(fā)現(xiàn)木霉T008產(chǎn)生的揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)兩種病原菌有較高的的抑制作用,但是菌株 T139對(duì)兩種病原菌的抑制效果較差。這也說(shuō)明了不同種木霉產(chǎn)生的揮發(fā)性抑菌物質(zhì)種類與數(shù)量有不同,從而導(dǎo)致對(duì)病原體菌絲抑制效果相差較大。

    木霉可以產(chǎn)生一些細(xì)胞壁降解酶,如幾丁質(zhì)酶可以裂解真菌的幾丁質(zhì)和幾丁寡聚物等物質(zhì),溶解真菌細(xì)胞壁,抑制病原菌的生長(zhǎng)[27]。本試驗(yàn)通過(guò)幾丁質(zhì)酶活測(cè)定,發(fā)現(xiàn)T235可以產(chǎn)生較高的幾丁質(zhì)酶活性,但在對(duì)峙培養(yǎng)中沒(méi)有表現(xiàn)出最好的抑菌效果,這可能由于木霉 T235的生長(zhǎng)速率較慢所導(dǎo)致。通過(guò)以上研究表明,不同木霉對(duì)不同病原菌的抑菌活性存在差異,因此在橡膠病害綜合防治中可考慮使用木霉菌混合菌劑,彌補(bǔ)單一木霉制劑的不足。

    真菌傳統(tǒng)鑒定方法主要以菌株在不同培養(yǎng)基上菌落形態(tài)、分生孢子及孢子梗等形態(tài)特征為依據(jù),但由于培養(yǎng)環(huán)境的不同,一些真菌的菌落形態(tài)和某一些微觀特征發(fā)生變化,因此完全從形態(tài)學(xué)特征進(jìn)行鑒定會(huì)導(dǎo)致不準(zhǔn)確[28]。隨著分子生物學(xué)的發(fā)展,利用分子手段鑒定真菌越來(lái)越普遍,如林春花等[29]通過(guò)多基因序列法,鑒定了海南省橡膠樹不同植膠地點(diǎn)的 16株炭疽菌,分析了海南橡膠炭疽病病原菌遺傳種群,并分析出引起橡膠炭疽病的病原菌主要類群暹羅炭疽菌Colletotrichumsiamense。木霉屬包括330多種,種與種之間的形態(tài)差異較小,很難從形態(tài)上完全區(qū)分不同的種,研究報(bào)道以tef-1α和rpb2保守基因可較好鑒定不同木霉種[30]。因此,本研究通過(guò)形態(tài)學(xué)特征,結(jié)合分子生物學(xué)技術(shù),鑒定了T008為棘孢木霉。

    經(jīng)室內(nèi)離體防效測(cè)定,發(fā)現(xiàn)棘孢木霉T008孢子懸浮液處理后的橡膠葉片,顯著減少了葉片病斑面積,表明木霉可能在橡膠葉片上萌發(fā),對(duì)橡膠炭疽菌和多主棒孢菌產(chǎn)生競(jìng)爭(zhēng),重寄生及誘導(dǎo)抗病性的作用,從而抑制了病害的發(fā)生。Pujade-Renaud等[31]從橡膠樹中分離出內(nèi)生真菌康氏木霉,證明了該菌株能夠定殖于橡膠樹內(nèi),并且對(duì)多主棒孢菌有較強(qiáng)的抑制效果。

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